Soğuk Press Kiraz (Prunus avium) Tohum Yağının Bazı Fizikokimyasal Özellikleri

Amaç & Hipotez:Bu çalışma kiraz çekirdeği yağının fizikokimyasal özellikleri (PV, FFA, toplam fenolik madde ve antioksidan aktivite), yağ asidi, sterol, tokoferol ve fenolik bileşen kompozisyonunu belirlenmesini amaçlamıştır.

📊

Temel Bulgular & Veri:Kiraz çekirdeği yağının PV ve FFA değerleri sırasıyla 1.40 meqO2/kg ve % 2.71 olarak tespit edilmiştir.

💡

Sonuç & Katkı:Bu çalışma kiraz çekirdeği yağının yüksek biyoaktif madde içermesi ve düşük PV ve FFA değerlerinden dolayı gıda sanayiinde kullanılabileceğini göstermiştir.

🔬Tür:Araştırma Makalesi

📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem

⚙️Değişkenler:Alan Parametreleri

Özet

Bu çalışma kiraz çekirdeği yağının fizikokimyasal özellikleri (PV, FFA, toplam fenolik madde ve antioksidan aktivite), yağ asidi, sterol, tokoferol ve fenolik bileşen kompozisyonunu belirlenmesini amaçlamıştır. Bu çalışmada kullanılan kiraz çekirdeği yağı soğuk presleme yöntemiyle eld edilmiştir. Kiraz çekirdeği yağının PV ve FFA değerleri sırasıyla 1.40 meqO2/kg ve % 2.71 olarak tespit edilmiştir. Kiraz çekirdeği yağının görünür viskozite değeri 0.057 Pa.s olarak tespit edilmiştir. Kiraz çekirdeği yağının TPC ve AC değerleri sırasıyla 22.17 mg GAE/g ekstrakt ve 1.05 mmol TE/g ekstrakt olarak belirlenmiştir. Kiraz çekirdeği yağının doymamış yağ asitleri miktarı doymuş yağ asidi miktarından daha yüksek olarak tespit edilmiştir. Yağın tekli doymamış yağ asitleri miktarı (% 37.44) çoklu doymamış yağ asitleri miktarından (% 52.03) daha az çıkmıştır. Oleik ve linoleik asit major yağ asitleri olarak tespit edilmiş ve değerleri % 36.73 ve % 39.45 olarak bulunmuştur. 8 farklı bitkisel sterol tanımlanmıştır. -sitosterol % 88.93 oranıyla en yüksek miktarda tespit edilen steroldür. -sitosterolden sonra kampesterol (% 3.12), 7-stigmasterol (% 2.48), 5-avenasterol (% 2.12) ve sitostanol (% 1.42) yüksek miktarda tespit edilen sterollerdir. Diğer steroller az miktarda tespit edilmiştir (< % 1). , ,  and δ olmak üzere 4 farklı tokoferol kiraz çekirdeği yağının karakterizasyonu için tanımlanmıştır. - tokoferol (% 96.72) major olarak tespit edilmiştir. -tokoferolü -tocopherols (57.40 mg/kg) ve δ tocopherols takip etmiştir. - düşük oranda tespit edilmiştir. Bu çalışma kiraz çekirdeği yağının yüksek biyoaktif madde içermesi ve düşük PV ve FFA değerlerinden dolayı gıda sanayiinde kullanılabileceğini göstermiştir.

Abstract

This study aimed to determine physicochemical properties (PV, FFA, total phenolic content, antioxidant activity), fatty acid, sterol,tocopherol and phenolic compound profile of sweet cherry seed oil. Sweet cherry oil was obtained by cold press process. Tocopheroland phenolic compounds were determined by HPLC and fatty acid and sterol composition were analyzed by GC system. PV and FFAvalues were found as 1.40 meqO2/kg and 2.71 % respectively. Apparent viscosity value was 0.057 Pa.s. TPC and AC values of thesweet cherry oil were determined as 22.17 mg GAE/g of extract and 1.05 mmol TE/g of extract. UFA content was higher than that ofthe SFA. SFA and UFA levels were 10.53% and 89.47 % respectively. MUFA (37.44 %) level was lower than PUFA level (52.03 %).Oleic acid and linoleic acid were found to be major fatty acids with a ratio of 36.73 % and 39.45 %, respectively. 8 different sterolswere analyzed for sweet cherry seed oil. -sitosterol was found to be the major sterol with a ratio of 88.93 % followed by campesterol(3.12 %), 7-stigmasterol (2.48 %), 5-avenasterol (2.12 %) and sitostanol (1.42 %). Other sterols showed small amount (

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

ATİK, İ., SEVİK, R., KARASU, S. (2022). Soğuk Press Kiraz (Prunus avium) Tohum Yağının Bazı Fizikokimyasal Özellikleri. Avrupa Bilim ve Teknoloji Dergisi, Cilt: 0 - Sayı: 17, 959–965. https://ajindex.com/articles/458053

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

Yeni Sekmede Aç ↗

↗Yeni Sekme

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (2)

Al Juhaimi, F., & Özcan, M. M. (2018). Effect of cold press and soxhlet extraction systems on fatty acid, tocopherol contents, and phenolic compounds of various grape seed oils. Journal of Food Processing and Preservation, 42(1), e13417. doi: 10.1111/jfpp.13417 Bernardo-Gil, G., Oneto, C., Antunes, P., Rodrigues, M. F., & Empis, J. M. (2001). Extraction of lipids from cherry seed oil using supercritical carbon dioxide. [journal article]. European Food Research and Technology, 212(2), 170-174. doi: 10.1007/s002170000228 Bin Sayeed, M., Karim, S., Sharmin, T., & Morshed, M. (2016). Critical Analysis on Characterization, Systemic Effect, and Therapeutic Potential of Beta-Sitosterol: A Plant-Derived Orphan Phytosterol. Medicines, 3(4), 29. Boso, S., Gago, P., Santiago, J.-L., Rodríguez-Canas, E., & Martínez, M.-C. (2018). New monovarietal grape seed oils derived from white grape bagasse generated on an industrial scale at a winemaking plant. LWT, 92, 388-394. doi: https://doi.org/10.1016/j.lwt.2018.02.055
Casazza, A.A, Aliakbarian, B., Mantegna, S., Cravotto, G., & Perego, P. (2010). Extraction of phenolics from Vitis vinifera wastes using non-conventional techniques. Journal of Food Engineering, 100, 50 -55. doi:10.1016/j.jfoodeng.2010.03.026 Comes, F., Farines, M., Aumelas, A., & Soulier, J. (1992). Fatty acids and triacylglycerols of cherry seed oil. [journal article]. Journal of the American Oil Chemists Society, 69(12), 1224-1227. doi: 10.1007/bf02637685 Doğantürk, M., & Seçilmiş Canbay, H. (2019). Oil ratıo and fatty acıd composıtıon of cherry seed oil. Górnaś, P., Rudzińska, M., Raczyk, M., Mišina, I., & Segliņa, D. (2016). Impact of cultivar on profile and concentration of lipophilic bioactive compounds in kernel oils recovered from sweet cherry (Prunus avium L.) by-products. Plant Foods for Human Nutrition, 71, 158-164. doi: https://doi.org/10.1007/s11130-016-0538-5 Górnaś, P., Rudzińska, M., Raczyk, M., Mišina, I., Soliven, A., & Segliņa, D. (2016). Composition of bioactive compounds in kernel oils recovered from sour cherry (Prunus cerasus L.) by-products: Impact of the cultivar on potential applications. Industrial Crops and Products, 82, 44-50. doi: https://doi.org/10.1016/j.indcrop.2015.12.010 IUPAC, 1992. Standard methods for the analysis of oils, fats and derivatives. 7th ed., Paquot, C. and Hautfenne, A. (Eds.) International Union of Pure and Applied Chemistry, Blackwell Scientific Publications Inc., Oxford, UK Kamm, W., Dionisi, F., Fay, L. B