Dergiler / Adnan Menderes Üniversitesi Ziraat Fakültesi Dergisi / 2022 / Cilt: 19 - Sayı: 1

Sarılop İncir (Ficus carica L.) Çeşidi Yaprak Segmentlerinden Somatik Embriyogenesis Oluşumu

Pests Species Determined in Stored Dried Apricot in Malatya Province, Turkey

Sayfa
29–35
Yayın Tarihi
2022-06-28
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

DE-2 (MS + 2 mg/L TDZ + 4 mg/L 2İP) ortamında % 83 oranında kallus gelişmesi de gözlenmiştir.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Bu çalışmada, iyi kalitede sofralık ve kurutmalık bir incir çeşidi olan Sarılop çeşidinin yaprak segmentleri kullanılarak direkt ve indirekt somatik embriyogenesis yoluyla somatik embriyo oluşumu amaçlanmıştır.
📊
Temel Bulgular & Veri:Çalışmada eksplant olarak; 2011-2013 yıllarında Kasım ve Nisan aylarında alınan incir tepe tomurcuklarından Murashige-Skoog (MS) besin ortamında geliştirilen yapraklar kullanılmıştır.
💡
Sonuç & Katkı:DE-2 (MS + 2 mg/L TDZ + 4 mg/L 2İP) ortamında % 83 oranında kallus gelişmesi de gözlenmiştir.
🔬Tür:Araştırma Makalesi
📍Kapsam:2011-2013 Verileri
⚙️Değişkenler:İncir · Ficus carica L. · Sarılop

Özet

Bu çalışmada, iyi kalitede sofralık ve kurutmalık bir incir çeşidi olan Sarılop çeşidinin yaprak segmentleri kullanılarak direkt ve indirekt somatik embriyogenesis yoluyla somatik embriyo oluşumu amaçlanmıştır. Çalışmada eksplant olarak; 2011-2013 yıllarında Kasım ve Nisan aylarında alınan incir tepe tomurcuklarından Murashige-Skoog (MS) besin ortamında geliştirilen yapraklar kullanılmıştır. Bu yaprak eksplantları, indirekt somatik embriyo gelişimi için ilkbahar döneminde K-2 (2 mg/L 2,4-D (2,4-Dichlorophenoxyacetic asit) + 0.2 mg/L kinetin) ortam kombinasyonunda kültüre alınmıştır. Bu ortam kombinasyonunda % 66.66 oranında kallus elde edilmiştir; ancak somatik embriyo gelişimi elde edilememiştir. Direkt somatik embriyo oluşumu için ise yaprak eksplantları TDZ (Thidiazuron) ve 2İP’in (N6-2-isopentenyladenine) farklı kombinasyonlarını içeren MS ortamında kültüre alınmıştır. Eksplantlar kültüre; kallus oluşumu, eksplant uzaması, kök oluşumu ile embriyo oluşumu şeklinde cevap vermiştir. En yüksek oranda kök oluşum oranı (% 42.76) ve en yüksek embriyo oluşum oranı (% 20) ilkbahar döneminde DE-4 (MS + 2 mg/L TDZ + 8 mg/L 2İP) kombinasyonunda elde edilmiştir. Eksplant başına oluşan somatik embriyo sayısı 0.83’tür. DE-2 (MS + 2 mg/L TDZ + 4 mg/L 2İP) ortamında % 83 oranında kallus gelişmesi de gözlenmiştir.

Abstract

Although the motherland of apricot fruit is known as China and Central Asia, today, Turkey, with about 1 million tons of apricot production in the world is located at the first place. Malatya Province, Turkey, where the apricot which is exported both as fresh and dry, is produced the most, has become a world trademark with its high quality dried apricots. As in many other agricultural products, many diseases and pests are very big problem for apricot. In order to protect the natural yellow color of the apricot and to show fumigant feature, sulfur is applied to dry the apricots before drying process. Natural dried apricots, are left to dry under the sun on the herbs or ground coverings, which are laid on the ground, often near apricot orchards. Apricots, which have a high risk of infestations due to pest insects are removed to apricot depots without any treatment. By preparing a survey program to Malatya Province, the samples were taken from the stored apricots in Akçadağ, Battalgazi, Darende, Hekimhan, Kale, Doğanşehir, Yazıhan, Yeşilyurt and examined for pests. Samples with immature stage of the pests were brought to the laboratory and put jars to obtain adults. So that pests in apricots were identified: Plodia interpunctella (Hübner, 1813) (Lepidoptera; Pyralidae), Lasioderma serricorne (Fabricus, 1792) (Coleoptera; Anobidae), Carpophilus hemipterus (Linnaeus, 1758) (Coleoptera; Nitidulidae), Oryzaephilus surinamensis (Linnaeus, 1758) (Coleoptera; Silvanidae) and Carpoglyphus lactis (Linnaeus, 1758) (Acarina; Carpoglyphidae) were determined of apricot pests. It is determined that if there is no control against these pests detected in dried apricot stores in Malatya region, they can cause significant losses in the product.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

BÜYÜKDİNÇ, D. T., DALKILIÇ, G. G. (2022). Sarılop İncir (Ficus carica L.) Çeşidi Yaprak Segmentlerinden Somatik Embriyogenesis Oluşumu. Adnan Menderes Üniversitesi Ziraat Fakültesi Dergisi, Cilt: 19 - Sayı: 1, 29–35. https://ajindex.com/articles/451128

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (14)

  1. Anonim (2019) http://www.fao.org. Dünya incir üretim miktarları kayıtları, Erişim Tarihi: 25.09.2021
  2. Agarwal S, Kanvar K, Sharma DR (2004). Factors Affecting Secondary Somatic Embryogenesis and Embryo Maturation in Morus alba L. Scientia Horticulturae, 102 359–368.
  3. Corrales-Lopez M, Gella R, Marin JA, Toribio F, (1998). Elimination of Fig Mosaic from Fig Shoot-Tip Cultures by Thermotherapy. Acta Horticulturae, 480: 173-178.
  4. Çalışkan O (2012). Türkiye’de Sofralık İncir Yetiştiriciliğinin Mevcut Durumu ve Geleceği. U. Ü. Ziraat Fakültesi Dergisi, cilt 26, sayı 2: 71-87.
  5. Çömlekçioğlu S (2003). Bazı İncir ( Ficus carica L.) Genotiplerinin Meristem Kültürü Yolu ile Çoğaltılması. Yüksek Lisans Tezi, Çukurova Üniversitesi,
  6. Adana. Demiralay A, Yalcin-Mendi Y, Aka-Kacar, SY, Cetiner S (1998). In vitro Propagation of Ficus carica L. var. Bursa Siyahı Through Meristem Culture. Acta Horticulturae, 480:165-7.
  7. Dhage SS, Pawar BD, Chimote VP, Jadhav AS, Andkale AA (2012). In vitro Callus Induction and Plantlet Regeneration in Fig (Ficus carica L.). Journal of Cell and Tissue Research vol. 12(3) 3395-3400.
  8. Edremit NF, Açıkgöz S, Gurel A, Hayta Ş (2012). Production of Virus-Free Fig Plantlets by Shoot Tip Culture and Thermoterapy and Virus Detection of in vitro Plantlets Through RT-PCR. Uluslararası Gıda Tarım ve Gastronomi Kongresi, (15-19 Şubat 2012),
  9. Antalya. El-Dessoky S, Dessoky Attia O, Attia, El-Awady A. M. Mohamed (2016). An Efficient Protocol for in vitro Propagation of Fig (Ficus carica sp) and Evaluation of Genetic Fidelity Using RAPD and ISSR markers. J App Biol Biotech. 4 (04): 057-063. DOI: 10.7324/JABB.2016.40406 Fraguas BC, Pasqual M, Dutra FL, Cazerra OJ (2004). Micropropagation of Fig (Ficus carica L.) Roxo de Valinhos Plants. In Vitro Cell. Dev. Biological-Plant, 40: 471–474.
  10. Ferreira EA, Pasqual M, Rezende JC (2007). 2,4-D and Kinetin in Callogenesis of Ficus carica L. Fruit Crops & Trop. Species (R.E. Litz And R. Scorza Eds.). Acta Horticulturae, 738. Gerçekçioğlu R, Bilgener Ş, Soylu A. (2008). Genel Meyvecilik. Nobel Yayın Dağıtım, Ankara.
  11. Günver G, Ertan E (1998). A Study on the Propagation of Figs by the Tissue Culture Techniques. Acta Horticulturae, 480: 169-172.
  12. Hepaksoy S, Aksoy U (2006). Propagation of Ficus carica L. Clones by in vitro Culture. Biologia Plantarum, 50 (3): 433-436.
  13. Hepaksoy S, Aksoy U (2008). In vitro Propagation of Ficus carica cv. Sarilop Clone Selected For Its High Performance. Acta Horticulturae 798: 199-204.
  14. Horstman A, Be