Dergiler / Akademik Gıda / 2017 / Cilt: 15 - Sayı: 1

Fındık, Zeytin ve Pamuk Yağlarında Peroksit Oluşum Kinetiği

Kinetics of Peroxide Formation in Hazelnut, Olive and Cottonseed Oils

Sayfa
36–42
Yayın Tarihi
2022-10-11
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Fındık, pamuk ve zeytin yağlarının toplam tokoferol içeriklerinin ise sırasıyla, 101.14, 232.7 ve 37.93 mg/kg olduğu tespit edilmiştir.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Bu çalışmada hızlandırılmış oksidasyon koşullarında (45, 60 ve 75°C sıcaklık, 1 mL/s hızında hava akımı) ticari fındık, pamuk ve zeytinyağı örneklerinde peroksit oluşumu araştırılmıştır.
📊
Temel Bulgular & Veri:Fındık, pamuk ve zeytin yağlarının toplam tokoferol içeriklerinin ise sırasıyla, 101.14, 232.7 ve 37.93 mg/kg olduğu tespit edilmiştir.
💡
Sonuç & Katkı:Çalışmada kullanılan yağlar arasında pamuk yağının peroksit oluşumu için en yüksek aktivasyon enerjisine gereksinim duyduğu tespit edilmiştir.
🔬Tür:Araştırma Makalesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Alan Parametreleri

Özet

Bu çalışmada hızlandırılmış oksidasyon koşullarında (45, 60 ve 75°C sıcaklık, 1 mL/s hızında hava akımı) ticari fındık, pamuk ve zeytinyağı örneklerinde peroksit oluşumu araştırılmıştır. Çalışmada kullanılan fındık ve zeytinyağlarının yağ asidi kompozisyonları analizinde yüksek düzeyde oleik asit içerdiği, pamuk yağının ise palmitik ve linoleik asit açısından zengin olduğu saptanmıştır. Fındık, pamuk ve zeytin yağlarının toplam tokoferol içeriklerinin ise sırasıyla, 101.14, 232.7 ve 37.93 mg/kg olduğu tespit edilmiştir. Verilerin kinetik değerlendirilmesi, sıcaklık artışıyla peroksit oluşumunun 0. dereceden reaksiyona yaklaştığını ve reaksiyon hız sabitinin artış gösterdiğini ortaya koymaktadır. Fındık, zeytin ve pamuk yağlarında peroksit oluşumu için gerekli aktivasyon enerjisi değerleri sırasıyla, 83.02, 80.85 ve 105.90 kJ/mol ve frekans faktörü değerleri sırasıyla, 3.98x1012, 2.52x1012 ve 2.91x1016 h-1 olarak saptanmıştır. Çalışmada kullanılan yağlar arasında pamuk yağının peroksit oluşumu için en yüksek aktivasyon enerjisine gereksinim duyduğu tespit edilmiştir.

Abstract

In this study, peroxide formation in hazelnut, olive and cottonseed oils was determined under accelerated oxidation conditions (45, 60 and 75°C, 1 mL/s air flow velocity). While hazelnut and olive oils had high oleic acid contents, cottonseed was high in palmitic and linoleic acid contents. Total tocopherol contents of hazelnut, cottonseed and olive oils were 101.14, 232.7 and 37.93 mg/kg, respectively. The kinetic analysis of data showed that reaction order approached to zero with an increase in temperature, and reaction rate constants increased. The activation energies and frequency factors of hazelnut, olive, and cottonseed oils for peroxide formation were 83.02, 80.85 and 105.90 kJ/mol and 3.98x1012, 2.52x1012 and 2.91x1016 h-1,respectively. Among studied oils, cottonseed oil had a higher activation energy value for peroxide formation.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

BAKKALBAŞI, E., CAVİDOĞLU, İ., KAYA, S. (2022). Fındık, Zeytin ve Pamuk Yağlarında Peroksit Oluşum Kinetiği. Akademik Gıda, Cilt: 15 - Sayı: 1, 36–42. https://ajindex.com/articles/432647

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (13)

  1. Quiles, J.L., Ramirez-Tortosa, M.C., Gomez, J.A., Huertas, J.R., Mataix, J., 2002. Role of vitamin E and phenolic compounds in the antioxidant capacity, measured by ESR, of virgin olive, olive and sunflower oils after frying. Food Chemistry 76(4): 461-468
  2. Tan, C.P., Che Man, Y.B., Selamat, J., Yusoff, M.S.A., 2002. Comparative study of oxidative stability of edible oils by differential scanning calorimetry and oxidative stability index method. Food Chemistry 76: 385-389
  3. Andrikopoulus, N.K., Kalogeropoulus, N., Falirea, A., Barbagianni, M.N., 2002. Performance of virgin olive oil and vegetable shortening during domestic deep-frying and pan-frying of potatoes. International Journal of Food Science and Technology 37(2): 177-190
  4. Kayahan, M., 2003. Yağ Kimyası
  5. Basım, ODTÜ Yayıncılık, Ankara, Türkiye, 220 s
  6. Shahidi, F., Wanasundara, U.N., 2002. Methods For Measuring Oxidative Rancidity in Fats and Oils. In Food Lipids-Chemistry, Nutrition, and Biotechnology, Edited by C.C. Akoh and D.B. Min, 2 nd ed., Marcel Dekker Inc., New York, USA, pp. 465-487
  7. Mao, J., Zhang, H., Luo, J., Li, L., Zhao, R., Zhang, R., Liu, G., 2006. New method for HPLC separation and fluorescence detection of malonaldehyde in normal human plasma. Journal of Chromatography B 832: 103-108
  8. Farhoosh, R., Niazmand, R., Rezaei, M., Sarabi, M., 2008. Kinetic parameter determination of vegetable oil oxidation under Rancimat test conditions. European Journal of Lipid Science and Technology 110: 587-592
  9. Gomez-Alonso, S., Mancebo-Campos, V., Salvador, M.D., Fregapane, G., 2004. Oxidation kinetics in olive oil triacylglycerols under accelerated shelf-life testing (25-75°C). European Journal of Lipid Science and Technology 106: 369-375
  10. Basturk, A., Javidipour, I., Boyaci, I.H., 2007. Oxidative stability of natural and chemically interesterified cottonseed, palm and soybean oils. Journal of Food Lipids 14: 170-188
  11. IUPAC, 1991. Preparation of the fatty acid methyl esters (method no. 2.301). In Standard Methods for Analysis of Oils, Fats and Derivatives, 7th ed., Blackwell Scientific Publications, Oxford, Great Britain
  12. Surai, P.F., Noble, R.C., Speake, B.K., 1996. Tissue-specific differences in antioxidant distribution and susceptibility to lipid peroxidation during development of the chick embryo. Biochimica et Biophysica Acta 1304(1): 1–10
  13. Karadas, F., Wood, N.A.R., Surai, P.F., Sparks, N.H.C., 2005. Tissue-specific distribution of carotenoi