Dergiler / Acta Aquatica Turcica / 2022 / Cilt: 18 - Sayı: 3

Farklı Yumurta Sarısı Kaynaklarının Pullu Sazan (Cyprinus carpio) Spermasının Kriyoprezervasyonu Üzerine Koruyucu Etkileri

Protective Effects of Different Egg Yolk Sources on Cryopreservation of Scaly Carp (Cyprinus carpio) Sperm

Sayfa
393–402
Yayın Tarihi
2022-10-12
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Çalışmanın sonuçları, pullu sazan sperminin dondurularak saklanmasında sukroz bazlı sulandırıcı kullanıldğında, tavuk yumurtası sarısı yerine ördek yumurtası sarısının alternatif olarak kullanılabileceğini göstermiştir.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Özet: Yumurta sarısı, özellikle memeli türlerine ait sperm hücrelerinin dondurularak saklanmasında kullanılan sulandırıcıların en yaygın kriyoprotektif bileşenlerinden biridir.
📊
Temel Bulgular & Veri:Dolayısıyla, balık sperm hücrelerinin dondurularak saklanmasındaki etkinlikleri hakkında bilgi eksikliği bulunmaktadır.
💡
Sonuç & Katkı:Çalışmanın sonuçları, pullu sazan sperminin dondurularak saklanmasında sukroz bazlı sulandırıcı kullanıldğında, tavuk yumurtası sarısı yerine ördek yumurtası sarısının alternatif olarak kullanılabileceğini göstermiştir.
🔬Tür:Laboratuvar & Saha Deneyi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:kriyoprezervasyon · yumurta sarısı · fertilite

Özet

Özet: Yumurta sarısı, özellikle memeli türlerine ait sperm hücrelerinin dondurularak saklanmasında kullanılan sulandırıcıların en yaygın kriyoprotektif bileşenlerinden biridir. Dolayısıyla, balık sperm hücrelerinin dondurularak saklanmasındaki etkinlikleri hakkında bilgi eksikliği bulunmaktadır. Bu nedenle bu çalışmanın amacı, farklı kanatlı türlerine (ördek, kaz ve tavuk) ait yumurta sarılarının, kriyoprezervasyonu takiben pullu sazan (Cyprinus carpio) spermasının çözüm sonu kalite ve fertilizasyon yeteneği üzerindeki etkinliklerinin karşılaştırılmasıydı. Sukroz bazlı sulandırıcı ile 1:10 oranında dilüe edilen sperm örneklerine %10, 15 ve %20 oranlarında farklı kanatlı yumurtası sarıları ilave edildi. Kontrol grubunda ise sperm örnekleri, yumurta sarısı içermeyen sukroz bazlı sulandırıcı ile dilüe edildi. Dilüsyon işlemini takiben, sperm örnekleri +4⁰C'de 10 dakika ekilibere edilerek 0,25 ml'lik payetlere çekildi. Daha sonra sperm hücreleri sıvı nitrojen (LN2) yüzeyinin 3 cm üzerinde dondurularak doğrudan sıvı azota (LN2) aktarıldı. Dondurulan sperm hücreleri 35 ⁰C su banyosunda 30 sn süre ile çözdürüldü ve 1x105 spermatozoa/yumurta oranı kullanılarak fertilizasyon işlemi gerçekleştirildi. Sonuçlara göre, sperm hücreleri sukroz bazlı sulandırıcıda %20 ördek yumurtası sarısı ile takviye edildiğinde, kontrol grubu ile karşılaştırıldığında en iyi çözüm sonu progresif motilite (%67,8 ±1,24), progresif motilite süresi (32,6 ±1,45 s), canlılık (%82,4 ±1,36) ve fertilite (%92,6 ±1,28) değerleri elde edilmiştir (P<0.05). Çalışmanın sonuçları, pullu sazan sperminin dondurularak saklanmasında sukroz bazlı sulandırıcı kullanıldğında, tavuk yumurtası sarısı yerine ördek yumurtası sarısının alternatif olarak kullanılabileceğini göstermiştir.

Abstract

Egg yolk is one of the most widely used cryoprotective components of extenders, especially for the cryopreservation of mammalian species’ sperm cells. However, there is a lack of information regarding their efficacy in cryopreservation of fish sperm cells. Thus, the objective of this experiment was to compare the effectiveness of egg yolk from different avian species (duck, goose, and chicken) on post-thaw quality and fertilization ability of scaly carp (Cyprinus carpio) semen following cryopreservation. Sperm samples diluted with the sucrose-based extender at the ratio of 1:10 were supplemented with 10, 15, and 20% ratios of different avian egg yolks. In the control group, sperm samples were diluted with the sucrose-based extender, without egg yolk. Following dilution, sperm samples were equilibrated at +4⁰C for 10 min and aspirated into 0.25-ml straws. Then, sperm samples were frozen 3 cm above the liquid nitrogen (LN2) surface and plunged directly into the LN2. The frozen sperm cells were thawed in a water bath at 35 ⁰C for 30 s and fertilization was carried out using a 1x105 spermatozoa/egg ratio. Based on the results, supplementation of sperm cells with 20 % duck egg yolk in a sucrose-based extender exhibited the best post-thaw progressive motility (67.8 ±1.24%), progressive motility duration (32.6 ±1.45 s), viability (82.4 ±1.36%), and fertility (92.6 ±1.28%) compared to the control group (P<0.05). The results of the experiment showed that duck egg yolk could be used as an alternative instead of chicken egg yolk in a sucrose-based extender for the cryopreservation of scaly carp sperm.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

BOZKURT, Y., AVLAR, H. (2022). Farklı Yumurta Sarısı Kaynaklarının Pullu Sazan (Cyprinus carpio) Spermasının Kriyoprezervasyonu Üzerine Koruyucu Etkileri. Acta Aquatica Turcica, Cilt: 18 - Sayı: 3, 393–402. https://ajindex.com/articles/427481

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (11)

  1. Aboagla, E.M., & Terada, T. (2004). Effects of egg yolk during the freezing step of cryopreservation on the viability of goat spermatozoa. Theriogenology, 62 (6), 1160-1172. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2004.01.013
  2. Akhter, S., Rakha, B., Ansari, M., Husna, A., Iqbal, S., & Khalid, M. (2017). Evaluation of quail and turkey egg yolk for cryopreservation of Nili-Ravi buffalo bull semen. Theriogenology, 87, 259-265. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2016.09.002
  3. Ali, A.B.T., Bomboi, G., & Floris, B. (2013). Replacing chicken yolk with yolks from other sources in ram semen diluents and their effects on fertility in vitro. Small Ruminant Research, 113 (2-3), 405-410. https://doi.org/10.1016/j.smallrumres.2013.01.017
  4. Andrabi, S.M.H. (2009). Factors affecting the quality of cryopreserved buffalo (Bubalus bubalis) bull spermatozoa. Reproduction in Domestic Animals, 44 (3), 552-569. https://doi.org/10.1111/j.1439-0531.2008.01240.x
  5. Bathgate, R., Maxwell, W., & Evans, G. (2006). Studies on the effect of supplementing boar cryopreservation media with different avian egg yolk types on in vitro post-thaw sperm quality. Reproduction in Domestic Animals, 41 (1), 68-73. https://doi.org/10.1111/j.1439-0531.2006.00623.x
  6. Bjorndahl, L., Söderlun, I., & Kvist, U. (2003). Evaluation of the one-step eosin-nigrosin staining technique for human sperm vitality assessment. Human Reproduction, 18, 813-816. https://doi.org/10.1093/humrep/deg199
  7. Bozkurt, Y., Yavas, I., & Yıldız, C. (2014). Effect of different avian egg yolk types on fertilization ability of cryopreserved common carp (Cyprinus carpio) spermatozoa. Aquaculture International, 22, 131-139. https://doi.org/10.1007/s10499-013-9728-4
  8. Bozkurt, Y., Yavas, I., Gul, A., Bucak, M.N., Yeni, D., & Avdatek, F. (2019). Effect of extender supplemented with boron on post-thaw motility, viability, DNA damage and fertilization ability of cryopreserved brown trout (Salmo trutta macrostigma) spermatozoa. Cryo Letters, 40 (5), 275-283.
  9. Bozkurt, Y. (2019). Introductory chapter: Cryopreservation biotechnology in aquatic science. In: Bozkurt Y (ed.) Biological research in aquatic science pp. 3-8.
  10. IntechOpen Publications, London, United Kingdom. https://doi.org/10.5772/intechopen.85901
  11. Bozkurt, Y., & Yavas, I. (2021). Effect of supplementations of docosahexaenoic acid (DHA) into a Tris-glucose based extender on the post-thaw sperm quality, fertility and hatching rates in brown trout (Salmo trutta macrostigma) following cryopreser