Dergiler / Acta Medica Alanya / 2020 / Cilt: 4 - Sayı: 1

PFOS ile tedavi edilen Sertoli hücre kültüründe ezrin ve fascin 1'in araştırılması: İn vitro bir çalışma

Evaluation of ezrin and fascin 1 in the PFOS treated Sertoli cell culture: An in vitro study

Sayfa
16–20
Yayın Tarihi
2022-09-04
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Amaç: Bu çalışmada, Ezrin ve Fascin 1’in in vivo olarak baskılanması sonucundaki bulgularla birlikte, Kan testis bariyeri (KTB) yapısının bozulması ve primer Sertoli hücre kültüründe, Perflorooktansülfonat (PFOS) muamelesinden sonra F-aktin demetlenmesinin gösterilmesi amaçlanmaktadır.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Amaç: Bu çalışmada, Ezrin ve Fascin 1’in in vivo olarak baskılanması sonucundaki bulgularla birlikte, Kan testis bariyeri (KTB) yapısının bozulması ve primer Sertoli hücre kültüründe, Perflorooktansülfonat (PFOS) muamelesinden sonra F-aktin demetlenmesinin gösterilmesi amaçlanmaktadır.
📊
Temel Bulgular & Veri:Çalışma Tasarımı: Primer Sertoli hücre izolasyonu, kontrol ve PFOS ile muamele edilen (20μM) gruplarla yapıldı.
💡
Sonuç & Katkı:Tartışma: Sonuç olarak bu bulgular, PFOS aracılı Sertoli hücre bozulmasında, Ezrin ve Fascin 1'in KTB bütünlüğünü korumak için F-aktin organizasyonunu düzenleyerek birlikte çalışabileceğini desteklemektedir.
🔬Tür:Araştırma Makalesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Alan Parametreleri

Özet

Amaç: Bu çalışmada, Ezrin ve Fascin 1’in in vivo olarak baskılanması sonucundaki bulgularla birlikte, Kan testis bariyeri (KTB) yapısının bozulması ve primer Sertoli hücre kültüründe, Perflorooktansülfonat (PFOS) muamelesinden sonra F-aktin demetlenmesinin gösterilmesi amaçlanmaktadır. Çalışma Tasarımı: Primer Sertoli hücre izolasyonu, kontrol ve PFOS ile muamele edilen (20μM) gruplarla yapıldı. Sertoli hücre konsantrasyonu her iki deney için 0.5 x 106 hücre/ml olacak şekilde hazırlandı. Metod: Hem Fascin 1'in Sertoli hücrelerinde Ezrin ile birlikte lokalizasyonunu değerlendirmek üzere çift etiketli immünofloresan analizi yapıldı, hem de seminifer tübül lizatlarından aktin ve Ezrin proteinlerinin Fascin 1 proteini ile spesifik protein-protein etkileşimini tanımlamak için Co-IP deneyi uygulandı. Bulgular: İlk olarak, ektoplazma özelleşmesi bileşenleri olan Ezrin ve Fascin 1 in Sertoli hücrelerinde ko-lokalize olduğu ve birbirleri ile etkileşime girdiği gösterilmiştir. İkinci olarak ise PFOS ile muamele edilen Sertoli hücrelerinde Ezrin ve Fascin 1 dislokasyonu gösterilmiştir. 20μM PFOS uygulandığında aktin tabanlı hücre iskeleti KTB’deki hüce-hücre bağlantı bölgelerindeki aktin düzenleyici proteinlerin yayılmasını ve/veya lokalizasyonunu destekleyememiştir. Tartışma: Sonuç olarak bu bulgular, PFOS aracılı Sertoli hücre bozulmasında, Ezrin ve Fascin 1'in KTB bütünlüğünü korumak için F-aktin organizasyonunu düzenleyerek birlikte çalışabileceğini desteklemektedir.

Abstract

Aim: Depending on the findings resulting from the knock-downing of ezrin and of fascin 1 in vivo, we aim to show the defects or disruption of the blood-testis barrier (BTB)structure and F-actin bundling after Perfluorooctanesulfonate (PFOS) treatment inprimary Sertoli cell culture.Study Design: Primary Sertoli cell isolation was occurred with control andPFOS-treated (20M) groups. Sertoli cells were prepared for both experiments as0.5 x 106 cell/ml.Methods: Dual-labeled immunofluorescence analysis to assess co-localization offascin 1 with ezrin both in Sertoli cells was performed, and Co-IP, by using lysates ofseminiferous tubules, was performed using actin and ezrin proteins to identify specificprotein-protein interaction with fascin 1.Results: Firstly, we showed that ezrin and fascin 1, which were components ofthe ectoplasmic specialization were co-localized in the Sertoli cells and also theywere interacted each other. Secondly, we indicated that they were dislocated in thePFOS-treated Sertoli cells in vitro. Because of PFOS (20M), the actin-based cytoskeleton was no longer capable of supporting the distribution and/or localization ofactin-regulatory proteins at the cell-cell interface necessary to maintain localizationof actin-regulatory at the BTB.Conclusion: In summary, these findings suggest that ezrin and fascin 1 can worktogether to preserve BTB integrity by regulating F-actin organization in the PFOS-mediated Sertoli cell disruption.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

ORDUERİ, N. E. G. (2022). PFOS ile tedavi edilen Sertoli hücre kültüründe ezrin ve fascin 1'in araştırılması: İn vitro bir çalışma. Acta Medica Alanya, Cilt: 4 - Sayı: 1, 16–20. https://ajindex.com/articles/425816

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (14)

  1. Wen Q, Tang EI, Gao Y, Jesus TT, Chu DS, Lee WM, et al. Signaling pathways regulating blood-tissue barriers - Lesson from the testis. Biochim Biophys Acta Biomembr. 2018
  2. 1860(1):141-53. PMID: 28450047 2. Xiao X, Yang WX. Actin-based dynamics during spermatogenesis and its significance. J Zhejiang Univ Sci B. 2007
  3. 8(7):498-506. PMID: 17610330 3. Song HW, Wilkinson MF. In vitro spermatogenesis: A long journey to get tails. Spermatogenesis. 2012
  4. 2(4):238-44. PMID: 23248764 4. Fehon RG, McClatchey AI, Bretscher A. Organizing the cell cortex: the role of ERM proteins. Nat Rev Mol Cell Biol. 2010
  5. 11(4):276-87. PMID: 20308985 5. McClatchey AI. Merlin and ERM proteins: unappreciated roles in cancer development? Nat Rev Cancer. 2003
  6. 3(11):877-83. PMID: 14668818 6. Gungor-Ordueri NE, Tang EI, Celik-Ozenci C, Cheng CY. Ezrin is an actin binding protein that regulates sertoli cell and spermatid adhesion during spermatogenesis. Endocrinology. 2014
  7. 155(10):3981-95. PMID: 25051438 7. Edwards RA, Bryan J. Fascins, a family of actin bundling proteins. Cell Motil Cytoskeleton. 1995
  8. 32(1):1-9. PMID: 8674129 8. Yamashiro-Matsumura S, Matsumura F. Intracellular localization of the 55-kD actin-bundling protein in cultured cells: spatial relationships with actin, alpha-actinin, tropomyosin, and fimbrin. J Cell Biol. 1986
  9. 103(2):631-40. PMID: 3525578 9. Paul AG, Jones KC, Sweetman AJ. A first global production, emission, and environmental inventory for perfluorooctane sulfonate. Environ Sci Technol. 2009
  10. 43(2):386-92. PMID: 19238969 10. Betts KS. Perfluoroalkyl acids: what is the evidence telling us? Environ Health Perspect. 2007
  11. 115(5):A250-6. PMID: 17520044 11. Peden-Adams MM, Stuckey JE, Gaworecki KM, Berger-Ritchie J, Bryant K, Jodice PG, et al. Developmental toxicity in white leghorn chickens following in ovo exposure to perfluorooctane sulfonate (PFOS). Reprod Toxicol. 2009
  12. 27(3-4):307-18. PMID: 19071210 12. Hoffman K, Webster TF, Weisskopf MG, Weinberg J, Vieira VM. Exposure to polyfluoroalkyl chemicals and attention deficit/hyperactivity disorder in U.S. children 12- 15 years of age. Environ Health Perspect. 2010
  13. 118(12):1762-7. PMID: 20551004 13. Gao Y, Chen H, Xiao X, Lui WY, Lee WM, Mruk DD, et al. Erratum: Perfluorooctanesulfonate (PFOS)-induced Sertoli cell injury through a disruption of F-actin and microtubule organization is mediated by Akt1/2. Sci Rep. 2017
  14. 7(1):6950. PMID: 28747671 14. Wan HT, Zhao YG, Wei X, Hui KY, Giesy JP, Wong CK. PFOS-induced hepatic ste