Dergiler / Turkish Journal of Hematology / 2022 / Cilt: 39 - Sayı: 1

Leukemia Cells Resistant to Glutamine Deprivation Express Glutamine Synthetase Protein

Glutamin Yoksunluğuna Dirençli Lösemi Hücreleri Glutamin Sentetaz Proteini Eksprese Eder

Sayfa
22–28
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Exploiting the genetic and metabolic mechanisms responsible for GS protein expression could lead to the identification of new anticancer drug targets.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Objective: Low glutamine levels have been shown in tumor environments for several cancer subtypes.
📊
Temel Bulgular & Veri:Materials and Methods: Cell proliferation of K562, NB-4, and HL-60 cells was determined by calculating cell numbers in normal vs. low glutamine media.
💡
Sonuç & Katkı:Exploiting the genetic and metabolic mechanisms responsible for GS protein expression could lead to the identification of new anticancer drug targets.
🔬Tür:Araştırma Makalesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Alan Parametreleri

Özet

Objective: Low glutamine levels have been shown in tumor environments for several cancer subtypes. Therefore, it has been suggested that cancer cells rewire their metabolism to adopt low nutrient levels for survival and proliferation. Although glutamine is a non-essential amino acid and can be synthesized de novo, many cancer cells including malignant hematopoietic cells have been indicated to be addicted to glutamine. This study aimed to investigate the proliferation of leukemia cell lines in glutamine-deprived conditions. Materials and Methods: Cell proliferation of K562, NB-4, and HL-60 cells was determined by calculating cell numbers in normal vs. low glutamine media. Changes in mRNA expressions were investigated using qRT-PCR. The glutamine synthetase (GS)-encoding GLUL gene was knocked out (KO) in HL-60 cells using the CRISPR/Cas9 method and protein expression was evaluated with immunoblotting. Results: The proliferation of all cell lines was decreased in glutaminedeprived medium. GS protein expression was increased in glutaminelimited medium although the mRNA level did not change. Increased protein expression was confirmed with inhibition of new protein synthesis by treating cells with cycloheximide. To further investigate the role of GS protein, the GS-encoding GLUL gene was KO in HL-60 cells using the CRISPR/Cas9 method. GS KO cells proliferated less compared to control cells in glutamine-limited medium. Conclusion: Our results indicate that upregulated GS protein expression is responsible for glutamine addiction of leukemia cell lines. Exploiting the genetic and metabolic mechanisms responsible for GS protein expression could lead to the identification of new anticancer drug targets.

Abstract

Amaç: Farklı kanser alt tiplerinde tümör çevresinde düşük glutamin seviyeleri gösterilmiştir. Bu nedenle, kanser hücrelerinin hayatta kalmak ve çoğalabilmek için düşük besin seviyelerinde metabolizmalarını yeniden yapılandırdığı öne sürülmüştür. Glutamin esansiyel olmayan bir amino asit olmasına ve de novo sentezlenebilmesine rağmen, malign hematopoietik hücreler de dahil olmak üzere birçok kanser hücresinin glutamine bağımlı olduğu belirtilmiştir. Bu çalışmada lösemi hücre hatlarının glutaminden yoksun koşullarda çoğalmasının araştırılması amaçlandı. Gereç ve Yöntemler: K562, NB-4 ve HL-60 hücrelerinin hücre proliferasyonu, normal ve düşük glutamin ortamında hücre sayıları hesaplanarak belirlendi. mRNA ifadelerindeki değişiklikler qRT-PCR kullanılarak araştırıldı. Glutamin sentetaz (GS) kodlayan GLUL geni, CRISPR/Cas9 yöntemi kullanılarak HL-60 hücrelerinde susturuldu ve protein ekspresyonu immünoblotlama ile değerlendirildi. Bulgular: Tüm hücre hatlarının proliferasyonu, glutaminden yoksun ortamda azaldı. GS protein ekspresyonu, mRNA seviyesi değişmemesine rağmen, glutamin yoksun ortamda artmış olarak belirlendi. Artan protein ekspresyonu, hücrelere sikloheksimid ile muamele edilerek yeni protein sentezinin inhibisyonu immünoblotlama ile tespit edildi. GS proteininin rolünü daha fazla araştırmak için, GS kodlayan GLUL geni, CRISPR/Cas9 yöntemi kullanılarak HL-60 hücrelerde susturuldu. GS susturulmuş hücreler glutamin sınırlı ortamda kontrol hücrelerine kıyasla daha az çoğaldı. Sonuç: Sonuçlarımız, artmış GS protein ekspresyonunun lösemi hücrelerinde glutamin bağımlılığından sorumlu olduğunu göstermektedir. GS protein ekspresyonunun düzenlenmesinde görev alan genetik ve metabolik mekanizmaların aydınlatılması ile yeni kanser önleyici ilaç hedefleri tanımlanabilir.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

YUCEL, B., ADA, S. (2022). Leukemia Cells Resistant to Glutamine Deprivation Express Glutamine Synthetase Protein. Turkish Journal of Hematology, Cilt: 39 - Sayı: 1, 22–28. https://ajindex.com/articles/411522

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (16)

  1. Döhner H, Weisdorf DJ, Bloomfield CD. Acute myeloid leukemia. New Engl J Med 2015;373:1136-1152
  2. Appelbaum FR, Gundacker H, Head DR, Slovak ML, Willman CL, Godwin JE, Anderson JE, Petersdorf SH. Age and acute myeloid leukemia. Blood 2006;107:3481-3485
  3. Abdel-Wahab O, Levine RL. Mutations in epigenetic modifiers in the pathogenesis and therapy of acute myeloid leukemia. Blood 2013;121:3563- 3572
  4. DeBerardinis RJ, Sayed N, Ditsworth D, Thompson CB. Brick by brick: metabolism and tumor cell growth. Curr Opin Genet Dev 2008;18:54-61
  5. DeBerardinis RJ, Cheng T. Q’s next: the diverse functions of glutamine in metabolism, cell biology and cancer. Oncogene 2010;29:313-324
  6. Altman BJ, Stine ZE, Dang CV. From Krebs to clinic: glutamine metabolism to cancer therapy. Nat Rev Cancer 2016;16:619-634
  7. DeBerardinis RJ, Mancuso A, Daikhin E, Nissim I, Yudkoff M, Wehrli S, Thompson CB. Beyond aerobic glycolysis: transformed cells can engage in glutamine metabolism that exceeds the requirement for protein and nucleotide synthesis. Proc Natl Acad Sci U S A 2007;104:19345-19350
  8. Cairns RA, Harris IS, Mak TW. Regulation of cancer cell metabolism. Nat Rev Cancer 2011;11:85-95
  9. Bott AJ, Maimouni S, Zong WX. The pleiotropic effects of glutamine metabolism in cancer. Cancers 2019;11:770
  10. Yoo HC, Yu YC, Sung Y, Han JM. Glutamine reliance in cell metabolism. Exp Mol Med 2020;52:1496-516
  11. Yuneva M, Zamboni N, Oefner P, Sachidanandam R, Lazebnik Y. Deficiency in glutamine but not glucose induces MYC-dependent apoptosis in human cells. J Cell Biol 2007;178:93-105
  12. Gaglio D, Soldati C, Vanoni M, Alberghina L, Chiaradonna F. Glutamine deprivation induces abortive S-phase rescued by deoxyribonucleotides in K-Ras transformed fibroblasts. PLoS One 2009;4:e4715
  13. Tate JG, Bamford S, Jubb HC, Sondka Z, Beare DM, Bindal N, Boutselakis H, Cole CG, Creatore C, Dawson E, Fish P, Harsha B, Hathaway C, Jupe SC, Kok CY, Noble K, Ponting L, Ramshaw CC, Rye CE, Speedy HE, Stefancsik R, Thompson SL, Wang S, Ward S, Campbell PJ, Forbes SA. COSMIC: The Catalogue of Somatic Mutations in Cancer. Nucleic Acids Res 2019;47:D941-D947
  14. Untergasser A, Cutcutache I, Koressaar T, Ye J, Faircloth BC, Remm M, Rozen SG. Primer3--new capabilities and interfaces. Nucleic Acids Res 2012;40:e115-e
  15. DeBerardinis RJ, Lum JJ, Hatzivassiliou G, Thompson CB. The biology of cancer: metabolic reprogramming fuels cell growth and proliferation. Cell Metab 2008;7:11-20
  16. Sullivan