Dergiler / Yüzüncü Yıl Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi / 2012 / Cilt: 23 - Sayı: 3

Determinationin Diyarbakır of Prevalence of Pathogenic Leptospira spp.by Real-Time PCR in Cattle

Diyarbakır Bölgesindeki sığırlarda Patojenik Leptospira spp Prevalansının Real-time PCR yöntemi ile tespiti

Sayfa
137–139
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Leptospira şüpheli 96 sığırdan elde edilen idrar örneklerinden 9 (%9.4) adetinde hap1 geninin varlığı tespit edilmiştir.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Bu çalışmada Diyarbakırdaki kesimhanelerde kesilen sığırların kan ve idrar örneklerinde real time PCR yöntemiyle patojenik Leptospira prevalansının ortaya konulması amaçlanmıştır.
📊
Temel Bulgular & Veri:Bu çalışmanın materyalini üç büyük kesimhanedeki sığırlardan 96 sığırdan toplanan idrar ve kan örnekleri oluşturdu.
💡
Sonuç & Katkı:Leptospira şüpheli 96 sığırdan elde edilen idrar örneklerinden 9 (%9.4) adetinde hap1 geninin varlığı tespit edilmiştir.
🔬Tür:Araştırma Makalesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Alan Parametreleri

Özet

Bu çalışmada Diyarbakırdaki kesimhanelerde kesilen sığırların kan ve idrar örneklerinde real time PCR yöntemiyle patojenik Leptospira prevalansının ortaya konulması amaçlanmıştır. Bu çalışmanın materyalini üç büyük kesimhanedeki sığırlardan 96 sığırdan toplanan idrar ve kan örnekleri oluşturdu. Bu örneklerde patojen Leptospiraların varlığı real-time PCR yöntemiyle araştırıldı. Patojenik Leptospiraları etkenlerini varlığını ortaya koymak için hap 1 geninin tespit etme temeline dayanan yöntem kullanılmıştır. Leptospira şüpheli 96 sığırdan elde edilen idrar örneklerinden 9 (%9.4) adetinde hap1 geninin varlığı tespit edilmiştir. Aynı hayvanlardan alınan kan örneklerinde pozitifliğe rastlanılmamıştır. Bu nedenle, taşıyıcı hayvanların erken teşhisi, leptospiral enfeksiyonun diğer hayvanlara ve insanlara bulaşmasının önlenmesi bakımından son derece önemlidir.

Abstract

In this study, we aimed to investigate prevalence of Leptospira at blood and urine samples from cattle slaughtered in Diyarbakır slaughterhouse with methods of real-time PCR. Urine and blood samples collected from 96 cattle in three major abattoirs formed the material of this study. The existence of pathogenic Leptospira in these samples was investigated with which based on the segment hap1 specific of pathogenic Leptospira. In 9 (9.4%) of urine samples of 96 suspected cattle’s, hap1 gene was found. The positive results weren’t obtained in serum samples collected from same cattle. Therefore, the early identification of carrier animals is crucial to prevent the spread of leptospiral infection to other animals and humans.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

ALP, S. Y., ARSERİM, İ. N. B., IŞIK, N., İÇEN, H. (2012). Determinationin Diyarbakır of Prevalence of Pathogenic Leptospira spp.by Real-Time PCR in Cattle. Yüzüncü Yıl Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi, Cilt: 23 - Sayı: 3, 137–139. https://ajindex.com/articles/339854

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (4)

  1. Adler B, Moctezuma A (2010). Leptospira and leptospirosis. Vet Microbiol, 140, 287–296. Aslantas O, Ozdemir V (2005). Determination of the seroprevalence of leptospirosis in cattle by MAT and ELISA in Hatay, Turkey. Turk J Vet Anim Sci, 29, 1019-1024.
  2. Baer R, Turnberg W, Yu D, Wohrle R (2010). Leptospirosis in a small animal veterinarian: reminder to follow standardized infection control procedures. Zoonoses public health, 57, 281–284. Bal AE, Gravekamp C, Hartskeerl TRA, De Meza-Brewster J, Korver HTerpstra WJ (1994). Detection of leptospires in urine by PCR for early diagnosis of leptospirosis Journal Of Clinical Microbiology, 32(8), 1894- 1898. Bomfim MRQ, Ko A, Koury MC (2005). Evaluation of the recombinant LipL32 in enzyme-linked immunosorbent assay for the serodiagnosis of bovine leptospirosis. Vet Microbiol, 109, 89–94. Bomfim MRQ, Koury MC (2006). Evaluation of LSSP-PCR for identification of leptospira spp. in urine samples of cattle with clinical suspicion of leptospirosis. Vet Microbiol, 118, 278–288. Bomfim MRQ, Barbosa-Stancioli EF, Koury MC (2008). Detection of pathogenic leptospires in urine from naturally infected cattle by nested PCR. The Veterinary Journal, 178, 251–256. Branger C, Blanchard B, Fillonneau C, Suard I, Aviat F, Chevallier B, Andre ́-Fontaine G (2005). Polymerase chain reaction assay specific for pathogenic Leptospira based on the gene hap1 encoding the hemolysis-associated protein-1 FEMS Microbiology Letters, 243 437– 445. Cai HY, Hornby G, Key DW, Osuch MR, Maxie MG (2002). Preliminary study on differentiation of Leptospira grippotyphosa and Leptospira sejroe from other common pathogenic leptospiral serovars in canine urine by polymerase chain reaction assay. J Vet Diagn Invest, 14,164– 168. Cetinkaya B, Ertas HB, Muz A, Ongor H, Kalender H Ozdemir V (1999). Determination of seroprevalence of leptospirosis in cattle in Elazig. Turk J Vet Anim Sci, 23(3), 633-639.
  3. Cetinkaya B, Ertas H.B, Ongor H, Muz A (2000). Detection of leptospira species by Polymerase Chain Reaction (PCR) in urine of cattle. Turk J Vet Anim Sci, 24, 123–130. Ertas HB, Çetinkaya B, Muz A, Ongor H, Ozdemir V, Yazioglu N (2002). Determination of the seroprevalence of leptospira in cattle by MAT and ELISA Turk J Vet Anim Sci, 26 1415-1420
  4. Fearnley C, Wakeley PR, Gallego-Beltran J, Dalley C, Williamson S, Gaudie C, Woodward MJ (2008). The development of a real-time PCR to detect pathogenic Leptospira species in kidney tissue. Research in Veterinary Science, 8