Dergiler / Türk Tarım - Gıda Bilim ve Teknoloji dergisi / 2019 / Cilt: 7 - Sayı: 4

Patlıcanda In vitro Rejenerasyon Ortamında Farklı Orizalin ve Kolhisin Konsantrasyonlarının Tetraploid Bitki Üretimine Etkisi

The Effect of Different Oryzalin and Colchicine Concentrations Supplemented to In vitro Regeneration Medium on Tetraploid Plant Production in Eggplant

Sayfa
606–616
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Faselis F1 çeşidinde kolhisin ve orizalin uygulamaları sonucu üretilen tetraploid bitkilerde çiçek tozu canlılığı %86,41 ve %95,68, çimlenme ise %26,54 ve %28,47 olarak belirlenmiştir.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Bu çalışmanın amacı, Faselis F1 ve Karnaz F1 patlıcan çeşitlerinde kolhisin ve orizalinin in vitro rejenerasyon ortamında kullanılmasıyla tetraploid bitki elde etmektir.
📊
Temel Bulgular & Veri:Araştırmada, yaprak eksplantları 10 µM BA ve 1 µM IAA içeren katı MS rejenerasyon ortamında 5 ve 7 gün bekletilmiştir.
💡
Sonuç & Katkı:Faselis F1 çeşidinde kolhisin ve orizalin uygulamaları sonucu üretilen tetraploid bitkilerde çiçek tozu canlılığı %86,41 ve %95,68, çimlenme ise %26,54 ve %28,47 olarak belirlenmiştir.
🔬Tür:Deneysel Tarla Denemesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Alan Parametreleri

Özet

Bu çalışmanın amacı, Faselis F1 ve Karnaz F1 patlıcan çeşitlerinde kolhisin ve orizalinin in vitro rejenerasyon ortamında kullanılmasıyla tetraploid bitki elde etmektir. Araştırmada, yaprak eksplantları 10 µM BA ve 1 µM IAA içeren katı MS rejenerasyon ortamında 5 ve 7 gün bekletilmiştir. Ardından bu eksplantlara kolhisinin 2,5 ve 3,75 mM konsantrasyonları 8, 16 ve 32 saat süreyle; orizalinin ise 28,8 ve 43,2 µM konsantrasyonları 12, 24 ve 36 saat süreyle uygulanmış ve tekrar kolhisinsiz ve orizalinsiz rejenerasyon ortamına aktarılmıştır. Rejenerasyon ortamında oluşan kallus, tomurcuk veya kısa sürgünler 0,5 µM BA ile desteklenmiş MS ortamına alınarak bitkilerin oluşması sağlanmış ve ploidi seviyesi flow sitometri ile belirlenmiştir. Karnaz F1 çeşidinin eksplantlarına 3,75 mM kolhisin dozunun uygulaması sonucu, 2,5 mM’a göre daha yüksek tetraploid bitki oluşumu sağlanmıştır. Bu çeşitte uygulanan orizalin denemesinde ise en yüksek tetraploid bitki oluşumu, eksplantların 7 gün rejenerasyon ortamında bekletilmesinden sonra 43,2 µM orizalin konsantrasyonunun 24 saat uygulamasından elde edilmiştir. Karnaz F1 çeşidinde kolhisin ve orizalin uygulamasından elde edilen tetraploid bitkilerde çiçek tozu canlılığı %76,99 ve %81,19, çimlenme %19,14 ve %17,98 olarak gerçekleşmiştir. Faselis F1 çeşidinin rejenerasyon ortamında 7 gün bekletilen yaprak eksplantları 2,5 mM kolhisin konsantrasyonunda 8 ve 32 saat inkübe edildiğinde, diğer uygulamalara göre daha yüksek tetraploid bitki elde edilmiştir. Aynı çeşidin orizalin denemesinde, eksplantların 5 gün rejenerasyon ortamında bekletilmesi sonucu daha yüksek tetraploid bitki üretilmiştir. Faselis F1 çeşidinde kolhisin ve orizalin uygulamaları sonucu üretilen tetraploid bitkilerde çiçek tozu canlılığı %86,41 ve %95,68, çimlenme ise %26,54 ve %28,47 olarak belirlenmiştir.

Abstract

The objective of this study is to obtain tetraploid plants in eggplant cultivars, Faselis (F1) and Karnaz (F1), by applying colchicine and oryzalin in in vitro regeneration medium (RM: MS with 10 µM BA and 1 µM IAA). In the study, leaf explants which have been incubated on the solidified RM for 5 or 7 days were cultured on the same medium with 2.5 or 3.75 mM colchicine for 8, 16 or 32 hours; or with 28.8 or 43.2 µM oryzalin for 12, 24 or 36 hours. Then the explants were transferred to RM without colchicine and oryzalin. Callus, buds or short shoots formed in the RM were transferred to MS medium with 0.5 μM BA to obtain long plants. The ploidy levels of regenerants were determined by flow cytometry. In Karnaz, higher tetraploid plant formation was achieved from 3.75 mM colchicine compared to 2.5 mM colchicine. The highest tetraploid plant rate was obtained by applying of 43.2 µM oryzalin for 24 hours to the explants after incubation on the RM for 7 days. Pollen viability of the tetraploid plants produced by application of colchicine and oryzalin were 76.99% and 81.19% and germination were 19.14% and 17.98%. In Faselis, tetraploid plants were obtained by applying 2.5 mM colchicine to the explants for 8 or 32 hours after incubation on RM for 7 days. However, in the oryzalin experiment, the higher tetraploid plants were produced when the explants were incubated for 5 days in the RM. Pollen viability of the tetraploid plants obtained from applications of colchicine and oryzalin were 86.41% and 95.68% and germination were 26.54% and 28.47%.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

ÇEĞİL, İ., ÇÜRÜK, S. (2019). Patlıcanda In vitro Rejenerasyon Ortamında Farklı Orizalin ve Kolhisin Konsantrasyonlarının Tetraploid Bitki Üretimine Etkisi. Türk Tarım - Gıda Bilim ve Teknoloji dergisi, Cilt: 7 - Sayı: 4, 606–616. https://ajindex.com/articles/331062

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (10)

  1. Al Hakimi A, Monneveaux P, Nachit MM. 1998. Direct and indirect selection for drought tolerance in alien tetraploid wheat x durum wheat crosses. Euphytica, 100: 287-294. DOI: https://doi.org/10.1007/978-94-011-4896-2_49.
  2. Asensio IC, Prohens J, Gisbert C. 2014. Vigor for in vitro culture traits in S. melongena x S. aethiopicum hybrids with potential as rootstocks for eggplant. Sci. World J., ID 702071:1-8. DOI: http://dx.doi.org/10.1155/2014/702071.
  3. Bletsos F, Thanassoulopoulos C, Roupakias D. 2003. Effect of grafting on growth, yield and Verticillium wilt of eggplant. HortScience, 38: 183-186.
  4. Chavez R, Brown CR, Iwanaga M. 1988. Application of interspecific sesquiploidy to introgression of PLRV resistance from non-tuber-bearing Solanum etuberosum to cultivated potato germplasm. Theor. Appl. Genet., 76: 497- 500. DOI: 10.1007/BF00260898. Collonnier C, Fock I, Kashyap V, Rotino GL, Daunay MC, Lian Y, Mariska IK, Rajam MV, Servaes A, Ducreux G, Sihachakr D. 2001. Applications of biotechnology in eggplant. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 65: 91-107. DOI: https://doi.org/10.1023/A:1010674425536.
  5. Collonnier C, Fock I, Mariska I, Servaes A, Vedel F, SiljakYakovlev S, Souvannavong V, Sihachakr D. 2003. GISH confirmation of somatic hybrids between Solanum melongena and S. torvum: assessment of resistance to both fungal and bacterial wilts. Plant Physiol. Biochem., 41: 459- 470. DOI: https://doi.org/10.1016/S0981-9428(03)00054-8.
  6. Çağlar G, Bağcı S. 2004. Bazi Cucumis türleri arasindaki melezlemelerde embriyo kurtarma yoluyla in vitro hibrit bitki regenerasyonu. Akdeniz Üniversitesi Ziraat Fakültesi Dergisi, 17(2): 175-182.
  7. Çürük S, Dayan A, Tekeli FÖ. 2014a. İnterspesifik melez patlıcan bitkilerinde in vitro rejenerasyon. 10. Sebze Tarım Sempozyomu. Tekirdağ, 2-4/09/2014. ss: 302-309.
  8. Çürük S, Doksöz S, Külahlıoğlu İ. 2014b. Diploid ve tetraploid interspesifik hibrit patlıcan (Solanum melongena x Solanum torvum) genotiplerinde aşının çiçek tozu verimliliği ve bitki morfolojisi üzerine etkisi. Kesin sonuç raporu. Proje No:112O751 (TÜBITAK-TOVAG). Daunay MC. 2008. Eggplant. In: Prohens J, Nuez F (Eds). Handbook of crop breeding vegetables II: Fabaceae, Liliaceae, Umbelliferae and Solanacaea. New York, USA: Springer. pp:163-220. eBook ISBN: 978-0-387-74110-9.
  9. Daunay MC, Hazra P. 2012. Eggplant. In: Peter KV, Hazra P (Eds.). Handbook of Vegetables. Houston, TX, USA: Studium Press. Pp: 257-322.
  10. Dhooghe E, Van Laere K, Eeckhaut T, Leus L, Van Huylenbroeck J. 2011.