Dergiler / Van Veterinary Journal / 2016 / Cilt: 27 - Sayı: 1

Deneysel Karaciğer İntoksikasyonunda N Asetil Sisteinin Karaciğerdeki Bazı Lektinlerin Ekspresyonu ve Lokalizasyonu Üzerine Etkileri

Effects of N Acetylcysteine on Expression and Localization of Some Lectins in The Liver of Experimental Hepatic Intoxication

Sayfa
11–16
Yayın Tarihi
2016-04-20
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Sonuç olarak, hücrelerin CCl4’e bağlı karaciğer hasarından kendilerini korumak için oligosakkarit ünitelerini artırdığı görüldü.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Yapılan çalışmada karaciğer dokusunda, GSH öncüsü NAS intraperitonal uygulamalarının, karaciğerdeki bazı lektinlerin ekspresyonu ve lokalizasyonu üzerine etkilerinin belirlenmesi amaçlanmıştır.
📊
Temel Bulgular & Veri:Karaciğer toksisitesi oluşturmak amacıyla, sıçanlara CCl4,periton içi (i.p.) 1 ml/kg 1/1 oranında, zeytinyağındaki çözeltisi şeklinde, birer gün ara ile 3 defa enjekte edildi.
💡
Sonuç & Katkı:Sonuç olarak, hücrelerin CCl4’e bağlı karaciğer hasarından kendilerini korumak için oligosakkarit ünitelerini artırdığı görüldü.
🔬Tür:Araştırma Makalesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:CCl4 · EEL · GNL

Özet

Yapılan çalışmada karaciğer dokusunda, GSH öncüsü NAS intraperitonal uygulamalarının, karaciğerdeki bazı lektinlerin ekspresyonu ve lokalizasyonu üzerine etkilerinin belirlenmesi amaçlanmıştır. Karaciğer toksisitesi oluşturmak amacıyla, sıçanlara CCl4,periton içi (i.p.) 1 ml/kg 1/1 oranında, zeytinyağındaki çözeltisi şeklinde, birer gün ara ile 3 defa enjekte edildi. CCl4enjeksiyonundan 24 saat sonra eter anestezisi altında, karaciğer dokusu alındı. N Asetil Sisteinin koruyucu etkisinin belirlenmesi amacıyla, NAS uygulaması (periton içi 50 mg/kg/gün) CCl4enjeksiyonundan 3 gün önce başladı ve deney süresince devam etti. Hayvanların sonenjeksiyondan 24 saat sonra eter anestezisi altında karaciğer dokuları alındı. Karaciğer dokusundan alınan kesitlerde Galaktoza (EEL), Laktoza (RCA I) ve Mannoza (GNL)spesifik oligosakkarit üniteleribiotinlenmişişaretli lektinlerin kullanılması ile belirlendi.Reaksiyonların değerlendirilmesi ışık mikroskobunda gerçekleştirildi. Histokimyasal olarak reaksiyonlar; sentralobüler damar ve karaciğer dokusunun, sinüsoidal kapillerlerinde gözlemlendi. Hepatositlerde boyanma tespit edilmedi. Kontrollere göre CCl4grubunda, daha yoğun bir boyama tespit edildi. NAS ise boyama yoğunluğunu azalttı. Sonuç olarak, hücrelerin CCl4’e bağlı karaciğer hasarından kendilerini korumak için oligosakkarit ünitelerini artırdığı görüldü. NAS’ın, sıçanların hepatik hücrelerinde CCl4ile oluşturulan hasara karşı koruyucu ve tedavi edici etkileri olduğu gözlemlendi.

Abstract

The aim of this study was to investigate the effects of intraperitoneal applications NAC that is a GSH precursor,determine the effects of some lectins expression and localization of the liver. Liver toxicity of CCl4in rats in order to create, intraperitoneal (i.p.) 1 ml/kg 1/1 ratio of olive oil in the form of solution injected 3 times with an interval of one day. 24 hours after CCl4injection, liver tissue taken under ether anesthesia. In order to determine the protective effect of N Acetyl Cysteine, N Acetyl Cysteine application (i.p. 50 mg/kg/day) 3 days prior to CCl4injection started and continued during the experimental period. Animals liver tissue were taken 24. hours after the last injection under the ether anesthesia. Galactose (EEL), Lactose (R II) and Mannose (GNL) specific oligosaccharides were determined using biotinylated labeled lectins in liver tissue sections. Evaluation of the reaction was performed by light microscopy. Histochemically, the reactions have been observed in centrilobular vein sinusoidal capillaries of liver tissue. No staining was detected in hepatocytes. Compared with controls, CCl4group were more intense staining. NAC reduced the staining intensity. As a result, cells increase their oligosaccharide units to protect them self from the liver damage of CCl4. It was observed that NAC had protective and therapeutic effects against damage induced by CCl4in rats hepatic cells.

Anahtar kelimeler
🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

DANJOLLI, D., AKŞİT, H. (2016). Deneysel Karaciğer İntoksikasyonunda N Asetil Sisteinin Karaciğerdeki Bazı Lektinlerin Ekspresyonu ve Lokalizasyonu Üzerine Etkileri. Van Veterinary Journal, Cilt: 27 - Sayı: 1, 11–16. https://ajindex.com/articles/32668

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (16)

  1. Akşit H, Akşit D, Bildik A, Kara H, Yavuz Ö, Seyrek K (2015). Deneysel karaciğer intoksikasyonunda N-Asetil Sistein’in glutatyon metabolizması ve lipid peroksidasyonuna etkileri. Ankara Üniv Vet Fak Derg, 62, 1-5.
  2. Bacigalupo ML, Manzi M, Rabinovich GA, Troncoso MF (2013). Hierarchical and selective roles of galectins in hepatocarcinogenesis, liver fibrosis and inflammation of hepatocellular carcinoma. World J Gastroenterology, 19 (47), 8831-8849.
  3. Baenziger JU, Fiete D (1979). Structural determinants of Ricinus communis agglutinin and toxin specificity for oligosaccharides. J Biol Chem, 254, 9795–9799.
  4. Bampton JLM, Shirlaw PJ, Topley S, Weller P, Wilton JM (1991). Human junctional epithelium: Demonstration of a new marker, its growth in vitro and characterization by lectin reactivity and keratin expression. J Invest Dermatol, 96, 708-717.
  5. Basu D, Nair JV, Appukuttan PS (1987). Oligosaccharide structure determination of glycoconjugates using lectins. J Biosci, 11(1-4), 41-46.
  6. Bulgakow AA, Park KI, Choi KS, Lim HK, Cho M (2004). Purification and characterisation of a lectin isolated from the manila clam ruditapes philippinarum in krea. Fish Shellfish Immun, 16, 487-499.
  7. Even SWB, Pusztai A (1999). Effect of diets containing genetically modified potatoes expressing Galanthus Nivalis Lectin on rat small intestine. Lancet, 9187, 1353-1354.
  8. Franz H (1986). Mistletoe lectins and their a and b chains. Oncology, (43), 23-34.
  9. George S, Oh Y, Lindblom S, Vilain S, Rosa AJM, Françis DH, Brözel VS, Kaushik RS (2007). Lectin binding profile of the small intestine of five-week old pigs in response to the use of chlortetracycline as a growth promotant and under gnotobiotic conditions. J Anim Sci, 85, 1640-1650.
  10. Handa SS, Sharma A (1990). Hepatoprotective activity of andrographolide from Andrographis paniculata against carbontetrachloride. Indian J Med Res, 92, 276-283.
  11. Harrison FL (1991). Soluble vertebrate lectins: Ubiquitous but inscrutable proteins. J Cell Sci, 100, 9-14.
  12. Hormia M, Virtanen I (1989). Saccharide residues in human gingiva as revealed with fluorochrome-coupled lectins. J Periodont Res, 2, 137–145.
  13. Howard RJMW, Blake DR, Pall H, Williams A, Green ID (1987). Allopurinol/N-Acetylcysteine for carbon monoxide poisoning. Lancet, 2, 628-629.
  14. Kayalı H (1992). Özel Histoloji. Cerrahpaşa Tıp Fakültesi, İstanbul,
  15. Türkiye. Kelly GS (1998). Clinical applications of N-Acetylcysteine. Altern Med Rev, 3, 114-127.
  16. Kilpatrick DC (2002). Animal lectins: A historical introduc