Dergiler / Uludağ Üniversitesi Ziraat Fakültesi Dergisi / 2002 / Cilt: 16 - Sayı: 1

Akmut ve ayvada nişasta jel elektroforez tekniğine göre peroksidaz izoenzim analizleri için en uygun yöntemin belirlenmesi

Determination of the most effective method for peroxidase isozyme analysis by starch gel electrophoresis in pear and quince

Sayfa
191–200
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Sonuç olarak, armut ve ayvada SGE ile peroksidaz İzoenzim analizlerinde Santamour ve ark. (1986) yöntemine göre ekstrakte edilen örneklerin Lithium borate/Tris citrate pH 8.3 jel ve elektrot sistemine göre elektroforezden geçirilip Wendel ve Weeden (1989) yöntemine göre boyandığı kombinasyon en iyi sonucu vermiştir.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Bu çalışma, armut çeşitleri ile ayva anaçlarında çeşitli amaçlarla kullanılabilecek peroksidaz (PRX) izoenzim analizleri için en uygun nişasta jel elektroforez (SGE) yönteminin belirlenmesi üzerine kurulmuştur.
📊
Temel Bulgular & Veri:SGE için Krebs (1996), modifıye edilmiş Krebs (1996) ve modifıye edilmiş Santamour ve ark (1986) olmak üzere 3 farklı ekstraksiyon solüsyonu; Histidine-citrate, pH 5.7, Morpholine-citrate pH 6.25 ve Lithium.
💡
Sonuç & Katkı:Sonuç olarak, armut ve ayvada SGE ile peroksidaz İzoenzim analizlerinde Santamour ve ark. (1986) yöntemine göre ekstrakte edilen örneklerin Lithium borate/Tris citrate pH 8.3 jel ve elektrot sistemine göre elektroforezden geçirilip Wendel ve Weeden (1989) yöntemine göre boyandığı kombinasyon en iyi sonucu vermiştir.
🔬Tür:Deneysel Tarla Denemesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:armut · ayva · elektroforez

Özet

Bu çalışma, armut çeşitleri ile ayva anaçlarında çeşitli amaçlarla kullanılabilecek peroksidaz (PRX) izoenzim analizleri için en uygun nişasta jel elektroforez (SGE) yönteminin belirlenmesi üzerine kurulmuştur. Denemede, Bartlett (BT= Williams) ve Beurre Hardy (BH) armut çeşitleri ile QA ayva anacının yıllık sürgünlerinden alınan kabuk dokusu örneklen kullanılmıştır. SGE için Krebs (1996), modifıye edilmiş Krebs (1996) ve modifıye edilmiş Santamour ve ark (1986) olmak üzere 3 farklı ekstraksiyon solüsyonu; Histidine-citrate, pH 5.7, Morpholine-citrate pH 6.25 ve Lithium. Borate/Tris-citrate pH 8.3 olmak üzere 3 farklı jel ve elektrot sistemi ve Wendel ve Weeden (1989), modifıye edilen Santamour ve ark. (1986) ve Santamour ve ark (1986) Guaiacol yöntemi olmak üzere 3 farklı boyama sistemi denenmiştir. Sonuç olarak, armut ve ayvada SGE ile peroksidaz İzoenzim analizlerinde Santamour ve ark. (1986) yöntemine göre ekstrakte edilen örneklerin Lithium borate/Tris citrate pH 8.3 jel ve elektrot sistemine göre elektroforezden geçirilip Wendel ve Weeden (1989) yöntemine göre boyandığı kombinasyon en iyi sonucu vermiştir.

Abstract

This study was conducted to determine the most effective starch gel electrophoresis (SGE) method for peroxidase (PRX) analysis that can be used various aimes in pear varieties and quince rootstock. Bark tissues collected from current year shoots of Bartlet (ET-Williams) and Beurre Hardy (EH) pear scions and QA rootstock were used in this study. In SGE, 3 different extraction buffers, Krebs (1996), modified Krebs (1996) and modified Santamour et al (1986); 3 different gel and electrod buffers, Histidine-citrate pH 5.7, Morpholine-citrate pH 6.25 and Lithium Borate pH 8.3; and 3 diffenet staining buffers, Wendel and Weeden (1989), modified Santamour et al. (1986) and Santamour et al. (1986) Guaiacol method were used. As a result, the combination of method consisted of Santamour et al. (1986) extraction buffer, Lithium borate/Tris citrate pH 8.3 gel and electrod buffer and Wendel and Weeden (1989) satining buffer was given the best isozyme pattern for peroxidase analysis of pear and quince by SGE.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

GÜLEN, H., KÜDEN, A., KREBS, S. L., ARORA, R. (2002). Akmut ve ayvada nişasta jel elektroforez tekniğine göre peroksidaz izoenzim analizleri için en uygun yöntemin belirlenmesi. Uludağ Üniversitesi Ziraat Fakültesi Dergisi, Cilt: 16 - Sayı: 1, 191–200. https://ajindex.com/articles/326086

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (12)

  1. Ashton, G.C., and A.W.H. Braden., 1961. Serum β-Globulin Polymorphism in Mice. Austral. J. Biol. Sci. 14: 248-254.
  2. Clayton, J. W., and D. N. Tretiak., 1972. Amine-citrate Buffers for pH Control in Starch Gel Electrophoresis. J. Fish. Res. Board Can. 29:1169-1172.
  3. Copes, D.L., 1978. Isozyme Activities Differ in Compatible and Incompatible Douglas-Fir Graft Unions. Forest Sci. 24: 297-303.
  4. Gaspar, T.H., C.L. Penel, T. Thorpe, and H. Grappin., 1982. Chemistry and Biochemistry of Peroxidases (T.H. GASPAR, C.L. PENEL, T. THORPE AND H. GRAPPIN eds.). Peroxidases (1970-1980), a Survey of Their Biochemical and Physiological Roles in Higher Plants., Univ. of Geneve, p. 10-60.
  5. Gebhardt, K, and W. Feucht., 1982. Polyphenol Changes at the Union of Prunus avium/Prunus cerasus Grafts. J. Hortic. Sci. 57:253-258.
  6. Hudina, M., F. Stampar, M. Virscek-Marn, and J. Smole., 1996. Characterisation of Isoenzyme Variability of Pears and Quince in Various Tissue. Abstract Book, Eucarpia Symposium on Fruit Breeding and Genetics, East Malling, England, p.23. Krebs, S. L., 1996. Normal Segregation of Allozyme Markers in Complex Rhododendron Hybrids. J. Heredity. 87:131-135.
  7. Lindner, W.A., C. Hoffmann and H. Grısebach., 1988. Rapid ElicitorInduced Chemiluminiscence in Soybean Cell Suspension Cultures. Phytochemistry. 27: 2501-2503.
  8. Markert, C. L., and F. Moller., 1959. Multiple Forms of Enzymes: Tissues, Cytogenic and Species Specific Paterns. Proc. Nat. Acad. Sci., USA. 45:753-763.
  9. Özçağıran, R., 1982. Bazı Armut Çeşitlerinin Ayva Anacı ile Uyuşma Durumları Üzerinde Bir Çalışma. Ege Üniv. Ziraat Fak. Derg. 19 (2): 77-83. Quessada M.P. and J. J. Macheixs., 1984. Caractérisation d’une Peroxydase Impliquée Spécifiquement dans la Lignification, en Relation avec I’incompatibilité au greffage Chez I’abricotier. Physiol. Vég. 22:533-540.
  10. Santamour, F. S. Jr., 1988a. Graft Incompatibility Related to Cambial Peroxidase Isozymes in Chinese Chestnut. J. Environ. Hort. 6(2): 33-39. _________, 1988b. Cambial Peroxidase Enzymes Related to Graft Incompatibility in Red oak. J. Environ. Hort. 6(3): 87-93. _________, A.J. MC Ardle and R.A. Jaynes, 1986. Cambial Isoperoxidase Patterns in Castanea. J. Environ. Hort. 4(1): 14-16.
  11. Shimoni, M., and R. Reuveni., 1988. A Method for Staining and Stabilizing Peroxidase Activity in Polyacrylamide Gel Electrophoresis. Anal. Biochem. 175:35-38.
  12. Stuber, C.W., M.M. Goodman, and F.M. Johnson., 1977. Genetic Control and Racial Variation of β-glucosidase Isozymes i