Dergiler / Uludağ Üniversitesi Ziraat Fakültesi Dergisi / 2011 / Cilt: 25 - Sayı: 1

Hayward ve matua kivi çeşitlerinde mikro çoğaltım

Micropropagation of kiwifruit cultivars “Hayward” and “Matua”

Sayfa
97–108
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Elde edilen bulgular, her iki çeşitte de, in vitro kültüre başlamak için sürgün ucu eksplantlarının, tek boğumlu mikro çeliklere oranla daha avantajlı olduğunu göstermiştir.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Bu araştırmada “Hayward” ve “Matua” kivi çeşitlerinde mikro çoğaltım olanakları değerlendirilmiştir.
📊
Temel Bulgular & Veri:Başlangıç kültüründe en başarılı sonuçlar, 2 mg/L BA, 22.5 g/L sukroz ve 7 g/L difco-bacto agar ilave edilmiş ¾ doz MS ortamından elde edilmiştir.
💡
Sonuç & Katkı:Elde edilen bulgular, her iki çeşitte de, in vitro kültüre başlamak için sürgün ucu eksplantlarının, tek boğumlu mikro çeliklere oranla daha avantajlı olduğunu göstermiştir.
🔬Tür:Deneysel Tarla Denemesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:kivi · IBA · kültür ortamı

Özet

Bu araştırmada “Hayward” ve “Matua” kivi çeşitlerinde mikro çoğaltım olanakları değerlendirilmiştir. Başlangıç kültüründe en başarılı sonuçlar, 2 mg/L BA, 22.5 g/L sukroz ve 7 g/L difco-bacto agar ilave edilmiş ¾ doz MS ortamından elde edilmiştir. Elde edilen bulgular, her iki çeşitte de, in vitro kültüre başlamak için sürgün ucu eksplantlarının, tek boğumlu mikro çeliklere oranla daha avantajlı olduğunu göstermiştir. Bu nedenle sürgün çoğaltım aşamasında sadece sürgün ucu eksplantları kullanılmış ve farklı besin ortamlarının eksplantlarda büyüme ve çoğalma üzerine etkileri incelenmiştir. “Hayward” çeşidinde, en yüksek çoğalma oranı (5.3) ve sürgün sayısı (3.4); sodyum fosfat (170 mg/L), adenin sülfat (80 mg/L), thiamin-HCl (0.3 mg/L), inositol (100 mg/L), BA (2 mg/L), IBA (0.03 mg/L), sukroz (30 g/L) ve agar (6 g/L) ilave edilmiş tam doz MS besin ortamından elde edilmiştir. “Matua” kivi çeşidinde ise maksimum çoğalma oranı (5.22) ve sürgün sayısına (4.19) ulaşabilmek için söz konusu besin ortamının sıvı formda kullanılması gerekmektedir. Köklenmeyi temin etmek için çoğalan kültürlerden kesilen sürgünler ($\geq$2cm), önce bir seri IBA çözeltisine bandırılmış, sonra 20 g/L sukroz ve 7 gr/L agar ilave edilmiş ½ doz MS ortamına aktarılmıştır. En yüksek köklenme oranları “Hayward” çeşidinde (%51.85) 20 mg/L IBA’nın 15 saniye uygulaması, “Matua” çeşidinde (%70.37) ise 50 mg/L IBA’nın 2 saat uygulaması ile sağlanmıştır.

Abstract

Possibilities of micropropagation of kiwifruit cultivars “Hayward” and “Matua” were investigated in the present study. In the initiation culture, the best results were obtained from the ¾ strength MS medium supplemented with sucrose (22.5 g/L), difco-bacto agar (7 g/L) and BA (2 mg/L). In both cultivars, the results showed that shoot tip explants were more advantageous relative to nodal cuttings in order to establish an in vitro culture. Therefore, at the proliferation stage of culture only shoot tip explants were used and the effects of different culture media on growth and proliferation of explants were evaluated. In “cv. Hayward”, the highest multiplication rate (5.3) and shoot number (3.4) were obtained from the full strength MS medium (SA-K) supplemented with sodium phosphate (170 mg/L), adenine sulphate (80 mg/L), thiamine-HCl (0.3 mg/L), inositol (100 mg/L), BA (2 mg/L), IBA (0.03 mg/L), sucrose (30 g/L) and agar (6 g/L). However, in “cv. Matua”, it was concluded that the above mentioned medium should be used in liquid form to reach maximum multiplication rate (5.22) and shoot number (4.19). In order to induce rooting, shoots ($\geq$2cm) were cut off from proliferating cultures and dipped in a series of IBA solutions and then transferred to the ½ strength MS, supplemented with sucrose (20 g/L) and agar (7 g/L). The maximum ratio of rooting was 51.85% in “cv. Hayward” with the 15 second treatment of 20 mg/L IBA, and it was 70.37% in “cv. Matua” with the 2 hour treatment of 50 mg/L IBA.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

SİVRİTEPE, N., TUĞ, Y. (2011). Hayward ve matua kivi çeşitlerinde mikro çoğaltım. Uludağ Üniversitesi Ziraat Fakültesi Dergisi, Cilt: 25 - Sayı: 1, 97–108. https://ajindex.com/articles/325967

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (16)

  1. Barbieri, C. and S. Morini. 1988. Shoot Regeneration from Callus Cultures of Actinidia chinensis (cv. Hayward). Acta Horticulturae, 227: 470-472.
  2. Canhoto, J.M. and G.S. Cruz. 1989. In Vitro Multiplication of Actinidia chinensis Planch. by Culture of Young Leaves. Boletim da Sociedade Broteriana, 60: 239-252.
  3. Ding, S.L., X.Z. Zhu and H.M. Yu. 1997. Kiwifruit Tissue Culture. China Fruits, 2: 27-29.
  4. Kamenicka, A. and M. Rypak. 1990. The Regeneration of Actinidia chinensis Planch. Cultured In Vitro. Horticultural Abstracts, 60 (6): 4156. Kumar, S and D.R. Sharma. 2002. In Vitro Propagation of kiwifruit. Journal of Horticultural Science and Biotechnology, 77 (5): 503-508.
  5. Kumar, S., C. Subodh, H. Gupta and D.R. Sharma. 1998. Micropropagation of Actinidia deliciosa from Axillary Buds. Phytomorphology, 48 (3): 303-307.
  6. Kyte, K. and J. Kleyn. 1996.
  7. Plants from Test Tubes. Timber Press,
  8. Portland, Oregon, USA. 240 pp. Mansuroğlu, S. ve E. Gürel. 2001.
  9. Mikroçoğaltım. “Bitki Biyoteknolojisi I – Doku Kültürü ve Uygulamaları” (Editörler: M. Babaoğlu, E. Gürel ve S. Özcan), Selçuk Üniversitesi Basımevi, Konya. s. 262-281.
  10. Marino, G. and G. Bertazza. 1990. Micropropagation of Actinidia deliciosa cvs ‘Hayward’ and ‘Tomuri’. Scientia Horticulturae, 45: 65-74.
  11. Moncalean, P., M.J. Canal, I. Feito, A. Rodriguez and B. Fernandez. 1999. Cytokinins and Mineral Nutrition in Actinidia deliciosa (Kiwi) Shoots Cultured In Vitro. Journal of Plant Physiology, 155 (4/5): 606-612.
  12. Monette, P.L. 1986. Micropropagation of Kiwifruit Using Non-Axenic Shoot Tips. Plant Cell Tissue Organ Culture, 6: 73-82.
  13. Monette, P.L. 1987. Organogenesis and Plantlet Regeneration Following In Vitro Cold Storage of Kiwifruit Shoot Tip Cultures. Scientia Horticulturae, 31: 101-106.
  14. Nachtigal, J.C., A.G.D. Zecca, S.L.B. Figueiredo and G.R.d.L. Fortes. 1995. Effect of Benzylaminopurine (BAP) on the In Vitro Multiplication of Kiwifruit (Actinidia deliciosa). Ciencia Rural, 25 (1): 23-26.
  15. Nasib, A., H. Ali and S. Khan. 2008. An Optimixed and Improved Method for the In Vitro Propagation of Kiwifruit (Actinidia deliciosa) Using Coconut Water. Pakistan Journal of Botany, 40 (6): 2255-2360.
  16. Pedroso, M.C., M.M. Oliveira and M.S.S. Pais. 1992. Micropropagation and Simultaneous Rooting of Actinidia deliciosa var. deliciosa ‘Hayward’. HortScience, 27 (5): 443- 445. Prado M. J., M. V. Gonzalez, S. Romo and M. T. Herrera. 2007. Adventitious plant regeneration on leaf explants from adult male kiwifruit and AFLP analysis of g