Dergiler / Su Ürünleri Dergisi / 2006 / Cilt: 23 - Sayı: 3

Comparision of Two thiobarbituric acid (TBA) method for monitoring Iipid oxidation in fish

Balıklarda lipid oksidasyonu belirlemek için iki tiyobarbiturik asid (TBA) metodunun karşılaştırılması.

Sayfa
331–334
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Bu çalışmanın sonucunda, balık kasında lipit oksidasyonu sonucu ortaya çıkan malonaldehit miktarını belirlemek için kullanılan Lynch and Frei (1993) metodunun, Tarladgis ve diğ. (1960) metoduna alternatif olarak kullanılabileceği saptanmıştır.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Balıklarda lipit oksidasyonunu belirlemek için iki tiyobarbiturik asit (TBA) metotunun karşılaştırılması.
📊
Temel Bulgular & Veri:Bu çalışmada, yağlı balıklarda önemli bir kalite kriteri olan tiyobarbiturik asit (TBA) analizi, standart bir distilasyon metodu olan Tarladgis ve diğ. (1960) ve bir sıvı asit ekstraksiyon metodu olan Lynch and Frei (1993) olmak üzere iki farklı yöntemle karşılaştırılmıştır.
💡
Sonuç & Katkı:Bu çalışmanın sonucunda, balık kasında lipit oksidasyonu sonucu ortaya çıkan malonaldehit miktarını belirlemek için kullanılan Lynch and Frei (1993) metodunun, Tarladgis ve diğ. (1960) metoduna alternatif olarak kullanılabileceği saptanmıştır.
🔬Tür:Deneysel Tarla Denemesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:lipit · damıtma · malonaldehit

Özet

Balıklarda lipit oksidasyonunu belirlemek için iki tiyobarbiturik asit (TBA) metotunun karşılaştırılması. Bu çalışmada, yağlı balıklarda önemli bir kalite kriteri olan tiyobarbiturik asit (TBA) analizi, standart bir distilasyon metodu olan Tarladgis ve diğ. (1960) ve bir sıvı asit ekstraksiyon metodu olan Lynch and Frei (1993) olmak üzere iki farklı yöntemle karşılaştırılmıştır. Tarladgis ve diğ. (1960)’ nın yönteminde 7.8 sabiti ile çarpılan specktrofotometrik değerler, ayrıca Crackel (1986)’ in önerdiği üzere 6.2 sabiti ile de çarpılmış ve elde edilen TBA değerleri karşılaştırılmıştır. Araştırmada kullanılan küçük boylu sardalyaların (Sardina pilchardus (W., 1972), 12.7±0.15 cm) lipit içeriği %1.59, büyük boylu sardalyaların (S. pilchardus (W., 1972),16.5±0.98 cm) lipit içeriği %2.18, küçük boylu kefallerin (Mugil cephalus (L., 1758) 21.0±0.68 cm) lipit içeriği %2.08, büyük boylu kefallerin (M. cephalus (L., 1758), 33.2 ±1.23 cm) lipit içeriği %0.97, palamutun (Sarda sadra (B., 1793), 32.1±3.25 cm) lipit içeriği %6.49 ve lüferin (Pomatomus saltator (L., 1766), 23 ± 1.01cm) lipit içeriği %1.19 olarak bulunmuştur. Küçük boylu kefallerde ve büyük boylu sardalyalarda ekstraksiyon metoduna göre elde edilen TBA değerleri, 6.2 sabiti ile hesaplanarak bulunan distilasyon metoduna ile elde edilen TBA değerlerine göre önemli bir farklılık göstermezken (p>0.05), 7.8 sabiti ile hesaplanan TBA değerleri 1.3 kat daha yüksek bulunmuştur (p<0.05). Küçük boylu sardalyalarda ve lüferlerde ise her bir üç TBA değeri arasında önemli bir fark bulunmamıştır (p<0.05). Küçük boylu kefallerde ve palamutta ise, ekstraksiyon metoduna göre elde edilen TBA değerleri, 6.2 ve 7.8 sabitine göre hesaplanan TBA değerlerinden daha yüksek bulunmuştur. Ayrıca, sardalyalarda her iki yöntemle saptanan TBA değerlerinin lipit içeriğine göre arttığı saptanmıştır. Bu çalışmanın sonucunda, balık kasında lipit oksidasyonu sonucu ortaya çıkan malonaldehit miktarını belirlemek için kullanılan Lynch and Frei (1993) metodunun, Tarladgis ve diğ. (1960) metoduna alternatif olarak kullanılabileceği saptanmıştır.

Abstract

In this study, the thiobarbituric acid (TBA) analysis that is an important quality index for fatty fish was compared with the method of Tarladgis et al. (1960) which is a commonly used distillation method and aqueous acid extraction method according to Lynch and Frei (1993). The results of spectrophotometric values multiplying by 7.8 constant in the method of Tarladgis et al. (1960) were also multiplied by 6.2 constant according to Crackel (1986) and the results of TBA value were compared. The lipid contents of fish used in the experiment were found to be %1.59 for small sardine (Sardina pilchardus (W., 1972), 12.7±0.15 cm), %2.18 for large sardine (S. pilchardus (W., 1972),16.5±0.98 cm), %2.08 for small grey mullet (Mugil cephalus (L., 1758), 21.0±0.68 cm), %0.97 for large grey mullet (M. cephalus (L. 1758), 33.2 ±1.23 cm), %6.49 for Atlantic bonito (Sarda sadra (B., 1793), 32.1±3.25 cm) and %1.19 for bluefish (Pomatomus saltator (L. 1766), 23 ± 1.01cm). TBA values obtained by extraction method in small grey mullet and large sardine weren&#8217;t significantly different from those of the distillation method when calculated by 6.2 constant (p>0.05), while TBA values of them obtained by distillation method calculated by 7.8 constant were found to be significantly 1.3 times higher than those of extraction method (p<0.05). No significantly differences were found between the each three TBA values for small sardine and bluefish (p<0.05). In small grey mullet and Atlantic bonito, TBA values obtained by extraction method were found higher than those of distillation method calculated by both 7.8 and 6.2. Moreover, the higher TBA value was obtained with the higher lipid content in small and large sardine. As a result of this study, it is suggested that the extraction method according to Lynch and Frei (1993) can alternatively be used to determine lipid oxidation in fish muscle in stead of the distillation method according to Tarladgis et al. (1960).

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

TOKUR, B., KORKMAZ, K., AYAS, D. (2006). Comparision of Two thiobarbituric acid (TBA) method for monitoring Iipid oxidation in fish. Su Ürünleri Dergisi, Cilt: 23 - Sayı: 3, 331–334. https://ajindex.com/articles/311554

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (10)

  1. Bandarra, N. M., I. Batista, M. L.Nunes, J. M. Empis, and W. W. Christie. 1997. Seasonal changes in lipid composition of sardine (Sardina pilchardus). J. Food Sci., 62: 40–42.
  2. Bligh, E., and W. V. Dyer. 1959. A rapid method of total lipid extraction and purification. Can. J. Biochem. Physiol., 37: 911–91
  3. Botsoglu, N.A., D.J. Fletouris, G.E. Papageorgiou, V.N. Vassilopoulos, A.J. Mantis, and A.G. Trackatellis. 1994. Rapid, sensitive, and specific thiobarbituric acid method for measuring lipid peroxidation in animal tissue, food, and feedsstuff samples. J. Agric. Food Chem., 42: 1931-1937.
  4. Buttkus, H. J. 1967. The reaction of myosin with malonaldehyde. J. Food Sci., 32:432–434
  5. Christie, W. W. 1987. The lipid composition of animal tissue, pp. 55–79. In: HPLC and lipids: a practical guide. W. W. Christie (Ed.). Pergamon Press,
  6. Oxford, UK Crackel, R.L. 1986. Stability of lipids in restructured beef steaks. M.S. Thesis, Michigan State University, East Lansing, MI. Crawford, D. L., T. C. Yu, and R. O. Sinnhuber. 1966. Reaction mechanism, reaction of malonaldehyde with glycine. J.Agric. Food Chem, 14: 184. Esterbauer, H., and K.H. Cheeseman. 1990. Determination of aldehydic lipid peroxidation products: malonaldehyde and 4-hydroxynonenal. Methods Enzymol, 186: 407-421
  7. Caponio, F., A. Lestingi, C. Summo, M. T. Bilancia, and V. Laudadio. 2004. Chemical characteristics and lipid fraction quality of sardines (Sardina pilchardus W.): influence of sex and length. J. Appl. Ichthyol., 20: 530–535. Girón-Calle, J., M. Alaiz, F. Millán, V. Ruiz-Gutiérrez, and E. Vioque. 2003. Bound malondialdehyde in foods: Bioavailability of the N,N′-di-(4-methyl-1,4-dihydropyridine-3,5-dicarbaldehyde)lysine. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 51: 4799–4803
  8. Gutteridge, J.M. 1981. Thiobarbituric acid-reactivity following iron- dependent free-radical damage to amino acids and carbohydrates. FEBS Lett., 128: 343-346 Hardy R, and J.N. Keay. 1972.Seasonal variations in the chemical compositions of Cornish mackerel (Scomber scombrus L.) with detailed reference to the lipids. J Fd Tech, 7: 125–237.
  9. Heras, A., A. Schoch, M.Gibis, and A. Fischer. 2003. Comporison of methods for determining malonaldehyde in dry sausage by hplcl and the classic tba test. Eur. Food Res. Technol., 217: 180-184.
  10. Hultin, HO. 1992. Lipid oxidation in fish muscle, pp. 99–116. In: Flick Jr, GJ and Martin RE (eds). Advances in Seafood Biochemistry. Technomic Publishing Co., PA. Jo, C., D.U. Ahn. 1998. Flourometric a