Dergiler / Kafkas Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi / 2016 / Cilt: 22 - Sayı: 3

Characterization and Distribution of Salmonella spp. Isolated from Poultry Slaughterhouse-processingin Shandong Province [1]

Shandong Eyaletindeki Kanatlı Hayvan Kesimhanelerinden İzole Edilen Salmonella spp.'nin Karakterizasyonu ve Yaygınlığı

Sayfa
443–450
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Yedi housekeeping gen farklı varyasyonlara sahipti.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Salmonella spp. dünya çapında kanatlı hayvan etlerinden köken alan halk sağlığı bakımından en önemli gıda kaynaklı patojendir.
📊
Temel Bulgular & Veri:Bu çalışmanın amacı Çin'de 12 değişik bölgede yer alan kesimhanelerde kesilen kanatlı hayvanlara ait ürünlerde Salmonella spp. prevalansını tespit etmek ve tüm izolatları serotipleri, PFGE ve MLST görüntüleri ile antimikrobiyal duyarlılıklarına göre karakterize etmektir.
💡
Sonuç & Katkı:Yedi housekeeping gen farklı varyasyonlara sahipti.
🔬Tür:Araştırma Makalesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Alan Parametreleri

Özet

Salmonella spp. dünya çapında kanatlı hayvan etlerinden köken alan halk sağlığı bakımından en önemli gıda kaynaklı patojendir. Bu çalışmanın amacı Çin'de 12 değişik bölgede yer alan kesimhanelerde kesilen kanatlı hayvanlara ait ürünlerde Salmonella spp. prevalansını tespit etmek ve tüm izolatları serotipleri, PFGE ve MLST görüntüleri ile antimikrobiyal duyarlılıklarına göre karakterize etmektir. Çalışmada Salmonella spp. prevalansı kanatlı kesimhanelerinde %10.4 olarak belirlendi. 13 serotipi içeren 100 Salmonella suşu tespit edildi. Örneklerden en çok izole edilen etken S. Enteritidis olarak kaydedildi. İzolatlar belirtilen antibiyotiklere direnç gösterdi; sulfisozaksol (SF) (%79.0), doksisilin (DOX) (%68.0), tetrasiklin (TE) (%65.0), florfenikol (FFC) (%64.0), ampisillin (AM) (%50.0), gentamisin (GM) (%48.0), trimethoprim-sulfamethoksazol (SXT) (%30.0), spektinomisin (SPT) (%30.0), enrofloksasin (ENR) (%10.0), ofloksasin (NOR) (%10.0), amoksisilin potasyum klavulanat (AC) (%1.0) ve polimiksin (PME) (%4.0). Salmonella spp. izolatları cefotaxime (EFT) karşı dirençli değildi. Her bir izolat en az 3 grup antimikrobiyal madde olmak üzere çoklu ilaç direnci gösterdi. PFGE ile elde edilen dört küme ve 38 parmakizi-görüntüsü değişik bölgelerden toplanan suçların arasından belirlendi. Suşlar arası asosiasyon ve bazı bölgelerde persiste suşların varlığı tespit edildi. İzolatların MLST analizi 10 ST belirledi. Yedi housekeeping gen farklı varyasyonlara sahipti.

Abstract

Salmonella spp.is the most important food-borne pathogens of public health interest incriminated in poultry meat worldwide. The purpose of this study to estimate the prevalence Salmonella spp. contamination in poultry products from 12 different located geographical areas from among the 12 poultry slaughterhouses authorized in China and to characterize all the isolates by serotypes, PFGE patterns, MLST patterns and antimicrobial susceptibility. The prevalence of Salmonella spp. in the poultry slaughterhouse was 10.4%. All 100 strains of Salmonella spp. comprising 13 majority serotypes were identified. S. Enteritidis was the most frequently isolated from samples. The isolates displayed resistance to sulfisoxazole (SF) (79.0%), doxycycline (DOX) (68.0%), tetracycline (TE) (65.0%), florfenicol (FFC) (64.0%), ampicillin (AM) (50.0%), gentamicin (GM) (48.0%), trimethoprim-sulfamethoxazole (SXT) (30.0%), spectinomycin (SPT) (30.0%), enrofloxacin (ENR) (10.0%), ofloxacin (NOR) (10.0%), amoxicillin potassium clavulanat (AC) (1.0%) and polymyxin (PME) (4.0%). The Salmonella spp. isolates were not resistant to cefotaxime (EFT). Each isolates were multi-drug resistant as they were resistant to at least 2 groups of antimicrobials. Four clusters and 38 fingerprint-patterns generated by PFGE were identified among strains recovered from various locations, providing information on associations among the strains as well as evidence of the existence of persistent strains in some areas. MLST analysis of isolates identified the 10 STs, the 7 housekeeping genes had the different variation.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

GAI, W., WANG, J., WANG, J., CUI, Z., QU, Z., HONG, J., CUI, J., DU, X., HUANG, X., CAO, X., ZHAO, J. (2016). Characterization and Distribution of Salmonella spp. Isolated from Poultry Slaughterhouse-processingin Shandong Province [1]. Kafkas Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi, Cilt: 22 - Sayı: 3, 443–450. https://ajindex.com/articles/272418

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (7)

  1. Majowicz SE, Musto J, Scallan E, Angulo FJ, Kirk M, O'Brien SJ, Jones TF, Fazil A, Hoekstra RM:The global burden of nontyphoidal Salmonella gastroenteritis. Clin Infect Dis, 50, 882-889, 2010. DOI: 10.1086/650733 Rostagno MH, Callaway TR: Pre-harvest risk factors for Salmonella Enterica in pork production. Food Res Int, 45, 634-640, 2012. DOI: 1016/j.foodres.2011.04.041 Brooks JT, Matyas BT, Fontana J, DeGroot MA, Beuchat LR, Hoekstra M, Friedman CR: An outbreak of Salmonella serotype Typhimurium infections with an unusually long incubation period. Foodborne Pathog Dis, 9, 245-248, 2012. DOI: 10.1089/fpd.2011.0992 Janmohamed K, Zenner D, Little C, Lane C, Wain J, Charlett A, Adak B, Morgan D: National outbreak of Salmonella Enteritidis phage type b in England, September to December 2009: Case-control study. Euro Surveill, 16, Pii: 19840, 2011. Gast RK: Understanding Salmonella Enteritidis in laying chickens: the contributions of experimental infections. Int J Food Microbiol, 21, 107-, 1994. DOI: 10.1016/0168-1605(94)90204-6
  2. Kim A, Lee YJ, Kang MS, Kwag SI, Cho JK: Dissemination and tracking of Salmonella spp. in integrated broiler operation. J Vet Sci, 8, 155-161, 2007. DOI: 10.4142/jvs.2007.8.2.155 International Organization for Standardization (ISO): Microbiology of Food and Animal Feeding stuffs-Horizontal Method for the Detection of Salmonella spp. International Organization for Standardization: Geneva, Switzerland, 2007.
  3. Kim JS, Lee GG, Park JS, Jung YH, Kwak HS, Kim SB, Nam YS, Kwon ST: A novel multiplex PCR assay for rapid and simultaneous detection of five pathogenic bacteria: Escherichia coli O157: H7, Salmonella, Staphylococcus aureus, Listeria monocytogenes, and Vibrio parahaemolyticus. J Food Prot,, 1656-1662, 2007.
  4. Grimont PAD, Weill FX: Antigenic formulae of the SalmonellaSerovars. Paris: World Health Organization, Institut Pasteur, 166p, 2007.
  5. Wu W, Wang H, Lu J, Wu J, Chen M, Xu Y, Lu Y: Genetic diversity of SalmonellaentericaserovarTyphi and Paratyphi in Shenzhen, China from 2002 through 2007. BMC Microbiol, 10, 32, 2010. DOI: 10.1186/1471- 10-32
  6. Römling U, Tümmler B: Achieving 100% typeability of Pseudomonas aeruginosa by pulsed-field gel electrophoresis. J Clin Microbiol, 38, 464-, 2000. CLSI: Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing, Twenty-Second Informational ament Wayne Pennsylvania: Clinical and Laboratory Standards Institute; 2012.
  7. Gai W, Wang J, Wang J, Cui Z, Qu Z, Cui J, Du X, Huang X, Zhao J: Molecular