Dergiler / Kafkas Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi / 2020 / Cilt: 26 - Sayı: 1

Immunohistochemical Localization of Catalase in Geese (Anser anser) Kidney

Kaz (Anser anser) Böbreğinde Katalaz’ın İmmunohistokimyasal Lokalizasyonu

Sayfa
41–46
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

This study is thought to contribute to the planned future studies about antioxidant system in the kidney of poultry.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:The aim of this study is to observe the histologic structure of kidney tissue of geese and to determine the immunohistochemical localization of catalase in it.
📊
Temel Bulgular & Veri:Six female geese were used in our study.
💡
Sonuç & Katkı:This study is thought to contribute to the planned future studies about antioxidant system in the kidney of poultry.
🔬Tür:Araştırma Makalesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Alan Parametreleri

Özet

The aim of this study is to observe the histologic structure of kidney tissue of geese and to determine the immunohistochemical localization of catalase in it. Six female geese were used in our study. After fixation in Bouin’s solution and routine histological process, the kidney tissues taken from geese were embedded in paraffin blocks. To detect catalase immunoreactivity in the tissues, the avidinbiotin-peroxidase complex (ABC) technique was used. Crossmann’s modified triple stain for histological examination was applied to the samples. It was seen that the geese kidney included numerous lobules and each lobule consists of cortical and medullary tissues. The strong immunoreactivity of catalase was observed in the proximal convoluted tubules in the cortex. Immunohistochemical reaction was also observed in intermediate tubules and the thick segment of Henle’s loops. Also it was determined that the immunoreactivity in the basal epithelial cells of the secondary branches of ureters and the intercalated cells in the distal convoluted tubules and collecting duct. There was no catalase immunoreactivity in the renal corpuscles. In conclusion, localization of catalase in the proximal convoluted tubules, in the intermediate tubules, in the thick segments of Henle’s loops and in the intercalated cells is considered that these parts of the geese kidney are involved in the antioxidant defence. This study is thought to contribute to the planned future studies about antioxidant system in the kidney of poultry.

Abstract

Bu çalışmada amaç, kazların böbrek dokusunun histolojik yapısı ve katalazın immunohistokimyasal lokalizasyonunun belirlenmesidir. Çalışmamızda 6 adet ergin dişi kazdan alınan böbrek doku örnekleri kullanıldı. Alınan doku örnekleri Bouin solüsyonunda tespit edildikten sonra rutin histolojik doku takibi yapılıp ardından parafinde bloklandı. Dokulardaki katalaz immunoreaktivitesini incelemek için AvidinBiotin-Peroksidaz Kompleks (ABC) tekniği kullanıldı. Dokuların genel histolojik görünümlerini incelemek için de Crossmann’ın modifikasyonu olan üçlü boyama tekniği uygulandı. Yapılan histolojik incelemelerde kaz böbreğinin her birinin ayrı ayrı korteks ve medulladan oluşan çok lopçuklu bir yapıya sahip olduğu görüldü. Dokulardaki katalaz immunoreaktivitesi en yoğun olarak korteksteki tubulus proksimalis konvoluta kısımlarında belirlendi. Bununla birlikte immünohistokimyasal reaksiyon intermediyer tubullerde ve çıkan Henle kısımlarında da gözlendi. Ayrıca, üreterlerin kollarındaki bazal epitel hücrelerinde, tubulus distalis konvolutalarda ve toplayıcı borucuklarda bulunan interkalat hücrelerde de yer yer reaksiyon olduğu görüldü. Korpuskulum renislerde katalaz immunoreaktivitesine rastlanmadı. Sonuç olarak, antioksidan bir enzim olan katalazın tubulus proksimalis konvoluta, intermediyer tubul, çıkan Henle bölümü ve interkalat hücrelerde lokalize olması bu kısımların kaz böbreğindeki antioksidan savunma bölgeleri olduğunu düşündürmektedir. Bu araştırmanın kanatlı böbreğinde antioksidan savunma sistemi ile ilgili yapılması planlanan başka çalışmalara katkı sağlayacağı düşünülmektedir.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

TAŞÇI, S. K., GÜLMEZ, N., ASLAN, Ş., DEPREM, T., BİNGÖL, S. A. (2020). Immunohistochemical Localization of Catalase in Geese (Anser anser) Kidney. Kafkas Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi, Cilt: 26 - Sayı: 1, 41–46. https://ajindex.com/articles/272178

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (10)

  1. Aslan Ş: Üriner sistem. In, Aslan Ş (Ed): Kanatlı Histolojisi. 85-98, Dora Basım Yayın Dağıtım, Bursa, 2018
  2. Kocamış H, Aslan Ş, Deprem T: Kazların böbrek yapısı üzerine histolojik ve histometrik inceleme. Kafkas Univ Vet Fak Derg, 9 (2): 157-160, 2003
  3. Hodges RD: The Histology of the Fowl. Academik Press, London, 1974
  4. Braun EJ: Osmoregulatory systems of birds. In, Scanes CG (Ed): Sturkie’s Avian Physiology. 6th ed., 285-300, Academik Press, New York, 2015
  5. Zık B: Üriner Sistem. In, Özer A (Ed): Veteriner Özel Histoloji. 197-218, Dora Basım Yayın Dağıtım, Bursa, 2016
  6. Kocamış H: Hücre. In, Özer A (Ed): Temel Histoloji
  7. Baskı, 23-51, Dora Basım Yayın Dağıtım, Bursa, 2016
  8. Akaydın Y, Özcan Z: Hindi (Meleagris gallopavo) böbreğinin yapısı üzerinde ışık ve elektron mikroskobik çalışmalar. Ankara Üniv Vet Fak Derg, 52, 194-155, 2005
  9. Matés JM: Effcts of antioxidant enzymes in the molecular control of reactive oxygen species toxicology. Toxicology, 153, 83-104, 2000. DOI: 10.1016/S0300-483X(00)00306-1 9. Schiffr TA, Friederich-Persson M: Mitochondrial reactive oxygen species and kidney hypoxia in the development of diabetic nephropathy. Front Physiol, 8:211, 2017. DOI: 10.3389/fphys.2017.00211 10. Ray PD, Huang BW, Tsuji Y: Reactive oxygen species (ROS) homeostasis and redox regulation in cellular signaling. Cell Signal, 24 (5): 981-990, 2012. DOI: 10.1016/j.cellsig.2012.01.008 11. Nishikawa M, Hashida M, Takakura Y: Catalase delivery for inhibiting ROS-mediated tissue injury and tumor metastasis. Adv Drug Deliv Rev, 61, 319-326, 2009. DOI: 10.1016/j.addr.2009.01.001 12. Sindhu RK, Ehdaie A, Farmand F, Dhaliwal KK, Nguyen T, Zhan CD, Roberts CK, Vaziri ND: Expression of catalase and glutathione peroxidase in renal insufficiency. Biochim Biophys Acta, 1743, 86-92, 2005. DOI: 10.1016/j.bbamcr.2004.08.013 13. Kobayashi M, Sugiyama H, Wang DA, Toda N, Maeshima Y, Yamasaki Y, Masuoka N, Yamada M, Kira S, Makino H: Catalase deficiency renders remnant kidneys more susceptible to oxidant tissue injury and renal fibrosis in mice. Kidney Int, 68, 1018-1031, 2005. DOI: 10.1111/j.1523-1755.2005.00494.x 14. Dobashi K, Ghosh B, Orak JK, Singh I, Singh AK: Kidney ischemiareperfusion: Modulation of antioxidant defences. Mol Cell Biochem, 205, 1-11, 2000
  10. Ogburn CE, Austad SN, Holmes DJ, Kiklevich V, Gollahon K, Rabinovitch PS, Martin GM: Cultured renal epithelial cells from birds and mice: Enhanced resistance of avian cells to oxidative stress an