KaydedilenlerDerginizi ekleyin

Dergiler / Akademik Ziraat Dergisi / 2015 / Cilt: 4 - Sayı: 2

Isabella (Vitis labrusca) üzüm çeşidinin in vitro sürgün ucu kültürü ile çoğaltılması

Hatice BİLİR EKBİÇ
Gül Şükriye YILMAZ
Seda CİĞERLİ
Sayfa
65–70
Yayın Tarihi
2015-12-01
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

En yüksek köklenme oranı ve gelişim parametreleri açısından ise en uygun köklendirme ortamı 2 mg/l IBA olarak tespit edilmiştir.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Öz Bu çalışmada, Isabella üzüm çeşidinden alınan 1 mm uzunluktaki meristem uçları ile 2-3 yaprak taslağını içeren sürgün uçları eksplant olarak kullanılarak doku kültürü ortamında çoğaltma gerçekleştirilmiştir.
📊
Temel Bulgular & Veri:Sürgün uçları sürgün oluşturma aşamasında (kardeşlenme) MS ortamına 0, 1, 2, 3 ve 4 mg/l dozlarında BA ilavesi yapılmış deney tüplerinde kültüre alınmıştır.
💡
Sonuç & Katkı:En yüksek köklenme oranı ve gelişim parametreleri açısından ise en uygun köklendirme ortamı 2 mg/l IBA olarak tespit edilmiştir.
🔬Tür:Deneysel Tarla Denemesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Anahtar Kelimeler Vitis labrusca · doku kültürü · sürgün ucu

Özet

Öz Bu çalışmada, Isabella üzüm çeşidinden alınan 1 mm uzunluktaki meristem uçları ile 2-3 yaprak taslağını içeren sürgün uçları eksplant olarak kullanılarak doku kültürü ortamında çoğaltma gerçekleştirilmiştir. Sürgün uçları sürgün oluşturma aşamasında (kardeşlenme) MS ortamına 0, 1, 2, 3 ve 4 mg/l dozlarında BA ilavesi yapılmış deney tüplerinde kültüre alınmıştır. Bitkicikler üçer hafta ara ile taze ortama aktarılmış ve bu işlem 5. alt kültüre kadar devam ettirilmiştir. Köklendirme aşamasında ise ortamdan BA çıkarılmış ve IBA’ in 0, 0.5, 1, 2 ve 4 mg/l konsantrasyonları eklenerek köklenmeleri incelenmiştir. Denenen BA dozları arasında en yüksek bitki başına ortalama sürgün sayısı, 5. alt kültürde 1 mg/ BA ilave edilen MS ortamından elde edilmiştir. En yüksek köklenme oranı ve gelişim parametreleri açısından ise en uygun köklendirme ortamı 2 mg/l IBA olarak tespit edilmiştir.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

EKBİÇ, H. B., YILMAZ, G. Ş., CİĞERLİ, S. (2015). Isabella (Vitis labrusca) üzüm çeşidinin in vitro sürgün ucu kültürü ile çoğaltılması. Akademik Ziraat Dergisi, Cilt: 4 - Sayı: 2, 65–70. https://ajindex.com/articles/262101

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (15)

  1. Barlass, M., Skene K.G.M., 1980. Studies on the fragmented shoot apex of grapevine. the regenerative capacity of primordia fragments in vitro. J. Exp. Bot., 31: 483–8.
  2. Blazina, I., Korosec-Koruza, Z., Ravinkar, M., Gogala, N., 1991. Regeneration and micropropagation of the grapevine (Vitis vinifera l.' zelen ') from shoot tip meristem. Acta Horticulturae, 300: 123-126.
  3. Compton, M.E., Gray, D.J., 1994. Micropropagation of southern home hybrid grape. Proc. Fla. State Hort. Soc., 107: 308-310.
  4. Çelik, H., 2004. Kanser ve kalp krizine karşı doğal koruyucu: karadeniz bölgesindeki kokulu kara üzüm. Doğa, Çevre ve Kültür Dergisi, 3:54-61.
  5. Çelik, H., Odabaş, F., Köse, B., Cangi, R., 2009. Samsun’da yetişmekte olan İzabella (Vitis labrusca L.) üzüm tiplerinim ampelografik özelliklerinin belirlenmesi. 7. Türkiye Bağcılık ve Teknolojileri Sempozyumu, 5-9
  6. Ekim, Manisa, Cilt 2: 51-56.
  7. Gray, D., Fisher, L.C., 1985. In vitro shoot propagation of grape species, hybrids and cultivars. Proc. Fla. State Hort. Soc., 98:172-174.
  8. Gray, D.J., Benton, C.M., 1991. In vitro micropropagation and plant establishment of muscadine grape cultivars (Vitis rotundifolia). Plant Cell Tissue Organ Cult., 27:7-14.
  9. Hartman, J., Bachi, P., 2009. Phomopsis Cane and Leaf Spot and Eutypa Dieback Diseases of Grape. Plant Pathology Fact Sheet. University of Kentucky. United Kingdom. Jean, P.P., Torregrosa, L., Gilles, B., 1998. Variability among Vitis vinifera cultivars in micropropagation, organogenesis and antibiotic sensivity. J. Exp. Bot., 49(319): 171-179.
  10. Kinfe, B., 2010. Multiple shoot regeneration study on three varieties of grapevine (Vitis vinifera L.) from shoot tip and nodal culture. Addis Ababa University School of Graduate Studies, Master Thesis, Ethiopia,42 p. Murashige, T., Skoog, F., 1962. A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Physiol. Plant., 15:473-497.
  11. Murashige, T., Skoog, F., 1974.
  12. Ann. Rev., Plant Physiol., 25:135-165.
  13. Murrell, V. C., Lo, P.L., 2000. Time of leafroller infestation and effect on yield in grapes. New Zealand Plant Protection. 53:173-178.
  14. Cangi, R., 1999. Ordu’da yetiştirilen bazı üzüm çeşitlerinin ampelografik özelliklerinin saptanması üzerine bir araştırma. Türkiye III. Ulusal Bahçe Bitkileri Kongresi. 14-17 Eylül. Ankara, 1009-1013.
  15. Burr, T.J., Katz, B.H., Bishop, A.L., Meyers, C.A., 1988. Effect of shoot age and tip culture propagation of grapes on systemic infestations by Agrobacterium tumefaciens Biovar 3. Amer. J. En