Dergiler / Gaziosmanpaşa Üniversitesi Ziraat Fakültesi Dergisi / 2004 / Cilt: 21 - Sayı: 1

Preparation and separation of food grade cellooligosaccharides

Gıda amaçlı sellooligosakkaritlerin hazırlanması ve saflaştırılması

Sayfa
27–32
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Sonuçlar sellotetroz ve sellopentozun %20 ethanolu hareketli faz olarak kullanılmasıyla oludukça saf bir formda elde edilebileceği gösterilmiştir.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Bu araştırmada sellooligosakkaritlerin selüloz sabit fazı ile ayrıştırılması çalışılmıştır.
📊
Temel Bulgular & Veri:Selüloz ve sellooligosakkaritlerin etanol-su karışımında interaksiyonu ve selülozdan elusyon sırası polimerizasyon derecesi ile orantılıdır yani uzun sellooligosakkaritler daha az çözünebilirliğe ve uzun alınkonma süresine sahiptir.
💡
Sonuç & Katkı:Sonuçlar sellotetroz ve sellopentozun %20 ethanolu hareketli faz olarak kullanılmasıyla oludukça saf bir formda elde edilebileceği gösterilmiştir.
🔬Tür:Araştırma Makalesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Alan Parametreleri

Özet

Bu araştırmada sellooligosakkaritlerin selüloz sabit fazı ile ayrıştırılması çalışılmıştır. Bu çalışmanın motivasyonu ise gıdalarda sellooligosakkaritlerin fonksiyonel sindirilmeyen oligosakkaritler olarak kullanımıdır. Burda selüloz sabit fazı kullanarak sellooligosakkaritlerin etanol-su hareketli fazı ile ayrıştırılmasına bakılmıştır. Selüloz ve sellooligosakkaritlerin etanol-su karışımında interaksiyonu ve selülozdan elusyon sırası polimerizasyon derecesi ile orantılıdır yani uzun sellooligosakkaritler daha az çözünebilirliğe ve uzun alınkonma süresine sahiptir. Mikrokristal selüloz sabit faz olarak kullanılabileceği bu çalışmada gösterilmiştir. Sonuçlar sellotetroz ve sellopentozun %20 ethanolu hareketli faz olarak kullanılmasıyla oludukça saf bir formda elde edilebileceği gösterilmiştir.

Abstract

The chromatographic separation of cellooligosaccharides using cellulose as a stationary phase was studied. The driving force of the work is the current interest in using cellooligosaccharides as functional non-digestible oligosaccharides in foods. The studies presented here illustrate the potential of using ethanol-water mobile phases in conjunction with cellulose stationary phases for cellooligosaccharide fractionation. The interaction between cellulose and cellooligosaccharide in ethanol-water mixtures and their elution order from cellulose-based columns using ethanol-water mobile phases were shown to be in line with their degree of polymerization (DP); the higher DP cellooligosaccharides being less soluble and having longer retention times. Microcrystalline cellulose was shown to work as chromatographic stationary phases. The results demonstrated that cellotetraose and cellopentaose could be obtained in relatively pure form using a cellulose stationary phase with a 20% ethanol mobile phase at room temperature.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

AKPINAR, Ö., PENNER, M. H. (2004). Preparation and separation of food grade cellooligosaccharides. Gaziosmanpaşa Üniversitesi Ziraat Fakültesi Dergisi, Cilt: 21 - Sayı: 1, 27–32. https://ajindex.com/articles/224703

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (13)

  1. Brown, W.1972. Partitioning in gel chromatography. Chem. Scr. 2, 25-29.
  2. Chitumbo, K. and Brown, W. 1971. The separation of oligosaccharides on cellulose gels. J. Polymer Sci. Part C 36, 279-292.
  3. Chitumbo, K. and Brown, W. 1973. Gel chromatography: interactions between gel matrix, solvent and solute. J. Chromatogr. 80, 187-197.
  4. Cummings, J.H., Macfarlene, G.T. and Englyst, H.T. 2001. Prebiotic digestion and fermentation. Am. J. Clin. Nutr. 73, 415S-420S. Freundlich, H. 1926. Adsorption. Cellulosechemie. 7, 57- 64. Garcia, E., Johnson, D., Whitaker, J. and Shoemaker, S. 1993.Assesment of endo-l,4-beta-glucanase activity by rapid colorimetric assay using disodium 2,2'-bicinchoninate. J.Food Biochem. 17, 135-145.
  5. Hamacher, K., Schmid, G., Sahm, H. and Wandrey, C. 1985. Structural heterogeneity of cellooligomers homogeneous according to high-resolution size- exclusion chromatography. J. Chromatogr. 319, 311-318.
  6. Huebner, A., Ladisch, M.R. and Tsao, G.T. 1978. Preparation of cellooligosaccharide: an engineering approach. Biotechnol. Bioengineer. 20, 1669-1677.
  7. John, M., Trenel, G. and Dellweg, H. 1969. Quantitative chromatography of homologous glucose oligomers and other saccharides using polyacrylamide gel. J.Chromatogr. 42,476-484.
  8. Ladisch, M.L., Huebner, A.L. and Tsao, G.T. 1978. Highspeed liquid chromatography of cellooligosaccharidess and other saccharide mixtures using water as the eluent. J.Chromatogr. 147, 185-193.
  9. Macfarlane, G.T and Cummings, J.H. 1999. Probiotics and prebiotics: can regulating the activities of intestinal bacteria benefit health. BMJ. 318, 999- 1003. Miller, G.L; Dean, J. and Blum, R. 1960. A study of methods for preparing oligosaccharide from cellulose. Arch. Biochem. Biophys. 91,21-26.
  10. Milner, J.A.2000. Functional foods: the US perspective. Am. J.Clin. Nutr. 71(suppl), 1654S-16549S. Pereira, A. N.; Kohlmann, K. L.; Ladisch, M. R. 1990. Analysis of sub-mi crogram quantities of cellooligosaccharidess by aqueous liquid chromatography using a differential refractometer. Biomass 23, 307-317.
  11. Robefroid, M.B. 1998. Prebiotics and synbiotics: concepts and nutritional properties. British J Nutr. 80, SI 97-202.
  12. Sabbagh, N.K. and Fagerson, I.S. 1976. Gel chromatography of glucose oligomers. A study of operational parameters. J.Chromatogr. 120, 55-63.
  13. Satouchi, M., Watanabe, T., Wakabayashi, S., Ohokuma, K., Koshijima, T. and Kuwahara, M. 1996. Digestibility, absorptivity, and physiological effects of cellooligosaccharides in human and rat. Nip