Dergiler / Flora İnfeksiyon Hastalıkları ve Klinik Mikrobiyoloji Dergisi / 2012 / Cilt: 17 - Sayı: 1

Norovirüsün genomik yapısı, replikasyonu ve epidemiyolojisi

Genomic structure, replication and epidemiology of norovirus

Sayfa
1–10
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Norovirüsün laboratuvar tanısında, genogrupların tayini ve virüsün tiplendirilebilmesi için altın standart, revers transkriptaz-polimeraz zincir reaksiyonudur, ancak hızlı tanı için daha çok ELISA ve immünkromatografik çabuk tanı testleri kullanılmaktadır.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Norovirüs çocuklarda ve yetişkinlerde yaygın olarak sporadik gastroenteritlere veya gıda ve su kaynaklı salgınlara neden olan bir RNA virüsüdür.
📊
Temel Bulgular & Veri:Genomik organizasyonu yapısal ve yapısal olmayan proteinleri kodlayan ORF1, ORF2 ve ORF3 olmak üzere üç açık okuma bölgesi [open reading frame (ORF)] içermektedir.
💡
Sonuç & Katkı:Norovirüsün laboratuvar tanısında, genogrupların tayini ve virüsün tiplendirilebilmesi için altın standart, revers transkriptaz-polimeraz zincir reaksiyonudur, ancak hızlı tanı için daha çok ELISA ve immünkromatografik çabuk tanı testleri kullanılmaktadır.
🔬Tür:Laboratuvar & Saha Deneyi
📍Kapsam:2008 Verileri
⚙️Değişkenler:Genomik · Epidemiyoloji · Norovirus

Özet

Norovirüs çocuklarda ve yetişkinlerde yaygın olarak sporadik gastroenteritlere veya gıda ve su kaynaklı salgınlara neden olan bir RNA virüsüdür. Genomik organizasyonu yapısal ve yapısal olmayan proteinleri kodlayan ORF1, ORF2 ve ORF3 olmak üzere üç açık okuma bölgesi [open reading frame (ORF)] içermektedir. ORF1, yapısal olmayan poliproteini kodlarken; ORF2 yapısal majör kapsid proteini VP1'i, ORF3 ise yapısal VP2 proteinini kodlamaktadır. Norovirüsler nükleotid dizi benzerliğine göre beş genogruba ayrılmaktadır. İnsanları infekte eden genogruplar GI, GII ve GIV'tür. GIII genogrubu sığır türlerini, GV genogrubu ise fare türlerini infekte etmektedir. Norovirüsün replikasyonu virüsün in vitro koşullarda kültürü yapılamadığı için henüz tam olarak aydınlatılamasa da hayvanları infekte eden diğer genogrupların kültürleri kullanılarak çeşitli çalışmalar yürütülmektedir. Dünyada ve Türkiye'de, norovirüs her yaş grubundan insanı infekte edebildiği gibi; daha çok çocuklar ve yaşlıların yaşadığı topluluklarda salgınlara neden olmaktadır. Bu salgınların çoğundan GII, özellikle de GII.4 genotipinin suşları sorumludur. GII genogrubunu, GI suşları izlemekte, GIV ise daha az oranda görülmektedir. Türkiye'de 2008 yılında meydana gelen salgında da GI ve GII genogrupları saptanmıştır. Ülkemizde norovirüs ile ilgili yapılan az sayıdaki çalışmada da GII genogrubuna daha sık rastlanmıştır. Özellikle akut gastroenteritli çocukların dahil edildiği araştırmalar öne çıkmakta ve yaklaşık %10-17 oranında norovirüs pozitifliği saptanmaktadır. Norovirüsün laboratuvar tanısında, genogrupların tayini ve virüsün tiplendirilebilmesi için altın standart, revers transkriptaz-polimeraz zincir reaksiyonudur, ancak hızlı tanı için daha çok ELISA ve immünkromatografik çabuk tanı testleri kullanılmaktadır.

Abstract

Norovirus is an RNA virus that causes commonly sporadic gastroenteritis or foodborne and waterborne outbreaks in children and adults. Its genomic organization includes three open reading frames (ORF) ORF1, ORF2 and ORF3 which encode the structural and the non-structural proteins. ORF1 encodes the non-structural polyprotein, ORF2 encodes VP1 which is the structural major capsid protein and ORF3 encodes structural protein VP2. Noroviruses are subdivided into five genogroups according to the nucleotide sequence similarity. Genogroups infecting humans are GI, GII and GIV. Genogroup GIII infects bovine species, genogroup GV infects murine species. Due to the lack of an in vitro culture system, noroviruses replication is not elucidated, however several studies are carried out using the culture of other genogroups infecting animals. Around the world and in Turkey as well as norovirüs can infect every age groups of people, outbreaks commonly occur in communities containing rather children and elderly population. Genogroup II and especially genotype GII.4 strains are responsible from the bulk of these outbreaks. Genogroup II is followed by GI and GIV is seen less common. GI and GII genogroups were detected in an outbreak that occurred in Turkey in 2008. In a few studies had been carried out about norovirus in our country genogroup GII is detected more often. Especially, studies involved children with acute gastroenteritis are prominent and approximately 10-17% norovirüs positivity is detected. In the laboratory diagnosis of noroviruses reverse transcriptase-polymerase chain reaction is the gold standard to determine the genogroups, however ELISA and immunochromatographic rapid diagnostic tests are in common use for quick results.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

KOÇAK, A. A., BOZDAYI, G. (2012). Norovirüsün genomik yapısı, replikasyonu ve epidemiyolojisi. Flora İnfeksiyon Hastalıkları ve Klinik Mikrobiyoloji Dergisi, Cilt: 17 - Sayı: 1, 1–10. https://ajindex.com/articles/201560

Kaynakça (15)

  1. Thornton AC, jennings-Conklin KS, McCormick MI. Norovi-ruses: agents in outbreaks of acute gastroenteritis. Disaster Manage Response 2004;2:4-9
  2. Ustaçeiebi Ş, Abacıoğlu H, Badur S. Norwaik virus. Ustaçe-iebi Ş, Abacıoğlu H, Badur S (editörler). Moleküler, Klinik ve Tanısal Viroloji
  3. Baskı. Ankara: Güneş Kitabevi, 2004: 249-53
  4. Koo HL, Ajami N, Atmar RL, Dupont HL. Noroviruses: the principal cause of foodborne disease worldwide. Discov Med 2010;10:61-70
  5. Siebenga J}, Vennema H, Zheng DP, Vinje ), Lee BE, Pang XL, et al. Norovirus illness is a global problem: emergence and spread of norovirus G 11.4 variants, 2001-2007. J Infect Dis 2009;200:802-12
  6. Mladenova Z, Korsun N, Ceonova T, Di Bartolo I, Fiore L, Ruggeri FM, et al. Prevalence and molecular epidemiology of noroviruses detected in outbreak and sporadic cases of gcu-te gastroenteritis in Bulgaria. ] Med Virol 2008;80:2161-8
  7. Atmar RL, Estes MK. Diagnosis of noncultivatable gastroenteritis viruses, the human caliciviruses. Clin Microbiol Rev 2001;1:15-37, 7. Rabenau HF, Stürmer M, Buxbaum S, Walczok A, Preiser W, Doerr HW. Laboratory diagnosis of norovirus: Which method is the best? Intervirology 2003;46:232-8
  8. Bruin E, Duizer E, Vennema H, Koopmans MPC. Diagnosis of norovirus outbreaks by commercial ELISA or RT-PCR. j Virol Methods 2006; 137:259-64
  9. Vipond IB, Pelosi E, Williams I, Ashley CR, Lambden PR, Clarke IN, et al. A diagnostic EIA for detection of the prevalent SRSV strain in United Kingdom outbreaks of gastroenteritis. ) Med Virol 2000;61:132-7
  10. Richards CP, Watson MA, Fankhauser RL, Monroe SS. Ge-nogroup I and II noroviruses detected in stool samples by real-time reverse transcription-PCR using highly degenerate universal primers., Appl Environ Microbiol 2004;70:7179-84
  11. Mohamed N, Belak S, Hedlund KO, Blomberg j. Experience from the development of a diagnostic single tube real-time PCR for human caliciviruses, norovirus genogroups I and II. J Virol Methods 2006;132:69-76
  12. Donaldson EF, Lindesmith LC, Lobue AD, Baric RS. Norovirus pathogenesis: mechanisms of persistence and immune evasion in human populations. Immunol Rev 2008;225:190-11
  13. Tan M, Fang P, Chachiyo T, Xia M, Huang P, Fang Z, et al. Noroviral P particle: structure, function and applications in virus-host interaction. Virology 2008;382:115-23
  14. Bull RA, White PA. Mechanisms of C 11.4 norovirus evolution. Trends Microbiol 2011;5:233-40
  15. Prasad BV, Hardy ME, Dokland T, Bella J, Rossm