Dergiler / Gazi Üniversitesi Mühendislik Mimarlık Fakültesi Dergisi / 2013 / Cilt: 28 - Sayı: 4

R.Delemar’ın Üremesi Ve Lipaz Üretimi Üzerine Karıştırma Ve Havalandırma Hızlarının Etkisinin Glukoz Veya Melas Sakkarozu Ve Pfr İçeren Ortamlarda Araştırılması

EFFECTS OF STIRRING AND AERATION RATES ON LIPASE PRODUCTION AND GROWTH OF R. DELEMAR IN THE MEDIA CONTAINING GLUCOSE OR MOLASSES SUCROSE AND PFC

Sayfa
811–818
Yayın Tarihi
2014-03-27
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Havalandırma hızının lipaz aktivitesi üzerine etkisi 1-4 vvm aralığında incelenmiş, enyüksek lipaz aktiviteleri karbon kaynağı olarak glukoz veya melas sakkarozu ve %10 PFR içeren ortamlarda 2 vvm havalandırma hızında sırasıyla 102,67 U/L, 171,20 U/L olarak bulunmuştur.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Lipazlar (triacylglycerol hydrolases) yağ-su arayüzeyinde uzun zincirli açilgliserollerin ester bağlarının hidrolizini katalizleyen hidrolitik enzimlerdir.
📊
Temel Bulgular & Veri:Rhizopus delemar’ ın lipaz üretimi için karıştırma hızı, havalandırma hızı ve oksijen taşıyıcı olarak kullanılan perflorokarbon (PFR) miktarının etkisi karbon kaynağı olarak glukoz veya melas sakkarozu kullanılan ortamlarda kesikli bir biyoreaktörde incelenmiştir.
💡
Sonuç & Katkı:Havalandırma hızının lipaz aktivitesi üzerine etkisi 1-4 vvm aralığında incelenmiş, enyüksek lipaz aktiviteleri karbon kaynağı olarak glukoz veya melas sakkarozu ve %10 PFR içeren ortamlarda 2 vvm havalandırma hızında sırasıyla 102,67 U/L, 171,20 U/L olarak bulunmuştur.
🔬Tür:Araştırma Makalesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Lipaz · R. delemar · karıştırma hızı

Özet

Lipazlar (triacylglycerol hydrolases) yağ-su arayüzeyinde uzun zincirli açilgliserollerin ester bağlarının hidrolizini katalizleyen hidrolitik enzimlerdir. Rhizopus delemar’ ın lipaz üretimi için karıştırma hızı, havalandırma hızı ve oksijen taşıyıcı olarak kullanılan perflorokarbon (PFR) miktarının etkisi karbon kaynağı olarak glukoz veya melas sakkarozu kullanılan ortamlarda kesikli bir biyoreaktörde incelenmiştir. Maksimumlipaz aktiviteleri, ana karbon kaynağı olarak glukoz veya melas sakkarozu içeren ortamlarda sırasıyla 43,0 U/Lve 103,12 U/L olarak 150 ve 200 devir/min karıştırma hızlarında büyümenin durgun fazında (fermentasyonun120. saati) elde edilmiştir. Havalandırma hızının lipaz aktivitesi üzerine etkisi 1-4 vvm aralığında incelenmiş, enyüksek lipaz aktiviteleri karbon kaynağı olarak glukoz veya melas sakkarozu ve %10 PFR içeren ortamlarda 2 vvm havalandırma hızında sırasıyla 102,67 U/L, 171,20 U/L olarak bulunmuştur.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

AÇIKEL, Y. S., ERŞAN, M., AÇIKEL, Ü. (2014). R.Delemar’ın Üremesi Ve Lipaz Üretimi Üzerine Karıştırma Ve Havalandırma Hızlarının Etkisinin Glukoz Veya Melas Sakkarozu Ve Pfr İçeren Ortamlarda Araştırılması. Gazi Üniversitesi Mühendislik Mimarlık Fakültesi Dergisi, Cilt: 28 - Sayı: 4, 811–818. https://ajindex.com/articles/20156

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (15)

  1. Ellaiah P., Prabhakar T., Ramakrishna B., Thaer Taleb A., Adinarayana K., “Production of lipase by immobilized cells of Aspergillus niger”, Process Biochemistry, 39, 525-528, 2004.
  2. Tweddell R.J., Kermasha S., Combes D., Marty A., “Esterification and interesterification activies of lipases from Rhizopus niveus and Mucor miehei in three different types of organic media: a comparative study”, Enzyme Microb. Technol.,, 439-445, 1998.
  3. Isobe K., Akiba T., Yamaguchi S., “Crystallization and characterization of lipase from Penicillium cyclopium”, Agric. Biol. Chem., 52 (1), 41-47, 1988.
  4. Farooqui A.A., Yang H.C., Horrock L.A., “Purification of lipases, phospholipases and kinases by heparin–Sepharose chromatography”, J. Chromatogr., 673 (2), 149 –158, 1994.
  5. Pabai F., Kermasha S., Morin A., “Lipase from Pseudomonas fragi CRDA 323: partial purification, characterization and interesterification of buffer fat”, Appl. Microbiol. Biotechnol., 43, 42-51, 1995.
  6. Dharmsthiti S., Kuhasuntisuk B., “Lipase from Pseudomonas aeruginosa LP602: biochemical properties and application for wastewater treatment”, J. Indust. Microbiol. Biotechnol.,, 75-80, 1998.
  7. Taipa M.A., Aires-Barros M.R., Cabral J M.S., “Purification of lipases”, J. Biotechnol., 26, 111-, 1992.
  8. Schuepp C., Kermasha S., Michalski M.-C., Morin A., “Production, partial purification and characterisation of lipases from Pseudomonas fragi CRDA 037”, Process Biochem., 32, 225-, 1997. Giuseppin M.L.F., “Effects of dissolved oxygen concenytration on lipase production by Rhizopus delemar”, Appl. Microbiol. Biotechnol., 20, -165, 1984.
  9. Burkert J.F.M., Maugeri F., Rodrigues M.I., “Optimization of extracellular lipase production by Geotrichum sp. Using factorial design”, Bioresource Technol., 91, 77-84, 2004.
  10. Vadehra D.A., Harmon L.G. “Factors affecting production of staphylococcal lipase”, J. Appl. Bacteriol., 32, 147-150, 1969.
  11. Lee S.Y., Rhee J.S., “Production and partial prufication of a lipase from Pseudomonas putida”, Enzyme Microbiol. Biotechnol., 15, -623, 1993.
  12. Elibol M., Özer, Da., “Lipase production by immobilised Rhizopus arrhizus”, Process Biochem., 36, 219-223, 2000.
  13. Elibol M., Mavituna F., “Effect of perfluorodecalin as an oxygen carrier on actinorhodin production by Streptomyces coelicolor A3(2)”, Appl. Microbiol. Biotechnol.,, 206-210, 1995.
  14. Elibol M., Özer Db., “Influence of oxygen transfer on lipase production by Rhizopus arrhizus”, Process Biochem., 36, 325-329, 2000.
  15. Açıkel Ü., Erşan M., Sağ Acıkel Y., “T