Dergiler / Journal of Limnology and Freshwater Fisheries Research / 2017 / Cilt: 3 - Sayı: 1

Effect of Different Straw Volumes and Thawing Rates on Post-Thaw Quality and Fertilization Ability of Cryopreserved Common Carp (Cyprinus carpio) Sperm

Farklı Payet Hacmi ve Çözdürme Oranlarının Dondurulmuş Sazan (Cyprinus carpio) Spermasının Çözüm Sonu Kalitesi ve Fertilizasyon Yeteneği Üzerine Etkisi

Sayfa
25–31
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Dondurulan spermanın çözdürme işlemi su banyosunda 30°C'de 10, 20 ve 30 s süre ile gerçekleştirilmiştir. fertilizasyon, 1,5 mL payetlerde dondurulan ve 30 °C'de 30 s'de çözdürülen grupta %68,4±2,5 oranında tespit edilmiştir.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Sperm hücrelerinin kriyoprezervasyonu, akuatik genetik kaynaklarının uzun süreli korunumu için uygulanan bir işlemdir.
📊
Temel Bulgular & Veri:Bu araştırmanın amacı; farklı payet hacimlerinin ve çözdürme oranlarının dondurulan sazan (Cyprinus carpio) spermasının çözüm sonu kalite ve fertilizasyon yeteneği üzerine olan etkisini belirlemektir.
💡
Sonuç & Katkı:Dondurulan spermanın çözdürme işlemi su banyosunda 30°C'de 10, 20 ve 30 s süre ile gerçekleştirilmiştir. fertilizasyon, 1,5 mL payetlerde dondurulan ve 30 °C'de 30 s'de çözdürülen grupta %68,4±2,5 oranında tespit edilmiştir.
🔬Tür:Araştırma Makalesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Alan Parametreleri

Özet

Sperm hücrelerinin kriyoprezervasyonu, akuatik genetik kaynaklarının uzun süreli korunumu için uygulanan bir işlemdir. Bu araştırmanın amacı; farklı payet hacimlerinin ve çözdürme oranlarının dondurulan sazan (Cyprinus carpio) spermasının çözüm sonu kalite ve fertilizasyon yeteneği üzerine olan etkisini belirlemektir. Bu çalışmada sperma, konvansiyonel yavaş dondurma protokolüne göre dondurulmuştur. Bu amaçla kullanılan kriyosolüsyon 75 mM NaCl, 70 mM KCl, 2 mM CaCl2, 1 mM MgSO4 and 20 mM Tris (pH: 8) ve %10 MeOH içermiştir. +4 °C'de 10 dk. Ekilibrasyon işlemini takiben sperma 0,25, 0,5 ve 1,5 mL'lik payetler içerisinde sıvı azot buharında (-120 °C'de 10 dk) dondurularak sıvı azot tankında (-196 oC) depolanmıştır. Dondurulan spermanın çözdürme işlemi su banyosunda 30°C'de 10, 20 ve 30 s süre ile gerçekleştirilmiştir. fertilizasyon, 1,5 mL payetlerde dondurulan ve 30 °C'de 30 s'de çözdürülen grupta %68,4±2,5 oranında tespit edilmiştir. Bu araştırmanın sonuçlarına göre sazan yumurtalarının döllenmesinde %10 oranında methanol içeren sulandırıcıda 1,5 mL payetler içerisinde dondurulan sperma kullanılması yüksek fertilizasyon elde edilebilmesi açısından uygundur.

Abstract

Cryopreservation of sperm cells is an essential process applied for long-term conservation of aquatic genetic resources. The goal of this research was to determine effect different of straw volumes and thawing rates on the postthaw quality and fertilization ability of cryopreserved common carp (Cyprinus carpio) sperm. In this study, semen was cryopreserved according to conventional slow freezing protocol. For this aim, the cryosolution contained 75 mM NaCl, 70 mM KCl, 2 mM CaCl2, 1 mM MgSO4 and 20 mM Tris (pH: 8) supplemented with 10% MeOH. Following equilibration at +4 °C for 10 min, semen was packed into 0.25, 0.5 and 1.5 mL straws and frozen in liquid nitrogen vapour (for 10 min at -120 ºC) and finally stored in liquid nitrogen (-196 ºC) tank. Thawing of cryopreserved semen process was performed at 30 ºC for 10, 20 and 30 seconds in a water bath. Fertilization was performed using a ratio of 1x105 spermatozoa/egg. The highest fertility (68.4±2.5%) was determined with cryopreserved sperm packed in 1.5 mL straws that thawed at 30 ºC for 30 s. According to the results of this research, sperm cryopreserved with ionic extender containing 10% methanol and packed in 1.5 mL straws are suitable to achieve high fertilization of common carp eggs.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

BOZKURT, Y., YAVAŞ, İ. (2017). Effect of Different Straw Volumes and Thawing Rates on Post-Thaw Quality and Fertilization Ability of Cryopreserved Common Carp (Cyprinus carpio) Sperm. Journal of Limnology and Freshwater Fisheries Research, Cilt: 3 - Sayı: 1, 25–31. https://ajindex.com/articles/195581

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (5)

  1. Akçay E, Bozkurt Y, Seçer S, Tekin N. 2004.Cryopreservation of mirror carp semen. Turk J Vet Anim Sci. 28(5):837-843.
  2. Alvarez B, Fuentes R, Pimentel R, Abad Z, Cabrera E, Pimentel E, Arenal A. 2003. High fry production rates using post-thaw silver carp (Hypophthalmichtys molitrix) spermatozoa under farming conditions. Aquaculture. 220(1):195-201.doi: 10.1016/S0044-8486(02)00356-3 Ashwood-Smith MJ. 1980. Low-temperature preservation of cells, tissues and organs. In: Ashwood-Smith, M.J., Farrant, J. (Eds.). Low Temperature Preservation in Medicine and Biology. Pitman Medical, Turnbridge Wells, pp. 19-45.
  3. Basavaraja N, Hegde SN. 2004. Cryopreservation of the endangered mahseer (Tor khudree) spermatozoa: I. Effect of extender composition, cryoprotectants, dilution ratio and storage period on post-thaw viability. Cryobiology. 49(2):149-156.doi: 10.1016/j.cryobiol.2004.05.007 Billard R. 1992. Reproduction in rainbow trout: sex differentiation, dynamics of gametogenesis, biology and preservation of gametes. Aquaculture. 100(1-3):263-298.doi:10.1016/0044-8486(92)90385-x Bozkurt Y, Akcay E, Tekin N, Secer S. 2005. Effect of freezing techniques, extenders and cryoprotectants on the fertilization rate of frozen rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) sperm. The Israeli Journal of Aquaculture-Bamidgeh. 57(2):125-130.doi: 10524/19138 Cabrita E, Anel L, Herráez MP. 2001. Effect of external cryoprotectants as membrane stabilizers on cryopreserved rainbow trout sperm. Theriogenology. 56(4):623-635.doi: 10.1016/S0093-691X(01)00594-5
  4. Cruz-Casallas PE, Pardo-Carrasco SC, Arias-Castellanos JA, Lombo-Castellanos PE, Lombo-Rodríguez DA, Pardo-Mariño JE. 2004. Cryopreservation of Yamú Brycon siebenthalae milt. J World Aquacult Soc. 35(4):529-535.doi:10.1111/j.1749-7345.2004.tb00120.x De Graaf JD, Berlinsky DL. 2004. Cryogenic and refrigerated storage of rainbow smelt (Osmerus mordax) spermatozoa. J World Aquacult Soc. 35(2):209-216.doi: 10.1111/j.1749-7345.2004.tb01076.x Glogowski J, Ciereszko A, Dabrowski K. 1999. Cryopreservation of muskellunge and yellow perch semen. North Am J Aquacult. 61(3):258-262. doi: 10.1577/1548-8454(1999)0612.0.CO;2 Glogowski J, Kolman R, Szczeptowscki M, Horvath A, Urbanyi B, Scieczynski P, Rzemieniecki A, Domagala J, Demianowicz W, Kowalski R, Ciereszko A. 2002. Fertilizing rate of Siberian sturgeon (Acipenser baerii, Brandt) semen cryopreserved with methanol. Aquaculture.211(1):367-373.doi: 10.1016/S0044-8486(02)00003-0
  5. Harvey B, Kelley RN, Ashwood-Sm