Dergiler / Kafkas Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi / 2020 / Cilt: 26 - Sayı: 5

Complete Genome Sequencing of Mycoplasma bovis Type Strain Ningxia-1 and Systematic Bioinformatic Characterization for Housekeeping-related Genes

Mycoplasma bovis Ningxia-1 Suşunun Tüm Genom Sekanslaması ve Housekeeping İlişkili Genlerin Sistematik Biyoinformatik Karakterizasyonu

Sayfa
647–656
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Our bioinformatic analysis is intended to provide new and complementary data in mining and making comparisons of housekeeping genes through M. bovis type strain Ningxia-1 sequencing.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Mycoplasma bovis is a major pathogen leading to bovine respiratory disease syndrome.
📊
Temel Bulgular & Veri:We used Picbio SMRT technology of next-generation sequencing for M. bovis Ningxia-1 isolation and applied different tools (Mega X, STRING v11.0, TMHMM v2.0, MOTIF) for bioinformatics analysis.
💡
Sonuç & Katkı:Our bioinformatic analysis is intended to provide new and complementary data in mining and making comparisons of housekeeping genes through M. bovis type strain Ningxia-1 sequencing.
🔬Tür:Araştırma Makalesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Alan Parametreleri

Özet

Mycoplasma bovis is a major pathogen leading to bovine respiratory disease syndrome. The worldwide prevalence of this pathogen has caused enormous economic losses in the beef industry. Substantial efforts have been made to identify and characterize the surface proteins of M. bovis. However, little is known regarding experimentally proved housekeeping genes, or the distribution and the number of motifs within these genes in M. bovis. We used Picbio SMRT technology of next-generation sequencing for M. bovis Ningxia-1 isolation and applied different tools (Mega X, STRING v11.0, TMHMM v2.0, MOTIF) for bioinformatics analysis. The present study compared M. bovis Ningxia-1 strain with another ten M. bovis strains with sequenced whole genome and identified 24 housekeeping genes in each strain. The phylogenetic tree indicates a close relationship between M. bovis Ningxia-1 with NM2012 based on BLAST results of these genes. Within the 24 housekeeping genes in M. bovis Ningxia-1 stain, 3/24 (12.5%) of the genes have the potential to be used as internal control genes, 2 sets of proteins have interactions which have been proved under experimental and database conditions. MetG is a putative transmembrane protein, while others are predicted to be located outside of the membrane. Additionally, there are 6 common motifs distributed among 7 of the proteins (29.17%). Our bioinformatic analysis is intended to provide new and complementary data in mining and making comparisons of housekeeping genes through M. bovis type strain Ningxia-1 sequencing.

Abstract

Mycoplasma bovis, sığır solunum hastalığı sendromuna yol açan önemli bir patojendir. Bu patojenin dünya çapında yaygınlığı, sığır eti endüstrisinde büyük ekonomik kayıplara neden olmuştur. M. bovis’in yüzey proteinlerini tanımlamak ve karakterize etmek için önemli çabalar sarf edilmiştir. Bununla birlikte, M. bovis‘te deneysel olarak kanıtlanmış housekeeping genleri veya bu genler içindeki motiflerin dağılımı ve sayısı hakkında çok az şey bilinmektedir. M. bovis Ningxia-1 izolasyonu için yeni nesil sekanslama Picbio SMRT teknolojisini kullandık ve biyoinformatik analiz için farklı araçlar (Mega X, STRING v11.0, TMHMM v2.0, MOTIF) uyguladık. Bu çalışma ile M. bovis Ningxia-1 suşu, sekanslanmış tam genomlu başka bir M. bovis suşu ile karşılaştırıldı ve her suşta 24 housekeeping geni tanımladı. Filogenetik ağaç, bu genlerin BLAST sonuçlarına dayanarak M. bovis Ningxia-1 ile NM2012 arasında yakın bir ilişki olduğunu gösterdi. M. bovis Ningxia-1 boyasındaki 24 housekeeping geni içinde, genlerin 3/24’ü (%12.5) internal kontrol genleri olarak kullanılma potansiyeline sahiptir, proteinlerin 2 seti deneysel ve veritabanı koşullarında kanıtlanmış etkileşim göstermektedir. MetG varsayılan bir transmembran protein olmasına rağmen, diğerlerinin membranın dışında olduğu tahmin edilmektedir. Ek olarak, 7 proteine (%29.17) dağılmış 6 yaygın motif bulunmaktadır. Biyoinformatik analizimiz, veri madenciliğinde yeni ve tamamlayıcı veriler ortaya koymuş ve M. bovis tipi Ningxia-1 dizileme yoluyla temel genlerin karşılaştırmalarını yapmayı sağlamıştır.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

SUN, P., FU, Y., WAN, Q., YOSRI, M., HE, S., SHEN, X. (2020). Complete Genome Sequencing of Mycoplasma bovis Type Strain Ningxia-1 and Systematic Bioinformatic Characterization for Housekeeping-related Genes. Kafkas Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi, Cilt: 26 - Sayı: 5, 647–656. https://ajindex.com/articles/180550

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (1)

  1. Bürki S, Frey J, Pilo P: Virulence, persistence and dissemination of Mycoplasma bovis. Vet Microbiol, 179 (1): 15-22, 2015. DOI: 10.1016/j. vetmic.2015.02.024 2. Nicholas RAJ, Fox LK, Lysnyansky I: Mycoplasma mastitis in cattle: To cull or not to cull. Vet J, 216, 142-147, 2016. DOI: 10.1016/j.tvjl.2016.08.001 3. Caswell JL, Archambault M: Mycoplasma bovis pneumonia in cattle. Anim Health Res Rev, 8 (2): 161-186, 2007. DOI: 10.1017/s1466252307001351 4. Gagea MI, Bateman KG, Shanahan RA, van Dreumel T, McEwen BJ, Carman S, Archambault M, Caswell JL: Naturally occurring Mycoplasma bovis-associated pneumonia and polyarthritis in feedlot beef calves. J Vet Diagn Invest, 18 (1): 29-40, 2006. DOI: 10.1177/104063870601800105 5. Alberti A, Addis MF, Chessa B, Cubeddu T, Profiti M, Rosati S, Ruiu A, Pittau M: Molecular and antigenic characterization of a Mycoplasma bovis strain causing an outbreak of infectious keratoconjunctivitis. J Vet Diagn Invest, 18 (1): 41-51, 2006. 6. Maeda T, Shibahara T, Kimura K, Wada Y, Sato K, Imada Y, Ishikawa Y, Kadota K: Mycoplasma bovis-associated suppurative otitis media and pneumonia in bull calves. J Comp Pathol, 129 (2-3): 100-110, 2003. DOI: 10.1016/S0021-9975(03)00009-4 7. Ayling R, Nicholas R, Hogg R, Wessels J, Scholes S, Byrne W, Hill M, Moriarty J, O’Brien T: Mycoplasma bovis isolated from brain tissue of calves. Vet Rec, 156 (12): 391-392, 2005. DOI: 10.1136/vr.156.12.391-b 8. Hermeyer K, Peters M, Brügmann M, Jacobsen B, Hewicker-Trautwein M: Demonstration of Mycoplasma bovis by immunohistochemistry and in situ hybridization in an aborted bovine fetus and neonatal calf. J Vet Diagn Invest, 24 (2): 364-369, 2012. DOI: 10.1177/1040638711435145 9. Schibrowski ML, Gibson JS, Hay KE, Mahony TJ, Barnes TS: Mycoplasma bovis and bovine respiratory disease: A risk factor study in Australian feeder cattle. Prev Vet Med, 157, 152-161, 2018. DOI: 10.1016/j. prevetmed.2018.06.005 10. Calcutt MJ, Lysnyansky I, Sachse K, Fox LK, Nicholas RAJ, Ayling RD: Gap analysis of Mycoplasma bovis disease, diagnosis and control: An aid to identify future development requirements. Transbound Emerg Dis, 65, 91-109, 2018. DOI: 10.1111/tbed.12860 11. Taylor-Robinson D, Bebear C: Antibiotic susceptibilities of mycoplasmas and treatment of mycoplasmal infections. J Antimicrob Chemother, 40 (5): 622-630, 1997. DOI: 10.1093/jac/40.5.622 12. Biddle MK, Fox LK, Hancock DD: Patterns of mycoplasma shedding in the milk of dairy cows with intramammary mycop