Dergiler / Tarım Bilimleri Dergisi / 2016 / Cilt: 22 - Sayı: 1

Kiraz Anaçlarının in vitro Koşullarda Tuz Stresine Tolerans Mekanizmalarının Fizyolojik Parametreler ve Antioksidan Enzim İzoformları ile Belirlenmesi

Evaluation of Salt Tolerance Mechanisms with Physiological and Antioxidant Enzyme Isoform Parameters in in vitro Sweet Cherry Rootstocks

Sayfa
117–128
Yayın Tarihi
2016-01-01
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Bütün parametreler birlikte değerlendirildiğinde, NaCl stresine Maxma anacının hassas, Colt anacının orta derecede hassas ve Gisela 5 anacının da dayanıklı olduğu belirlenmiştir

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Tuzluluk, bitkilerde gelişim ve verimi sınırlayan önemli abiyotik stres koşullarının başında gelmektedir.
📊
Temel Bulgular & Veri:Bu çalışmada, ülkemizde yetiştirilen üç kiraz anacının; Colt Prunus avium x Prunus pseudocerasus , Gisela 5 Prunus cerasus x Prunus avium ve Maxma Prunus mahaleb x Prunus avium , tuz stresine tolerans mekanizmaları in vitro koşullarda araştırılmıştır.
💡
Sonuç & Katkı:Bütün parametreler birlikte değerlendirildiğinde, NaCl stresine Maxma anacının hassas, Colt anacının orta derecede hassas ve Gisela 5 anacının da dayanıklı olduğu belirlenmiştir
🔬Tür:Araştırma Makalesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Enzim izoformu · Katalaz · Kiraz anaçları

Özet

Tuzluluk, bitkilerde gelişim ve verimi sınırlayan önemli abiyotik stres koşullarının başında gelmektedir. Kiraz anaçlarının tuz stresi toleransları ile ilgili bilgiler oldukça sınırlıdır. Bu çalışmada, ülkemizde yetiştirilen üç kiraz anacının; Colt Prunus avium x Prunus pseudocerasus , Gisela 5 Prunus cerasus x Prunus avium ve Maxma Prunus mahaleb x Prunus avium , tuz stresine tolerans mekanizmaları in vitro koşullarda araştırılmıştır. Kiraz anaçlarının tuz stresine toleranslarını belirlemek amacıyla Murashige ve Skoog MS ortamına 0, 25 ve 50 mM NaCl uygulanmıştır. Anaçlarda; sürgün gelişimi, lipid peroksidasyonu MDA , membran geçirgenliği MG , toplam antioksidan aktivitesi TAA , prolin içeriği, toplam klorofil içeriği, katalaz CAT, EC 1.11.1.6 ve peroksidaz POD, EC 1.11.1.7 antioksidan enzim izoformları ile Na ve Cl konsantrasyonları belirlenmiştir. Tuz stresi anaçların sürgün gelişimini ve toplam klorofil içeriğini kontrole göre azaltırken MDA içeriğini, MG, TAA ve prolin içeriğini artırmıştır. Anaçların stres koşullarında sürgün POD enzim aktivitesi artmış ve üç farklı POD izoformu elde edilmiştir. Maxma anacının POD aktivitesi diğer anaçların POD aktivitesinden daha düşük olmuştur. Anaçların CAT izoformlarında ise uygulamalar ve anaçlar arasında belirgin bir farklılık elde edilmemiştir. Bütün parametreler birlikte değerlendirildiğinde, NaCl stresine Maxma anacının hassas, Colt anacının orta derecede hassas ve Gisela 5 anacının da dayanıklı olduğu belirlenmiştir

Abstract

Abiotic stress such as salinity is an important factor that limits plant growth and performance. Information regarding the genotypic variation for salinity stress tolerance in sweet cherry rootstocks is limited. In this study, salinity tolerance mechanisms of three sweet cherry rootstocks, namely; Colt Prunus avium x Prunus pseudocerasus , Gisela 5 Prunus cerasus x Prunus avium and Maxma Prunus mahaleb x Prunus avium , grown widely in Turkey were investigated under in vitro condition. The three rootstocks were cultured in vitro on MS medium supplemented with 0, 25 and 50 mM sodium chloride NaCl . The Shoot growth, lipid peroxidation MDA , membrane permeability MP , total antioxidant activity TAA , proline, total chlorophyll contents, catalase CAT, EC 1.11.1.6 and peroxidase POD, EC 1.11.1.7 antioxidant enzyme isoforms of rootstocks were studied. Compared to the control, salinity resulted in a reduction in the shoot growth and total chlorophyll contents. Contrary to this, MDA contents, MP, TAA and proline contents were increased by salinity. Activity of POD in the shoot of rootstocks was increased and three different POD isoforms were exhibited under saline conditions. The activity of POD was lower in the Maxma than the Colt and Gisela 5 rootstock. Salinity did not significantly change the CAT isoforms of the rootstocks. Regarding the all parameters studied, the rootstocks can be classified to their salt tolerance as sensitive Maxma , moderately sensitive Colt and resistant Gisela 5

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

ERASLAN, F., ARICI, Ş. E., ERDAL, İ., KÜÇÜKYUMUK, Z. (2016). Kiraz Anaçlarının in vitro Koşullarda Tuz Stresine Tolerans Mekanizmalarının Fizyolojik Parametreler ve Antioksidan Enzim İzoformları ile Belirlenmesi. Tarım Bilimleri Dergisi, Cilt: 22 - Sayı: 1, 117–128. https://ajindex.com/articles/178422

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (13)

  1. Alpaslan M & Gunes A (2001). Interactive effects of boron and salinity stress on the growth, membrane permeability and mineral composition of tomato and cucumber plants. Plant and Soil 236: 123-128
  2. Arnon D M (1949). Copper enzymes in isolated chloroplasts polyphenoloxidase in Beta vulgaris. Plant Physiology 24: 1-15
  3. Asish K P, Anath B D & Prasanna M (2004). Defense potentials to NaCl in mangrove, Bruguiera parviflora: Differential changes of isoforms of some antioxidative enzymes. Journal of Plant Physiology 161: 531-542
  4. Aziz A, Martin-Tanguy J & Lather F (1999). Salt stress- induced proline accumulation and changes in tyramine and polyamine levels are linked to ionic adjustment in tomato leaf discs. Plant Science 145: 83-91
  5. Balal R M, Ashraf M Y, Khan M M, Jaskani M J & Ashfaq M (2011). Influence of salt stress on growth and biochemical parameters of citrus rootstocks. Pakistan Journal of Botany 43(4): 2135-2141
  6. Bates L S, Waldren R P & Teare I D (1973). Rapid determination of free proline for water-stress studies. Plant and Soil 39: 205-207
  7. Bradford M M (1976). A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry 72: 248-254
  8. Cadenas S E (1989). Biochemistry of oxygen toxicity. Annual Review Biochemistry 58: 79-110 Cherian S & Reddy M P (2003). Evaluation of NaCl tolerance in the callus cultures of Suaeda nudiflora Moq. Biologia Plantarum 46: 193-198
  9. Chinta S, Lakshmi A & Giridarakumar S (2001). Change in the antioxidant enzyme efficacy in two high yielding genotypes of mulberry (Morus alba L.) under NaCl salinity. Plant Science 161: 613-619
  10. Cornic G (1996). Drought stress inhibits photosynthesis by decreasing stomatal aperture-not by affecting ATP synthesis. Trends in Plant Science 1: 21-26
  11. Davies K J A (1987). Protein damage and degradation by oxygen radicals. I. General aspects. Journal of Biological Chemistry 262: 9895-9901 Dragišić Maksimović J, Zhang J, Zeng F, Živanović B D, Shabala L, Zhou M & Shabala S (2013). Linking oxidative and salinity stress tolerance in barley: Can root antioxidant enzyme activity be used as a measure of stress tolerance? Plant and Soil 365: 141-155
  12. Eraslan F, Inal A, Savasturk O & Gunes A (2007). Changes in antioxidative system and membrane damage of lettuce in response to salinity and boron toxicity. Scientia Horticulturae 114: 5-10
  13. Eraslan F, Inal A, Pilbeam D J & Gunes A (2008). Interactive effects of salicylic acid