Dergiler / Osmaniye Korkut Ata Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü Dergisi / 2026 / Cilt: 9 Sayı: 3

hnRNPA1 PY-NLS Bölgesinde N267S Mutasyonunun Amiloid Fibril Stabilitesi ve Dinamikleri Üzerine Etkileri: Moleküler Dinamik Simülasyonlardan Bulgular

Effects of the N267S Mutation on Amyloid Fibril Stability and Dynamics in the hnRNPA1 PY-NLS Region: Insights from Molecular Dynamics Simulations

Hakan Alıcı(ZONGULDAK BÜLENT ECEVİT ÜNİVERSİTESİ)0000-0001-5105-8331
Sayfa
1550–1571
Yayın Tarihi
2026-06-16
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Bulgular, N267S mutasyonunun fibril yapısını global ölçekte daha kompakt ve başlangıç formuna yakın bir konformasyonda koruduğunu ortaya koymuştur.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:hnRNPA1 proteininin düşük komplekslik (LC) bölgesi, hem normal hücresel süreçlerde hem de nörodejeneratif hastalıkların patogenezinde kritik bir role sahiptir.
📊
Temel Bulgular & Veri:Bu bölge içerisinde yer alan PY-NLS motifi, nükleer taşınımda karyoforin-β2 ile yüksek afiniteli etkileşimler kurmasının yanı sıra amiloid fibril çekirdeğinin oluşumuna da katkı sağlamaktadır.
💡
Sonuç & Katkı:Bulgular, N267S mutasyonunun fibril yapısını global ölçekte daha kompakt ve başlangıç formuna yakın bir konformasyonda koruduğunu ortaya koymuştur.
🔬Tür:Uygulamalı Anket & Alan Araştırması
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:hnRNPA1 · PY-NLS · amiloid fibril

Özet

hnRNPA1 proteininin düşük komplekslik (LC) bölgesi, hem normal hücresel süreçlerde hem de nörodejeneratif hastalıkların patogenezinde kritik bir role sahiptir. Bu bölge içerisinde yer alan PY-NLS motifi, nükleer taşınımda karyoforin-β2 ile yüksek afiniteli etkileşimler kurmasının yanı sıra amiloid fibril çekirdeğinin oluşumuna da katkı sağlamaktadır. Bu çalışmada, PY-NLS dizisinin merkezinde bulunan N267 kalıntısındaki serin ikamesinin (N267S) fibril yapısının stabilitesi ve dinamikleri üzerindeki etkileri araştırılmıştır. Deneysel olarak çözümlenmiş fibril yapısı temel alınarak oluşturulan WT ve N267S modelleri, 500 ns süreli atomistik moleküler dinamik simülasyonlarına tabi tutulmuş ve sonuçlar RMSD, Rg, RMSF, inter- ve intra-protofilament mesafeler ile hidrojen bağı profilleri üzerinden değerlendirilmiştir. Bulgular, N267S mutasyonunun fibril yapısını global ölçekte daha kompakt ve başlangıç formuna yakın bir konformasyonda koruduğunu ortaya koymuştur. WT formunda zamanla artan genlikli dalgalanmalar ve coil-2 bölgesinde belirgin esneklik gözlenirken, N267S mutantı daha düşük genlikli hareketlerle rijit bir mimari sergilemiştir. N268–N268 fibriller arası arayüz mesafesi mutant formda WT’ye kıyasla daha dar aralıkta korunmuş, F263–F273 hattındaki aromatik π-π yığınlaşması ise her iki formda da kararlı biçimde sürdürülmüştür. Protofilament içi mesafe analizleri, WT’de yeniden hizalanma ve daralma eğilimlerini gösterirken, mutant formda bu değişimlerin sınırlı kaldığı tespit edilmiştir. Hidrojen bağı analizleri, özellikle protofilamentler arası bağların mutantta artış gösterdiğini ve arayüz stabilitesini güçlendirdiğini ortaya koymuştur. Tüm veriler bir arada değerlendirildiğinde, N267S mutasyonunun fibril yapısını daha sıkı paketlenmiş, daha stabil ve daha az esnek bir mimariye yönlendirdiği sonucuna varılmıştır. Bu bulgular, hnRNPA1 fibril oluşumunun moleküler düzeyde anlaşılmasına katkı sunmakta ve mutasyona bağlı nörodejeneratif süreçlerin aydınlatılmasında yeni ipuçları sağlamaktadır.

Abstract

The low-complexity (LC) domain of hnRNPA1 plays a critical role both in normal cellular processes and in the pathogenesis of neurodegenerative diseases. Within this region, the PY-NLS motif not only mediates high-affinity interactions with karyopherin-β2 during nuclear import but also contributes to amyloid fibril formation. In this study, we investigated the impact of a serine substitution at residue N267 (N267S) on the stability and dynamics of the hnRNPA1 fibril core. Wild-type (WT) and N267S models were subjected to 500-ns atomistic molecular dynamics simulations, and the results were analyzed using RMSD, Rg, RMSF, inter- and intra-protofilament distance measurements, and hydrogen bond profiles. The findings revealed that the N267S mutation maintains the fibril structure in a more compact and stable conformation, closer to its initial state. While WT fibrils exhibited larger amplitude fluctuations and increased flexibility in the coil-2 region, the N267S mutant displayed reduced mobility and a more rigid architecture. The N268–N268 inter-protofilament distance remained narrower in the mutant compared to WT, whereas the F263–F273 aromatic π-π stacking persisted robustly in both forms. Intra-protofilament distance analysis demonstrated compaction and rearrangements in WT fibrils, while the mutant maintained a more preserved geometry. Hydrogen bond analysis indicated that N267S increases inter-protofilament interactions, reinforcing the stability of the fibril interface. Collectively, these results suggest that the N267S mutation enhances fibril stability by restricting flexibility, tightening interfacial packing, and strengthening hydrogen bonding networks. This provides molecular-level insight into hnRNPA1 fibril formation and its potential contribution to mutation-driven neurodegenerative processes.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

Alıcı, H. (2026). hnRNPA1 PY-NLS Bölgesinde N267S Mutasyonunun Amiloid Fibril Stabilitesi ve Dinamikleri Üzerine Etkileri: Moleküler Dinamik Simülasyonlardan Bulgular. Osmaniye Korkut Ata Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü Dergisi, Cilt: 9 Sayı: 3, 1550–1571. https://doi.org/10.47495/okufbed.1786097

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (44)

  1. Abraham MJ., Murtola T., Schulz R., Páll S., Smith JC., Hess B., Lindahl E. GROMACS: high performance molecular simulations through multi-level parallelism from laptops to supercomputers. SoftwareX 2015; 1(2): 19-25.
  2. Alıcı H. In silico analysis: structural insights about inter-protofilaments interactions for α-synuclein (50–57) fibrils and its familial mutation. Molecular Simulation 2020; 46(12): 867-878.
  3. Alıcı H. Structural analyses and force fields comparison for NACore (68–78) and SubNACore (69–77) fibril segments of Parkinson’s disease. Journal of Molecular Modeling 2020; 26(6): 132.
  4. Alıcı H. Alpha-synuclein’ in PreNAC(46-56) fibril bölütünün moleküler dinamik simülasyon yöntemi ile konformasyonel değerlendirmesi. Kahramanmaraş Sütçü İmam Üniversitesi Tarım ve Doğa Dergisi 2021; 24(1): 11-21.
  5. Alıcı H. HnRNPA2’in LC(286-291) domain fibrili ve onun D290V mutasyonu hakkında teorik bir çalışma. Journal of the Institute of Science and Technology 2021; 11(2): 1080-1089.
  6. Alıcı H., Demir K. Investigation of the stability and the helix-tail interaction of sCT and its various charged mutants based on comparative molecular dynamics simulations. Chemical Physics 2021; 542: 111057.
  7. Alıcı H., Demir K. Parkinson hastalığı ile İlişkilendirilen PreNAC fibril kesiti ve onun A53C, A53E, A53G, A53T, A53V mutasyonlarının yapısal kararlılığın araştırılması. Süleyman Demirel University Faculty of Arts and Science Journal of Science 2021; 16(1): 66-76.
  8. Aranda-Garcia D., Torrens-Fontanals M., Medel-Lacruz B., Lopez-Balastegui M., Peralta-García A., Dieguez-Eceolaza M., Morales-Pastor A., Sotillo-Núñez D., Abbondandolo D., Stępniewski TM., Selent J. Simulating time-resolved dynamics of biomolecular systems. In: Elsevier, Oxford 2022.
  9. Bartolomé-Nafría A., García-Pardo J., Ventura S. Mutations in human prion-like domains: pathogenic but not always amyloidogenic. Prion 2024; 18(1): 28-39.
  10. Beijer D., Kim HJ., Guo L., O’Donovan K., Mademan I., Deconinck T., Van Schil K., Fare CM., Drake LE., Ford AF., Kochański A., Kabzińska D., Dubuisson N., Van den Bergh P., Voermans NC., Lemmers RJ., van der Maarel SM., Bonner D., Sampson JB., Wheeler MT., Mehrabyan A., Palmer S., De Jonghe P., Shorter J., Taylor JP., Baets J. Characterization of HNRNPA1 mutations defines diversity in pathogenic mechanisms and clinical presentation. JCI Insight 2021; 6(14): e148363.
  11. BIOVIA. (2025). Discovery Studio Visualizer (Version 2025) [Bilgisayar yazılımı]. Dassault Systèmes. https://www.3ds.com/products/biovia/discovery-studio/
  12. Brooks CL., MacKerell AD., Post CB., Nilsson L. Biomolecular dynamics in the 21st century. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - General Subjects 2024; 1868(2): 130534.
  13. Bruun GH., Doktor TK., Borch-Jensen J., Masuda A., Krainer AR., Ohno K., Andresen BS. Global identification of HNRNP A1 binding sites for SSO-based splicing modulation. BMC Biology 2016; 14(1): 54.
  14. Bussi G., Donadio D., Parrinello M. Canonical sampling through velocity rescaling. The Journal of Chemical Physics 2007; 126(1): 014101.
  15. Chompoopong P., Milone M., Niu Z., Cui G., Mer G., Liewluck T. A novel missense HNRNPA1 variant in the PY-NLS domain in a patient with late-onset distal myopathy. Neuromuscular Disorders 2022; 32(6): 521-526.
  16. Clarke JP., Thibault PA., Salapa HE., Levin MC. A comprehensive analysis of the role of HNRNP A1 function and dysfunction in the pathogenesis of neurodegenerative disease. Frontiers in Molecular Biosciences 2021; 8: 659610.
  17. Dang M., Li Y., Song J. Tethering-induced destabilization and ATP-binding for tandem RRM domains of ALS-causing TDP-43 and HNRNPA1. Scientific Reports 2021; 11(1): 1034.
  18. Darden T., York D., Pedersen L. Particle mesh Ewald: an N⋅log(N) method for Ewald sums in large systems. The Journal of Chemical Physics 1993; 98(12): 10089-10092.
  19. Faidon Brotzakis Z., Löhr T., Truong S., Hoff S., Bonomi M., Vendruscolo M. Determination of the structure and dynamics of the fuzzy coat of an amyloid fibril of IAPP using cryo-electron microscopy. Biochemistry 2023; 62(16): 2407-2416.
  20. Ferreon ACM., Quan MD., Liao SC., Tsoi P., Ferreon JC. Morphological evolution of HNRNPA1 pathological condensates. Biophysical Journal 2022; 121(3): 357a.
  21. Garcia-Pardo J., Ventura S. Cryo-EM structures of functional and pathological amyloid ribonucleoprotein assemblies. Trends in Biochemical Sciences 2024; 49(2): 119-133.
  22. Gonzalez A., Kim HJ., Freibaum BD., Fung HYJ., Brautigam CA., Taylor JP., Chook YM. A new Karyopherin-β2 binding PY-NLS epitope of HNRNPH2 linked to neurodevelopmental disorders. Structure 2023; 31(8): 924-934.e4.
  23. Gui X., Luo F., Li Y., Zhou H., Qin Z., Liu Z., Gu J., Xie M., Zhao K., Dai B., Shin WS., He J., He L., Jiang L., Zhao M., Sun B., Li X., Liu C., Li D. Structural basis for reversible amyloids of HNRNPA1 elucidates their role in stress granule assembly. Nature Communications 2019; 10(1): 2006.
  24. Huang J., Rauscher S., Nawrocki G., Ran T., Feig M., de Groot BL., Grubmüller H., MacKerell AD. Charmm36m: an improved force field for folded and intrinsically disordered proteins. Nature Methods 2017; 14(1): 71-73.
  25. Humphrey W., Dalke A., Schulten K. VMD: visual molecular dynamics. Journal of Molecular Graphics 1996; 14(1): 33-38.
  26. Jang H., Arce FT., Ramachandran S., Capone R., Azimova R., Kagan BL., Nussinov R., Lal R. Truncated beta-amyloid peptide channels provide an alternative mechanism for Alzheimer’s disease and Down syndrome. Proceedings of the National Academy of Sciences USA 2010; 107(14): 6538-6543.
  27. Jean-Philippe J., Paz S., Caputi M. HNRNP A1: the Swiss Army knife of gene expression. International Journal of Molecular Sciences 2013; 14(9): 18999-19024.
  28. Jorgensen WL., Chandrasekhar J., Madura JD., Impey RW., Klein ML. Comparison of simple potential functions for simulating liquid water. The Journal of Chemical Physics 1983; 79(2): 926-935.
  29. Li Q., Babinchak WM., Surewicz WK. Cryo-EM structure of amyloid fibrils formed by the entire low complexity domain of TDP-43. Nature Communications 2021; 12(1): 1620.
  30. Liu C., Zhao M., Jiang L., Cheng P-N., Park J., Sawaya MR., Pensalfini A., Gou D., Berk AJ., Glabe CG., Nowick J., Eisenberg D. Out-of-register β-sheets suggest a pathway to toxic amyloid aggregates. Proceedings of the National Academy of Sciences USA 2012; 109(51): 20913-20918.
  31. Lu J., Cao Q., Hughes MP., Sawaya MR., Boyer DR., Cascio D., Eisenberg DS. CryoEM structure of the low-complexity domain of HnRNPA2 and its conversion to pathogenic amyloid. Nature Communications 2020; 11(1): 4090.
  32. Martin EW., Thomasen FE., Milkovic NM., Cuneo MJ., Grace Christy R., Nourse A., Lindorff-Larsen K., Mittag T. Interplay of folded domains and the disordered low-complexity domain in mediating HNRNPA1 phase separation. Nucleic Acids Research 2021; 49(5): 2931-2945.
  33. Matsuura Y. Defective recognition of a nonclassical nuclear localization signal in neurodevelopmental disorders. Structure 2023; 31(8): 891-892.
  34. Molliex A., Temirov J., Lee J., Coughlin M., Kanagaraj AP., Kim HJ., Mittag T., Taylor JP. Phase separation by low complexity domains promotes stress granule assembly and drives pathological fibrillization. Cell 2015; 163(1): 123-133.
  35. Parrinello M., Rahman A. Polymorphic transitions in single crystals: a new molecular dynamics method. Journal of Applied Physics 1981; 52(12): 7182-7190.
  36. Sharma K., Stockert F., Shenoy J., Berbon M., Abdul-Shukkoor MB., Habenstein B., Loquet A., Schmidt M., Fändrich M. Cryo-EM observation of the amyloid key structure of polymorphic TDP-43 amyloid fibrils. Nature Communications 2024; 15(1): 486.
  37. Straub JE., Thirumalai D. Toward a molecular theory of early and late events in monomer to amyloid fibril formation. Annual Review of Physical Chemistry 2011; 62: 437-463.
  38. Sun Y., Zhao K., Xia W., Feng G., Gu J., Ma Y., Gui X., Zhang X., Fang Y., Sun B., Wang R., Liu C., Li D. The nuclear localization sequence mediates HNRNPA1 amyloid fibril formation revealed by cryo-EM structure. Nature Communications 2020; 11(1): 6349.
  39. Tarus B., Straub JE., Thirumalai D. Dynamics of Asp23−Lys28 salt-bridge formation in aβ10-35 monomers. Journal of the American Chemical Society 2006; 128(50): 16159-16168.
  40. Topuz Ş., Demir K., Alıcı H. Unraveling the dynamic landscape of α-glucosidase: a molecular dynamics approach to enzyme stability and function. South African Journal of Chemistry 2025; 79(1): 107-116.
  41. Vitalis A., Pappu RV. Assessing the contribution of heterogeneous distributions of oligomers to aggregation mechanisms of polyglutamine peptides. Biophysical Chemistry 2011; 159(1): 14-23.
  42. Wang LQ., Ma Y., Yuan HY., Zhao K., Zhang MY., Wang Q., Huang X., Xu WC., Dai B., Chen J., Li D., Zhang D., Wang Z., Zou L., Yin P., Liu C., Liang Y. Cryo-EM structure of an amyloid fibril formed by full-length human SOD1 reveals its conformational conversion. Nature Communications 2022; 13(1): 3491.
  43. Wang LQ., Zhao K., Yuan HY., Wang Q., Guan Z., Tao J., Li XN., Sun Y., Yi CW., Chen J., Li D., Zhang D., Yin P., Liu C., Liang Y. Cryo-EM structure of an amyloid fibril formed by full-length human prion protein. Nature Structural & Molecular Biology 2020; 27(6): 598-602.
  44. Zheng L., Alhossary AA., Kwoh CK., Mu Y. Molecular dynamics and simulation. In: Academic Press, Oxford 2019.