KaydedilenlerDerginizi ekleyin

Dergiler / Fırat Üniversitesi Fen Bilimleri Dergisi / 2018 / Cilt: 30 Sayı: 2

Chlamydomonas Suşlarının Farklı Kültür Besi Ortamları ve Doğal Mineralli Su Kullanılarak Biyomas ve Üreme Oranlarının Artırılması

Dilek Yalçın Duygu
Tülay Özer
Sayfa
63–71
Yayın Tarihi
2018-09-19
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Bu çalışmada; mikroalg kültürlerinin üremeleri üzerine farklı besi ortamlarının etkileri ve farklı suşların üreme kabiliyetleri gözlemlenmiştir.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Bu çalışmada; mikroalg kültürlerinin üremeleri üzerine farklı besi ortamlarının etkileri ve farklı suşların üreme kabiliyetleri gözlemlenmiştir.
📊
Temel Bulgular & Veri:İzole edilen bu suşlar laboratuvar şartlarında, BG 11 ve Allen besi ortamları ile, doğal mineralli su kullanılarak üretilmiştir.
💡
Sonuç & Katkı:Chlamydomonas sp.2 (CCA02Chl02) suşunun BG 11 besi ortamındaki hücre yoğunluğu (6,0x10 6 hücre/mL), klorofil-a miktarı (6,343 µgL -1 ), kuru ağırlığı (0,5425 g/mL) ve 685 nm’de optikal yoğunluğu (0,7986 d -1 ) olarak bulunmuştur. 
🔬Tür:Laboratuvar & Saha Deneyi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Chlamydomonas · Mikroalg · Hücre Yoğunluğu

Özet

Bu çalışmada; mikroalg kültürlerinin üremeleri üzerine farklı besi ortamlarının etkileri ve farklı suşların üreme kabiliyetleri gözlemlenmiştir. Chlamydomonas fotosentetik, tek hücreli, ökaryotik yeşil algdir. Genetik, biyokimyasal ve fotosentez çalışmalarında hızlı büyümesi, kısa üreme döngüsüne sahip olması ve düşük maliyetli kültürünün yapılabilmesi nedeniyle cazip bir çalışma materyalidir. Çalışmamızda tatlı su birikintilerinden toplanan örneklerden Chlamydomonas cinsine ait iki suş izole edilmiştir. İzole edilen bu suşlar laboratuvar şartlarında, BG 11 ve Allen besi ortamları ile, doğal mineralli su kullanılarak üretilmiştir. Farklı besi ortamlarının Chlamydomonas ’ın üreme dinamikleri üzerindeki etkileri hücre yoğunluğu, klorofil- a , kuru ağırlık ve optik yoğunluk tayinleri ile yapılmıştır. Chlamydomonas sp.1 (CCA02Chl01) suşu en iyi gelişmeyi Allen besi ortamında göstermiştir. Chlamydomonas sp.1 (CCA02Chl01) suşunun Allen besi ortamındaki hücre yoğunluğu (3,95x10 6 hücre/mL), klorofil-a miktarı (3,166 µgL -1 ), kuru ağırlık (0,5347 g/mL) ve 685 nm’de optikal yoğunluk (0,5115 d -1 ) olarak en yüksek bulunmuştur. Chlamydomonas sp.2 (CCA02Chl02) suşunun en iyi gelişmesi ise BG 11 besi ortamında olmuştur. Chlamydomonas sp.2 (CCA02Chl02) suşunun BG 11 besi ortamındaki hücre yoğunluğu (6,0x10 6 hücre/mL), klorofil-a miktarı (6,343 µgL -1 ), kuru ağırlığı (0,5425 g/mL) ve 685 nm’de optikal yoğunluğu (0,7986 d -1 ) olarak bulunmuştur. 

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

Duygu, D. Y., Özer, T. (2018). Chlamydomonas Suşlarının Farklı Kültür Besi Ortamları ve Doğal Mineralli Su Kullanılarak Biyomas ve Üreme Oranlarının Artırılması. Fırat Üniversitesi Fen Bilimleri Dergisi, Cilt: 30 Sayı: 2, 63–71. https://ajindex.com/articles/1484054

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (35)

  1. Lewis, M.A. (1995). Use of freshwater plants for phytotoxicity testing: a review. Environmental Pollution, 87: 319-336
  2. Fuentes-Grünewald, C., Alacid, E., Garcés, E., Rossi, S. and Camp, J. (2012). Biomass and lipid production of dinoflagellates and raphidophytes in indoor and outdoor photobioreactors. Marine Biotechnology, 15: 37-47
  3. Santhosh, S., Dhandapani, R. and Hemalatha, N. (2016). A Review on potential biotechnological applications of microalgae. Journal of Applied Pharmaceutical Science, 6: 179-184
  4. Chuntapa, D., Powtongsook, S. and Menasveta, P. (2003). Water quality control using Spirulina platensis in shrimp culture tanks. Aquaculture, 220: 355-366
  5. Brown, M. and Robert, R. (2002). Preparation and assessment of microalgal concentrates as feeds for larval and juvenile pacific oyster (Crassostrea gigas). Aquaculture, 207: 289-309
  6. Stephens, E., Ross, I.L., Mussgnug, J.H., Wagner, L.D, Borowitzka, M.A., Posten, C., Kruse, O. and Hankamer, B. (2010). Future prospects of microalgal biofuel production systems. Trends Plant Science, 15: 554-564
  7. Gross, C.H., Ranum, L.P.W. and Lefebvre, P.A. (1988). Extensive restriction fragment length polymorphisms in a new isolate of Chlamydomonas reinhardtii. Current Genetics, 13:503-508
  8. Scholz, M., Hoshino, T., Johnson, D., Riley, M.R. and Cuello, J. (2011). Flocculation of wall-deficient cells of Chlamydomonas reinhardtii mutant cw15 by calcium and methanol. Biomass and Bioenergy, 35: 4835-4840. doi: 10.1016/j.biombioe.2011.08.020
  9. Duong, V.T., Li, Y., Nowak, E. and Schenk, P.M. (2012). Microalgae isolation and selection for prospective biodiesel production. Energies, 5: 1835-1849. doi:10.3390/en50618 35
  10. Tamburic, B., Zemichael, F.W., Maitland, G.C. and Hellgardt, K. (2012). Effect of the light regime and phototrophic conditions on growth of the H2-producing green alga Chlamydomonas reinhardtii. Energy Procedia, 29: 710-719. doi: 10.1016/j. egypro.2012.09.083
  11. Merchant, S., Prochnik, S., Vallon, O., Harris, E., Karpowicz, S., Witman, G., Terry, A., Salamov, A., Fritz-Laylin, L. and Marechal-Drouard, L. (2007). The Chlamydomonas genome reveals the evolution of key animal and plant functions. Science, 318: 245-250
  12. Bhamawat, P.M. (2010). Growth of Chlamydomonas reinhardtii under nutrient-limited conditions in steady-state bioreactors. Master of Science Thesis. Faculty of the Graduate School of Cornell University, p: 1-83
  13. Meslet-Cladiere, L., and Vallon, O. (2011). Novel shuttle markers for nuclear transformation of the green alga Chlamydomonas reinhardtii. Eukaryot Cell, 10: 1670-1678
  14. Duygu Yalçın, D., Erkaya Açıkgöz, İ. and Özer, T. (2018). Investigating the effect of different gorwth media on biomass production of Pseudopediastrum boryanum (Turpin) E. Hegewald isolates. Journal of Limnology and Freshwater Fisheries Research, 4: 6-12
  15. Parvin, M., Zannat, M.N. and Habib, M.A.B. (2007). Two important technique for isolation of microalgae. Asian Fisheries Science. 20: 117-124
  16. Guillard, R.R.L., Sierachiki, M.S. (2005). Counting cells in cultures with the light microscope. Pp. 239-252. In: Andersen, R.A. (eds) Algal Culturing Techniques. Elsevier Academic Press, London, 589 pp
  17. Hipkins, M.F. and Baker, N.R. (1986). Photosynthesis: Energy Transduction: A Practical Approach. Oxford University Press, London, 212 pp
  18. Chia, M.A., Lombardi, A.T. and Melao, M.G.G. (2013). Growth and biochemical composition of Chlorella vulgaris in different growth media. Annals of the Brazilian Academy of Sciences 85: 1427-38. doi: 10.1590/0001-3765201393312
  19. Santos-Ballardo, D.U., Víctor Hernández, S.R., Gómez R.V., Rendón-Unceta, M.C., Corrales, J.C. and Valdez-Ortiz, A. (2015). A simple spectrophotometric method for biomass measurement of important microalgae species in aquaculture. Aquaculture, 448: 87-92
  20. Ribeiro-Rodrigues, L.H., Arenzon, A., Raya-Rodriguez, M.T. & Fontoura, N.F. (2011). Algal density assessed by spectrophotometry: a calibration curve for the unicellular algae Pseudokirchneriella subcapitata. Journal of Environmental Chemistry and Ecotoxicology, 3: 225-228
  21. Godoy-Hernández, G. and Vázquez-Flota, F.A. (2006). Growth measurements: estimation of cell division and cell expansion. Pp. 51-58. In: Loyola-Vargas, V.M. & Vázquez-Flota, F. (eds) Methods in Molecular Biology. Humana Press Inc., New Jersey, 318 pp
  22. Lemaire, S., Collin, V., Keryer, E., Issakidis-Bourguet, E., Lavergne, D., and Miginiac-Maslow, M. (2003). Chlamydomonas reinhardtii: a model organism for the study of the thioredoxin family. Plant Physiology and Biochemistry, 41: 513-521
  23. Mayfield, S., Manuell, A., Chen, S., Wu, J., Tran, M., Siefker, D., Muto, M., & Marin-Navarro, J. (2007). Chlamydomonas reinhardtii chloroplasts as protein factories. Current Opinion in Biotechnology, 18: 126-133. doi:10.1016/j.copbio.2007.02.001
  24. Michelle, A., Everroad, R.C. and Wingard, L.M. (2005). Measuring Growth Rates in Microalgal Cultures. Pp. 269-287. In: Andersen, R.A. (eds). Algal Culturing Techniques. Elsevier Academic Press, London, 589 pp
  25. Ammar, S.H. (2016). Cultivation of microalgae Chlorella vulgaris in airlift photobioreactor for biomass production using commercial NPK nutrients. Al-Khwarizmi Engineering Journal, 12: 90- 99
  26. Deng, X., Zhou, Y., Li, Y. and Fei, X. (2012). Optimization of the culture conditions of a Chlamydomonas high oil content ultraviolet mutant CC124-M25 and polymorphism analysis by inter-simple sequence repeat (ISSR). African Journal of Microbiology Research, 6: 3604-3619
  27. Blair, M.F., Kokabian, B. and Gude, V.G. (2013). Light and growth medium effect on Chlorella vulgaris biomass production. Journal of Environmental Chemical Engineering, 2: 665-674. doi:10.1016/j. jece.2013.11.005 28. Taghavi, N. and Robinson, G. (2016). Improving the optimum yield and growth of Chlamydomonas reinhardtii CC125 and CW15 using various carbon sources and growth regimes. African Journal of Biotechnology, 15: 1083-1100
  28. Kropat, J., Hong-Hermesdorf, A., Casero, D., Ent, P., Castruita, M., Pellegrini, M., Merchant, S.S. and Malasarn, D. (2011). A revised mineral nutrient supplement increases biomass and growth rate in Chlamydomonas reinhardtii. The Plant Journal, 66: 770-780
  29. Chen, F., and Johns, M. (1996). Relationship between substrate inhibition and maintenance energy of Chlamydomonas reinhardtii in heterotrophic culture. Journal of Applied Phycology, 8: 15-19
  30. Therien, J.B., Zadvornyy, O.A., Posewitz, M.C., Bryant, D.A. and Peters, J.W. (2014). Growth of Chlamydomonas reinhardtii in acetate-free medium when co-cultured with alginate-encapsulated, acetate-producing strains of Synechoccus sp. PCC 7002. Biotechnology for Biofuels, 7: 1-8. doi: 10.1186/s13068-014-0154-2
  31. Wu, Y., Li, P. and Zhao, X. (2007). Effect of fluoride on carbonic anhydrase activity and photosynthetic oxygen evolution of the algae Chlamydomonas reinhardtii. Fluoride, 40: 51-54
  32. Al-Shatri, A.H.A., Ali, E., Al-Shorgani, N.K.N. and Kalil, M.S. (2014). Growth of Scenedesmus dimorphus in different algal media and pH profile due to secreted metabolites. African Journal of Biotechnology, 13:1714-1720. doi:10. 5897/AJB2013.13455
  33. Nehul, J.N. (2014). Influence of various culture media on growth and production of carotenoids in a cyanobacterium Lyngbya bipunctata Lemm. Bioscience Discovery, 5:60-63
  34. Havlik, I., Lindner, P., Scheper, T. and Reardon, K.F. (2013). On-line monitoring of large cultivations of microalgae and cyanobacteria. Trends Biotechnology, 31: 406-414
  35. Fischer, B.B., Wiesendanger, M. & Eggen, R.I.L. (2006). Growth condition-dependent sensitivity, photodamage and strees response of Chlamydomonas reinhardtii exposed to high light conditions. Plant and Cell Phsiology, 47: 1135-1145.