KaydedilenlerDerginizi ekleyin

Dergiler / Balıkesir Sağlık Bilimleri Dergisi / 2026 / Volume: 15 Issue: 1

Sağlıklı Evcil Güvercinlerde (Columba livia) Farklı TonoVet® Plus Modlarının Göz İçi Basıncı Ölçümlerine Etkilerinin Karşılaştırılması

Comparison of the Effects of Different TonoVet® Plus Modes on Intraocular Pressure Measurements in Healthy Domestic Pigeons (Columba livia)

Eyüp Tolga Akyol(BALIKESİR ÜNİVERSİTESİ)0000-0002-9775-7557
Büşra Aslan Akyol(BALIKESİR ÜNİVERSİTESİ)0000-0002-4123-8408
Muharrem Erol(BALIKESİR ÜNİVERSİTESİ)0000-0003-0780-9067
Sayfa
—
Yayın Tarihi
2026-02-28
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Bulgular: Ölçüm modunun GİB üzerinde istatistiksel olarak anlamlı bir etkisi vardı (p 0,88), Kedi modu en yüksek (ICC = 0,931) ve Tavşan modu en düşük (ICC = 0,882) değere sahipti.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Amaç: Bu çalışma, TonoVet® Plus rebound tonometresinin dört farklı modu (Kedi, Köpek, At ve Tavşan) kullanılarak sağlıklı, bilinçli evcil güvercinlerde elde edilen Göz İçi Basıncı'nı (GİB) sistematik olarak karşılaştırmayı ve her modun mod içi ölçüm güvenilirliğini belirlemeyi amaçlamaktadır.
📊
Temel Bulgular & Veri:Gereç ve Yöntem: Çalışmaya 35 sağlıklı güvercinin 70 gözü dahil edildi.
💡
Sonuç & Katkı:Bulgular: Ölçüm modunun GİB üzerinde istatistiksel olarak anlamlı bir etkisi vardı (p 0,88), Kedi modu en yüksek (ICC = 0,931) ve Tavşan modu en düşük (ICC = 0,882) değere sahipti.
🔬Tür:Literatür & Derleme Çalışması
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Avian · Columba livia · Glaucoma

Özet

Amaç: Bu çalışma, TonoVet® Plus rebound tonometresinin dört farklı modu (Kedi, Köpek, At ve Tavşan) kullanılarak sağlıklı, bilinçli evcil güvercinlerde elde edilen Göz İçi Basıncı'nı (GİB) sistematik olarak karşılaştırmayı ve her modun mod içi ölçüm güvenilirliğini belirlemeyi amaçlamaktadır. Gereç ve Yöntem: Çalışmaya 35 sağlıklı güvercinin 70 gözü dahil edildi. GİB ölçümleri, anestezi uygulanmadan, TonoVet® Plus cihazının dört modu kullanılarak, rastgele bir sırayla, bilinçli hayvanlarda gerçekleştirildi. Bulgular: Ölçüm modunun GİB üzerinde istatistiksel olarak anlamlı bir etkisi vardı (p 0,88), Kedi modu en yüksek (ICC = 0,931) ve Tavşan modu en düşük (ICC = 0,882) değere sahipti. Literatürdeki kalibre edilmiş referans değerleriyle karşılaştırıldığında, Tavşan modu referans aralığının alt sınırına en yakın sonucu verirken, en güvenilir Kedi modu GİB'yi önemli ölçüde düşük tahmin etmiştir. Sonuç: TonoVet® Plus'taki mevcut modların hiçbiri güvercinler için ideal değildir ve mod seçimi sonuçları önemli ölçüde etkilemektedir. En yüksek güvenilirliğe sahip Kedi modu, GİB değişikliklerini izlemek için tercih edilebilirken, en yüksek görünür doğruluğa sahip Tavşan modu, referans aralığı ile tarama yapmak için tercih edilebilir. Ancak, her iki durumda da sonuçlar modun sınırları dahilinde dikkatle yorumlanmalıdır. TonoVet® Plus'ın güvercinler için doğrudan manometrik kalibrasyonu ve türe özgü bir modun geliştirilmesi gerekmektedir.

Abstract

Objective: The aim of this study was to systematically evaluate Intraocular pressure (IOP) measurements in healthy, conscious domestic pigeons using the four available animal modes on the TonoVet® Plus device. Materials and Methods: Seventy eyes of 35 healthy pigeons were included in the study. IOP measurements were performed in conscious animals, without anesthesia, using the four modes of the TonoVet® Plus device in a randomized order Results: Measurement mode had a statistically significant effect on IOP (p 0.88), with the Cat mode having the highest (ICC=0.931) and the Rabbit mode the lowest (ICC=0.882). Compared to the calibrated reference value in the literature, the Rabbit mode provided the result closest to the lower limit of the reference range, while the most reliable Cat mode significantly underestimated IOP. Conclusion: None of the available modes in TonoVet® Plus are ideal for pigeons, and mode selection significantly influences the results. The Cat mode, with its highest reliability, is preferred for monitoring IOP changes, while the Rabbit mode, with its highest apparent accuracy, is preferred for scanning against the reference range. However, in both cases, results should be interpreted cautiously within the limitations of the mode. Direct manometric calibration of TonoVet® Plus for pigeons and the development of a species-specific mode are needed.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

Akyol, E. T., Akyol, B. A., Erol, M. (2026). Sağlıklı Evcil Güvercinlerde (Columba livia) Farklı TonoVet® Plus Modlarının Göz İçi Basıncı Ölçümlerine Etkilerinin Karşılaştırılması. Balıkesir Sağlık Bilimleri Dergisi, Volume: 15 Issue: 1. https://doi.org/10.53424/balikesirsbd.1809997

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (18)

  1. Ansari Mood, M., Rajaei, S. M., Hashemi, S. S. G., & Williams, D. L. (2016). Measurement of intraocular pressure in the domestic pigeon ( Columbia livia ). Journal of Zoo and Wildlife Medicine, 47(3), 935-938. https://doi.org/10.1638/2015-0102.1.
  2. Barbosa, S. F., Raposo, A. C. S., Dórea Neto, F. A., Araujo, N. L. L. C., Oliveira, M. M. S., & Oriá, A. P. (2022). TonoVet Plus®: Higher reliability and repeatability compared with Tono‐Pen XL™ and TonoVet® in rabbits. Veterinary Ophthalmology, 25(4), 272-281. https://doi.org/10.1111/vop.12981.
  3. Baudouin, C., & Gastaud, P. (1994). Influence of topical anesthesia on tonometric values of intraocular pressure. Ophthalmologica, 208(6), 309–313. https://doi.org/10.1159/000310527.
  4. Chan-Ling, T., Efron, N., & Holden, B. A. (1985). Diurnal variation of corneal thickness in the cat. Investigative ophthalmology & visual science, 26(1), 102–105.
  5. Chard, R.D., Gundlach, R.H. (1938). The structure of the eye of the homing pigeon. Journal of Comparative Psychology. 25, 249–272. https://doi.org/10.1037/h0061438
  6. Gloe, S., Rothering, A., Kiland, J. A., & McLellan, G. J. (2019). Validation of the Icare® TONOVET plus rebound tonometer in normal rabbit eyes. Experimental Eye Research, 185, 107698. https://doi.org/10.1016/j.exer.2019.107698.
  7. Herbig, L. E., & Eule, J. C. (2015). Central corneal thickness measurements and ultrasonographic study of the growing equine eye. Veterinary ophthalmology, 18(6), 462–471. https://doi.org/10.1111/vop.12252
  8. Jorge, J. M. M., González-Méijome, J. M., Queirós, A., Fernandes, P., & Parafita, M. A. (2008). Correlations between corneal biomechanical properties measured with the ocular response analyzer and ICare rebound tonometry. Journal of Glaucoma, 17(6), 442–448. https://doi.org/10.1097/IJG.0b013e31815f52b8.
  9. Karimi, V., Asadi, F., Rajaei, S. M., & Golabdar, S. (2020). Intraocular pressure measurements using rebound tonometry in eight different species of companion birds. Journal of Avian Medicine and Surgery, 34(4), 338-342. https://doi.org/10.1647/1082-6742-34.4.338.
  10. Kovalcuka, L., Mālniece, A., & Vanaga, J. (2024). Comparison of Tonovet® and Tonovet plus® tonometers for measuring intraocular pressure in dogs, cats, horses, cattle, and sheep. Veterinary World, 17(2), 384–388. https://doi.org/10.14202/vetworld.2024.384-388.
  11. Lim, J., Kang, S., Park, S., Park, E., Nam, T., Jeong, S., & Seo, K. (2019). Intraocular pressure measurement by rebound tonometry (TonoVet) in normal pigeons (Columba livia). Journal of Avian Medicine and Surgery, 33(1), 46-52. https://doi.org/10.1647/2017-329.
  12. Nakakura, S. (2018). Icare® rebound tonometers: Review of their characteristics and ease of use. Clinical Ophthalmology, Volume 12, 1245–1253. https://doi.org/10.2147/OPTH.S163092.
  13. Park, S., Kang, S., Lim, J., Park, E., Nam, T., Jeong, S., & Seo, K. (2017). Ultrasound biomicroscopy and tonometry in ophthalmologically normal pigeon eyes. Veterinary Ophthalmology, 20(5), 468–471. https://doi.org/10.1111/vop.12450.
  14. Reuter, A., Müller, K., Arndt, G., & Eule, J. C. (2011). Reference intervals for intraocular pressure measured by rebound tonometry in ten raptor species and factors affecting the intraocular pressure. Journal of Avian Medicine and Surgery, 25(3), 165–172. https://doi.org/10.1647/2009-056.1.
  15. Underwood, H., Steele, C. T., & Zivkovic, B. (2001). Circadian organization and the role of the pineal in birds. Microscopy Research and Technique, 53(1), 48–62. https://doi.org/10.1002/jemt.1068.
  16. Wang, X., & Wu, Q. (2013). Normal corneal thickness measurements in pigmented rabbits using spectral‐domain anterior segment optical coherence tomography. Veterinary Ophthalmology, 16(2), 130-134. https://doi.org/10.1111/j.1463-5224.2012.01041.x
  17. Wolfel, A. E., Pederson, S. L., Cleymaet, A. M., Hess, A. M., & Freeman, K. S. (2018). Canine central corneal thickness measurements via Pentacam‐HR®, optical coherence tomography (Optovue iVue®), and high‐resolution ultrasound biomicroscopy. Veterinary Ophthalmology, 21(4), 362–370. https://doi.org/10.1111/vop.12518
  18. Yönez, M. K., Erol, M., Erol, H., Atalan, G., Doğan, Z., & Kibar, M. (2022). Intraocular pressure measured by rebound tonometry in seven raptor species. Journal of the Hellenic Veterinary Medical Society, 73(2), 3929–3934. https://doi.org/10.12681/jhvms.21914.