KaydedilenlerDerginizi ekleyin

Dergiler / Çukurova Anestezi ve Cerrahi Bilimler Dergisi / 2026 / Cilt: 9 Sayı: 2

Takrolimusun Karın İçi Yapışıklıkların Önlenmesindeki Rolü

Role of Tacrolimus in Preventing Intra-Abdominal Adhesions

Sefa Özyazıcı(ADANA ŞEHİR HASTANESİ, GENEL CERRAHİ BÖLÜMÜ)0000-0002-1320-0269
Mazhar Semih Baskan(OKAN UNIVERSITY, SCHOOL OF MEDICINE)0000-0002-3848-7745
Yusuf Sevim(Kayseri Training and Research Hospital)0000-0002-2708-1598
Akın Fırat Kocaay(ANKARA UNIVERSITY, ANKARA FACULTY OF MEDICINE)0000-0002-6985-910X
Cihangir Akyol(ANKARA UNIVERSITY, ANKARA FACULTY OF MEDICINE)0000-0002-3941-5268
Mevlut Selçuk Hazinedaroglu(ANKARA UNIVERSITY, ANKARA FACULTY OF MEDICINE)0000-0002-8869-9172
Sayfa
462–468
Yayın Tarihi
2026-06-30
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Bulgular: Yapışıklık dereceleri takrolimus uygulanan gruplarda anlamlı derecede daha düşüktü.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Özet Amaç: Bu çalışma, takrolimusun intraperitoneal yapışıklıklara karşı önleyici etkilerinin olup olmadığını belirlemeyi amaçlamıştır.
📊
Temel Bulgular & Veri:Metot: Bu çalışmada 8-10 haftalık 34 erkek Wistar Albino sıçan kullanılmıştır.
💡
Sonuç & Katkı:Bulgular: Yapışıklık dereceleri takrolimus uygulanan gruplarda anlamlı derecede daha düşüktü.
🔬Tür:Uygulamalı Anket & Alan Araştırması
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Takrolimus · intraperitoneal yapışıklık · yara iyileşmesi

Özet

Özet Amaç: Bu çalışma, takrolimusun intraperitoneal yapışıklıklara karşı önleyici etkilerinin olup olmadığını belirlemeyi amaçlamıştır. Metot: Bu çalışmada 8-10 haftalık 34 erkek Wistar Albino sıçan kullanılmıştır. Sıçanlar 3 gruba randomize edilmiştir; kontrol grubu, karın yıkama grubu ve sistemik uygulama grubu. Karın yapışıklıklarının özellikleri makroskopik olarak değerlendirilmiş ve sıçanlardaki yapışıklık derecesi Nair ve Knightly yapışıklık derecelendirme ölçekleri kullanılarak derecelendirilmiştir. Bulgular: Yapışıklık dereceleri takrolimus uygulanan gruplarda anlamlı derecede daha düşüktü. Bununla birlikte, takrolimus uygulama yolu yapışıklık oluşumunun azalmasını etkilememiştir. Sonuç: Takrolimusun, yara iyileşme süreçlerini önemli ölçüde etkilemeden, karın içi yapışıklık oluşumunu potansiyel olarak azalttığı gözlemlenmiştir. Anahtar kelimeler: Takrolimus; intraperitoneal yapışıklık; yara iyileşmesi; ratlar.

Abstract

Aim: The study aimed to identify whether tacrolimus has preventive effects on intraperitoneal adhesions. Methods: Thirty-four 8–10-week-old male Wistar Albino rats were used. They were randomized into 3 groups; control group, abdominal lavage group, and systemic administration group. The features of abdominal adhesions were evaluated macroscopically, and the degree of adhesion within rats was graded by using Nair and Knightly adhesion grading scales. Results: Adhesion grades were significantly lower in tacrolimus administered groups. However, route of tacrolimus administration did not affect the reduction of adhesion formation. Conclusion: Tacrolimus has been observed to potentially mitigate the incidence of intraperitoneal adhesion formation without significantly compromising wound healing processes. Key words: Tacrolimus; intraperitoneal adhesion; wound healing; rats.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

Özyazıcı, S., Baskan, M. S., Sevim, Y., Kocaay, A. F., Akyol, C., Hazinedaroglu, M. S. (2026). Takrolimusun Karın İçi Yapışıklıkların Önlenmesindeki Rolü. Çukurova Anestezi ve Cerrahi Bilimler Dergisi, Cilt: 9 Sayı: 2, 462–468. https://doi.org/10.36516/jocass.1889751

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (28)

  1. Fatehi Hassanabad A, Zarzycki AN, Jeon K, et al. Post-Operative Adhesions: A Comprehensive Review of Mechanisms. Biomedicines. 2021;9(8):867. https://doi.org/10.3390/biomedicines9080867
  2. Howard FM. The role of laparoscopy in the chronic pelvic pain patient. Clin Obstet Gynecol. 2003;46(4):749-766. https://doi.org/10.1097/00003081-200312000-00004
  3. D'Cruz OJ, Uckun FM. Targeting mast cells in endometriosis with janus kinase 3 inhibitor, JANEX-1. Am J Reprod Immunol. 2007;58(2):75-97. https://doi.org/10.1111/j.1600-0897.2007.00502.x
  4. Becker JM, Stucchi AF. Intra-abdominal adhesion prevention: are we getting any closer?. Ann Surg. 2004;240(2):202-204. https://doi.org/10.1097/01.sla.0000133118.38686.d0
  5. Kamel RM. Prevention of postoperative peritoneal adhesions. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 2010;150(2):111-118. https://doi.org/10.1016/j.ejogrb.2010.02.003
  6. Lim R, Stucchi AF, Morrill JM, et al. The efficacy of a hyaluronate-carboxymethylcellulose bioresorbable membrane that reduces postoperative adhesions is increased by the intra-operative co-administration of a neurokinin 1 receptor antagonist in a rat model. Surgery. 2010;148(5):991-999. https://doi.org/10.1016/j.surg.2010.01.024
  7. Peker K, Inal A, Sayar I, et al. Prevention of intraabdominal adhesions by local and systemic administration of immunosuppressive drugs. Iran Red Crescent Med J. 2013;15(12):e14148. https://doi.org/10.5812/ircmj.14148
  8. Nair SK, Bhat IK, Aurora AL. Role of proteolytic enzyme in the prevention of postoperative intraperitoneal adhesions. Arch Surg. 1974;108(6):849-853. https://doi.org/10.1001/archsurg.1974.01350300081019
  9. Knightly JJ, Agostino D, Cliffton EE. The effect of fibrinolysin and heparin on the formation of peritoneal adhesions. Surgery. 1962;52:250-258.
  10. Kaptanoglu L, Kucuk HF, Yegenoglu A, et al. Effects of seprafilm and heparin in combination on intra-abdominal adhesions. Eur Surg Res. 2008;41(2):203-207. https://doi.org/10.1159/000134919
  11. Kesting MR, Loeffelbein DJ, Steinstraesser L, et al. Cryopreserved human amniotic membrane for soft tissue repair in rats. Ann Plast Surg. 2008;60(6):684-691. https://doi.org/10.1097/SAP.0b013e31814fb9d2
  12. Hellebrekers BW, Trimbos-Kemper GC, van Blitterswijk CA, et al. Effects of five different barrier materials on postsurgical adhesion formation in the rat. Hum Reprod. 2000;15(6):1358-1363. https://doi.org/10.1093/humrep/15.6.1358
  13. Saed GM, Munkarah AR, Diamond MP. Cyclooxygenase-2 is expressed in human fibroblasts isolated from intraperitoneal adhesions but not from normal peritoneal tissues. Fertil Steril. 2003;79(6):1404-1408. https://doi.org/10.1016/S0015-0282(03)00257-7
  14. Guvenal T, Cetin A, Ozdemir H, et al. Prevention of postoperative adhesion formation in rat uterine horn model by nimesulide: a selective COX-2 inhibitor. Hum Reprod. 2001;16(8):1732-1735. https://doi.org/10.1093/humrep/16.8.1732
  15. Gilroy DW, Tomlinson A, Willoughby DA. Differential effects of inhibitors of cyclooxygenase (cyclooxygenase 1 and cyclooxygenase 2) in acute inflammation. Eur J Pharmacol. 1998;355(2-3):211-217. https://doi.org/10.1016/S0014-2999(98)00508-1
  16. Chegini N. TGF-beta system: the principal profibrotic mediator of peritoneal adhesion formation. Semin Reprod Med. 2008;26(4):298-312. https://doi.org/10.1055/s-0028-1082388
  17. Nagano J, Iyonaga K, Kawamura K, et al. Use of tacrolimus, a potent antifibrotic agent, in bleomycin-induced lung fibrosis. Eur Respir J. 2006;27(3):460-469. https://doi.org/10.1183/09031936.06.00070705
  18. Gagliano N, Moscheni C, Dellavia C, et al. Immunosuppression and gingival overgrowth: gene and protein expression profiles of collagen turnover in FK506-treated human gingival fibroblasts. J Clin Periodontol. 2005;32(2):167-173. https://doi.org/10.1111/j.1600-051X.2005.00654.x
  19. Cantürk NZ, Sayek İ. Karın içi adezyon oluşturma teknikleri ve önleme modelleri. In: Cantürk NZ, Sayek İ, editors. Cerrahi araştırma. Nobel Tıp Kitabevleri; 2005. p. 421-428.
  20. Wichterman KA, Baue AE, Chaudry IH. Sepsis and septic shock--a review of laboratory models and a proposal. J Surg Res. 1980;29(2):189-201. https://doi.org/10.1016/0022-4804(80)90037-2
  21. Otero-Antón E, González-Quintela A, López-Soto A, et al. Cecal ligation and puncture as a model of sepsis in the rat: influence of the puncture size on mortality, bacteremia, endotoxemia and tumor necrosis factor alpha levels. Eur Surg Res. 2001;33(2):77-79. https://doi.org/10.1159/000049698
  22. Tüzüner A, Kuzu MA, Akin B, et al. The effect of hyaluronan-based agents on adhesion formation in an intraabdominal sepsis model. Dig Dis Sci. 2004;49(6):1054-1061. https://doi.org/10.1023/B:DDAS.0000034571.30602.36
  23. Reijnen MM, Bleichrodt RP, van Goor H. Pathophysiology of intra-abdominal adhesion and abscess formation, and the effect of hyaluronan. Br J Surg. 2003;90(5):533-541. https://doi.org/10.1002/bjs.4141
  24. Cheong YC, Laird SM, Shelton JB, et al. The correlation of adhesions and peritoneal fluid cytokine concentrations: a pilot study. Hum Reprod. 2002;17(4):1039-1045. https://doi.org/10.1093/humrep/17.4.1039
  25. Saba AA, Kaidi AA, Godziachvili V, et al. Effects of interleukin-6 and its neutralizing antibodies on peritoneal adhesion formation and wound healing. Am Surg. 1996;62(7):569-572.
  26. Hershlag A, Otterness IG, Bliven ML, et al. The effect of interleukin-1 on adhesion formation in the rat. Am J Obstet Gynecol. 1991;165(3):771-774. https://doi.org/10.1016/0002-9378(91)90326-M
  27. Naiki Y, Maeda Y, Matsuo K, et al. Involvement of TGF-beta signal for peritoneal sclerosing in continuous ambulatory peritoneal dialysis. J Nephrol. 2003;16(1):95-102.
  28. Wasserberg N, Nunoo-Mensah JW, et al. The effect of immunosuppression on peritoneal adhesions formation after small bowel transplantation in rats. J Surg Res. 2007;141(2):294-298. https://doi.org/10.1016/j.jss.2006.12.541