Dergiler / Acta Medica Alanya / 2026 / Cilt: 9 Sayı: 2

Metamizol İn Vitro Hematopoez Simülasyonunda Farklılaşmaya Yönlendirilen Hematopoetik Kök/Progenitör Hücrelerin OCT4, SOX2, SOX4 Ekspresyonunu Azaltır

Metamizole Reduces The Expression of OCT4, SOX2, SOX4 in Hematopoietic Stem/Progenitor Cells Directed to Differentiation in In Vitro Hematopoiesis Simulation

Erkan Maytalman(ALANYA ALAADDIN KEYKUBAT UNIVERSITY)0000-0001-5284-7439
Dilara Nemutlu Samur(ALANYA ALAADDİN KEYKUBAT ÜNİVERSİTESİ)0000-0003-2630-6182
Sayfa
99–107
Yayın Tarihi
2025-08-03
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Bulgular: Metamizol 10 µM başlayarak artan konsantrasyonlarda hücrelerin çoğalmasını sınırlandırdı.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Amaç: Metamizol analjezik ve antipiretik etkisi nedeniyle kullanılan bir non-steroidal antiinflamatuvar ilaçtır.
📊
Temel Bulgular & Veri:Bu etkilerin altında yatan mekanizmalar yeterince açıklanmamıştır.
💡
Sonuç & Katkı:Bulgular: Metamizol 10 µM başlayarak artan konsantrasyonlarda hücrelerin çoğalmasını sınırlandırdı.
🔬Tür:Araştırma Makalesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Metamizol · NSAİİ · Hematopoez

Özet

Amaç: Metamizol analjezik ve antipiretik etkisi nedeniyle kullanılan bir non-steroidal antiinflamatuvar ilaçtır. Agranülositoz bu ilacın bazı ülkelerde kullanımını sınırlayan önemli bir yan tesiridir fakat bu yan tesirin olası mekanizmalarıyla kanser hücrelerinde apoptozu teşvik ettiği de gösterilmiştir. Bu etkilerin altında yatan mekanizmalar yeterince açıklanmamıştır. Yöntem: Çalışmada sağlıklı allojeneik kök hücre donörlerinden toplanan kök hücre ürün örneklerinden elde edilen hücreler kullanıldı. Metamizolün hücreler üzerindeki proliferatif-sitotoksik etkilerinin analizi için MTT testi uygulandı. Ayrıca farklılaşmanın ve OCT4, SOX2, SOX4’ün ekspresyon analizleri için CFU-Mix kültürü yapıldı. Transkripsiyon faktörlerinin ekspresyon katsayıları RT-qPCR ile tespit edildi. Bulgular: Metamizol 10 µM başlayarak artan konsantrasyonlarda hücrelerin çoğalmasını sınırlandırdı. Metamizolün IC50 değerleri örnekler arasında belirgin derecede farklıydı. IC50 için en düşük değer 50,96±7,60 µM en yüksek 165,5±18,21 µM olarak elde edildi. Granulosit-makrofaj koloni sayımlarında ve OCT4, SOX4 mRNA ekspresyonlarında 10 ve 100 µM konsantrasyonlarda azalma oldu. SOX2 için azalma 100 µM konsantrasyonda gerçekleşti. Sonuç: Sonuçlarımız metamizolün transkripsiyon faktörleri üzerinden hematopoetik kök/progenitör hücrelerin proliferasyon ve farklılaşmasını sınırlandırabileceğini ve olası agranülositoz olgularında bu etkinin de sorumlu olabileceğini işaret etti. NSAIl’erin kanser hücreleri üzerine de apoptotik etkileri de gösterilmiştir. Hücrelerin gelişmesi ve farklılaşmasında önemli rolleri olan transkripsiyon faktörlerinin ekspresyonunu sınırlandırabilmesi, bu ilacın antineoplastik ilaçlarla sinerjik etki için birlikte kullanımlarının önünü açabilir.

Abstract

Aim: Metamizole is a non-steroidal anti-inflammatory drug used for its analgesic and antipyretic effects. Metamizole-associated agranulocytosis is a significant adverse effect limiting its use in some countries, but it has also been shown to promote apoptosis in cancer cells with possible mechanisms underlying this adverse effect. The mechanisms underlying these effects have not been sufficiently elucidated. Methods: The cells obtained from stem cell product samples collected from healthy allogeneic stem cell donors were used in the study. MTT assay was used to analyse the proliferative-cytotoxic effects of metamizole on cells. CFU-Mix culture was also performed for cell differentiation to granulocyte and analysis of expression of OCT4, SOX2, SOX4. The expression fold change of transcription factors was determined by RT-qPCR. Results: Metamizole limited the proliferation of cells at increasing concentrations starting at 10 µM. The IC50 values of metamizole were significantly different between the samples. The lowest value for IC50 was 50.96±7.60 µM and the highest value was 165.5±18.21 µM. Granulocyte-macrophage colony counts and OCT4, SOX4 mRNA expressions decreased at metamizole concentrations of 10 and 100 µM. For SOX2, the decrease occurred at a concentration of 100 µM. Conclusion: Our results indicated that metamizole may limit the proliferation and differentiation of hematopoietic stem/progenitor cells via transcription factors and this effect may be responsible for possible agranulocytosis cases. NSAIDs have also been shown to have apoptotic effects on cancer cells. The ability to limit the expression of transcription factors that play important roles in cell development and differentiation may pave the way for the synergistic use of this drug with antineoplastic drugs.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

Maytalman, E., Samur, D. N. (2025). Metamizol İn Vitro Hematopoez Simülasyonunda Farklılaşmaya Yönlendirilen Hematopoetik Kök/Progenitör Hücrelerin OCT4, SOX2, SOX4 Ekspresyonunu Azaltır. Acta Medica Alanya, Cilt: 9 Sayı: 2, 99–107. https://ajindex.com/articles/1349468

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (27)

  1. Maciá-Martínez MÁ, Castillo-Cano B, García-Poza P, Martín-Merino E. Risk of agranulocytosis with metamizole in comparison with alternative medications based on health records in Spain. Eur J Clin Pharmacol. 2024;80(10):1503-14. doi: 10.1007/s00228-024-03706-5.
  2. Andersohn F, Konzen C, Garbe E. Systematic review: agranulocytosis induced by nonchemotherapy drugs. Ann Intern Med. 2007;146(9):657-65. doi: 10.7326/0003-4819-146-9-200705010-00009.
  3. Andrade S, Bartels DB, Lange R, Sandford L, Gurwitz J. Safety of metamizole: a systematic review of the literature. J Clin Pharm Ther. 2016;41(5):459-77. doi: 10.1111/jcpt.12422.
  4. Jasiecka A, Maślanka T, Jaroszewski JJ. Pharmacological characteristics of metamizole. Pol J Vet Sci. 2014;17(1):207-14. doi: 10.2478/pjvs-2014-0030.
  5. García-Martínez JM, Fresno Vara JA, Lastres P, Bernabéu C, Betés PO, Martín-Pérez J. Effect of metamizol on promyelocytic and terminally differentiated granulocytic cells. Comparative analysis with acetylsalicylic acid and diclofenac. Biochem Pharmacol. 2003;65(2):209-17. doi: 10.1016/s0006-2952(02)01511-3.
  6. Rudin D, Roos NJ, Duthaler U, Krähenbühl S. Toxicity of metamizole on differentiating HL60 cells and human neutrophil granulocytes. Toxicology. 2019;426:152254. doi: 10.1016/j.tox.2019.152254.
  7. Maytalman E, Samur DN, Gunizi OC, Kozanoglu I. The effects of metamizole on hematopoietic progenitor cells: Suppression of hematopoiesis stimulation in vitro. Bratisl Lek Listy. 2023;124(4):320-9. doi: 10.4149/BLL_2023_049.
  8. Sarma NJ, Takeda A, Yaseen NR. Colony forming cell (CFC) assay for human hematopoietic cells. J Vis Exp 2010;(46):2195. doi: 10.3791/2195.
  9. Korbecki J, Bobiński R, Dutka M. Self-regulation of the inflammatory response by peroxisome proliferator-activated receptors. Inflamm Res. 2019;68(6):443-58. doi: 10.1007/s00011-019-01231-1.
  10. Vaish V, Sanyal SN. Chemopreventive effects of NSAIDs on cytokines and transcription factors during the early stages of colorectal cancer. Pharmacol Rep. 2011;63(5):1210-21. doi: 10.1016/s1734-1140(11)70641-7.
  11. Rizzino A, Wuebben EL. Sox2/Oct4: A delicately balanced partnership in pluripotent stem cells and embryogenesis. Biochim Biophys Acta. 2016;1859(6):780-91. doi: 10.1016/j.bbagrm.2016.03.006.
  12. Smith E, Sigvardsson M. The roles of transcription factors in B lymphocyte commitment, development, and transformation. J Leukoc Biol. 2004;75(6):973-81. doi: 10.1189/jlb.1103554.
  13. Liang A, Wu F, Li C, Yu Y, Dong Z, Chen G, et al. Aspirin inhibits stem cell proliferation during freshwater Dugesia japonica regeneration by STAT3/SOX2/OCT4 signaling pathway. Aquat Toxicol. 2022;247:106158. doi: 10.1016/j.aquatox.2022.106158.
  14. Topuz RD, Cetinkaya MZ, Erumit D, Duvan Aydemir K, Gunduz O, Karadag CH, et al. The role of endocannabinoid system and TRPV1 receptors in the antidepressant and anxiolytic effects of dipyrone in chronic unpredictable mild stress in mice. Eur J Pharmacol. 2021;908:174315. doi: 10.1016/j.ejphar.2021.174315.
  15. Maytalman E, Nemutlu Samur D. Neuroendocrine modulation by metamizole and indomethacin: investigating the impact on neuronal markers and GnRH release. Endocrine. 2024;85(3):1327-36. doi: 10.1007/s12020-024-03822-3.
  16. Malsy M, Graf B, Bundscherer A. Effects of metamizole, MAA, and paracetamol on proliferation, apoptosis, and necrosis in the pancreatic cancer cell lines PaTu 8988 t and Panc-1. BMC Pharmacol Toxicol. 2017;18(1):77. doi: 10.1186/s40360-017-0185-y.
  17. Bundscherer AC, Malsy M, Gruber MA, Graf BM, Sinner B. Acetaminophen and Metamizole Induce Apoptosis in HT 29 and SW 480 Colon Carcinoma Cell Lines In Vitro. Anticancer Res. 2018;38(2):745-51. doi: 10.21873/anticanres.12280.
  18. Nikolova I, Marinov L, Georgieva A, Toshkova R, Malchev M, Voynikov Y, et al. Metamizole (dipyrone) – cytotoxic and antiproliferative effects on HeLa, HT-29 and MCF-7 cancer cell lines. Biotechnology & Biotechnological Equipment. 2018;32(5):1327-37. doi: 10.1080/13102818.2018.1511382.
  19. Pirnat A, Prelog T, Jazbec J, Trampuš Bakija A. Case Report: Agranulocytosis in a Child Following Metamizole Use - A Diagnostic Challenge. Acta Med Acad. 2025. Online ahead of print. doi: 10.5644/ama2006-124.472.
  20. Brüne B, Sonderer S, Bösing M, Hübner S, Dongre K, Späni S, Holboro A, Leuppi JD, Leuppi-Taegtmeyer AB. Assessing potential risk factors for metamizole-induced leukopenia. Ther Adv Drug Saf. 2024;15:20420986241275255. doi: 10.1177/20420986241275255.
  21. Kummer O, Haschke M, Tuchscherer D, Lampert M, Martius F, Krähenbühl S. Agranulozytose bei einem mit Metamizol und Clopidogrel behandelten Patienten [Agranulocytosis in a patient treated with metamizole and clopidogrel]. Praxis (Bern 1994). 2006;95(45):1743-5; quiz 1746-7. German. doi: 10.1024/1661-8157.95.45.1743.
  22. Blaser LS, Tramonti A, Egger P, Haschke M, Krähenbühl S, Rätz Bravo AE. Hematological safety of metamizole: retrospective analysis of WHO and Swiss spontaneous safety reports. Eur J Clin Pharmacol. 2015;71(2):209-17. doi: 10.1007/s00228-014-1781-z.
  23. Huang X, Lee MR, Cooper S, Hangoc G, Hong KS, Chung HM, Broxmeyer HE. Activation of OCT4 enhances ex vivo expansion of human cord blood hematopoietic stem and progenitor cells by regulating HOXB4 expression. Leukemia. 2016;30(1):144-53. doi: 10.1038/leu.2015.189.
  24. Świstowska M, Gil-Kulik P, Czop M, Wieczorek K, Macheta A, Petniak A, et al. Comparison of SOX2 and POU5F1 Gene Expression in Leukapheresis-Derived CD34+ Cells before and during Cell Culture. Int J Mol Sci. 2023;24(4):4186. doi: 10.3390/ijms24044186.
  25. Sakhinia E, Byers R, Bashein A, Hoyland J, Buckle AM, Brady G. Gene expression analysis of myeloid and lymphoid lineage markers during mouse haematopoiesis. Br J Haematol. 2006;135(1):105-16. doi: 10.1111/j.1365-2141.2006.06254.x.
  26. Zhang H, Ye M, Welner RS, Tenen DG. Sox4 Is Required for the Formation and Maintenance of Multipotent Progenitors. Blood. 2014;124(21):1577. doi: 10.1182/blood.V124.21.1577.1577.
  27. Aref S, Khaled O, Menshawy NE, Azmy E, Aref M, Salama O, et al. Significance of OCT3/4 and SOX2 antigens expression by leukemic blast cells in adult acute leukemia. J Egypt Natl Canc Inst. 2024;36(1):5. doi: 10.1186/s43046-024-00209-3.