KaydedilenlerDerginizi ekleyin

Dergiler / Acta Medica Alanya / 2026 / Cilt: 10 Sayı: 2

Metalik Cıva Buharına Maruz Kalan Sıçanlarda Hipokampal Hasarın Stereolojik ve Histolojik İncelenmesi

A Stereological and Histological Study of Hippocampal Injury in Rats Exposed to Metallic Mercury Vapor

Işınsu Alkan(NEVSEHIR HACI BEKTAS VELI UNIVERSITY, FACULTY OF DENTISTRY)0000-0002-9819-7766
Zuhal Altunkaynak(OKAN UNIVERSITY)0000-0001-7513-0094
Nilgün Akgül(PAMUKKALE UNIVERSITY)0000-0002-6732-0485
Sayfa
172–177
Yayın Tarihi
2026-08-16
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Bulgular: Civa infüzyonu, kontrol grubunun cornu ammonisindeki piramidal hücreleri önemli ölçüde azalttı.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Amaç: Civa (Hg), uzun süre maruz kalındığında nörolojik dokulara zarar veren çevre kirleticisidir.
📊
Temel Bulgular & Veri:Yöntem: Bu çalışmada, 200 g 10-12 dişi Wistar albino sıçan kullanıldı.
💡
Sonuç & Katkı:Bulgular: Civa infüzyonu, kontrol grubunun cornu ammonisindeki piramidal hücreleri önemli ölçüde azalttı.
🔬Tür:Laboratuvar & Saha Deneyi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Cıva buharı · Stereoloji · Histopatoloji

Özet

Amaç: Civa (Hg), uzun süre maruz kalındığında nörolojik dokulara zarar veren çevre kirleticisidir. Bu çalışmada, metalik civa buharına maruz bırakılan dişi sıçanların hipokampüslerinin stereolojik ve histolojik özelliklerini inceledik. Yöntem: Bu çalışmada, 200 g 10-12 dişi Wistar albino sıçan kullanıldı. Sıçanlar özel olarak yapılmış bir cam kafeste barındırıldı ve civa grubu (n=6) 45 gün boyunca 1mg/m3/gün civa buharına maruz bırakıldı. Kontrol grubu (n=6) için herhangi bir uygulama yapılmadı. Deneyin sonunda hipokampal örnekler alındı ve stereolojik analizler gerçekeştirildi. Bulgular: Civa infüzyonu, kontrol grubunun cornu ammonisindeki piramidal hücreleri önemli ölçüde azalttı. Deney grubunun hipokampüslerinde daha koyu boyalı ve daha küçük hücre gövdelerine sahip nöronlar kolayca görülebiliyordu. Buna karşılık, kontrol grubunun nöronları normal yapıdaydı. Ayrıca, beyin dokusundaki oksidatif stres göstergelerinin (CAT, LPO, GSH ve SOD) seviyeleri, Hg maruziyetinden sonra önemli ölçüde değişti. Sonuç: Bulgularımız, civanın hipokampüste oksidatif hasara neden olabileceğini ve muhtemelen buna maruz kalan sıçanlarda nöron kaybına yol açabileceğini göstermektedir.

Abstract

Aim: Mercury is a well-known environmental pollutant that, when exposed over an extended period of time, harms neurological tissue. In this study, we examined the stereological and histological features of female rats' hippocampi after exposure to metallic mercury vapor. Methods: The study used 200 g 10-12 years-old male Wistar albino rats, and the mercury group was subjected to 1 mg/m3/day of mercury vapor for 45 days. There was no application used for the control group. Hippocampal samples were taken from each animal at the ending of the experiment and processed for stereological analysis. Results: Mercury vapor infusion significantly decreased pyramidal cells in the experimental group. The neurons with darker stained and cell bodies were not visible. The levels of oxidative stress in brain tissue were dramatically altered after exposure. Conclusion: Our findings suggest that mercury may induce oxidative damage within the hippocampus, possibly leading to neuronal loss.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

Alkan, I., Altunkaynak, Z., Akgül, N. (2026). Metalik Cıva Buharına Maruz Kalan Sıçanlarda Hipokampal Hasarın Stereolojik ve Histolojik İncelenmesi. Acta Medica Alanya, Cilt: 10 Sayı: 2, 172–177. https://doi.org/10.30565/medalanya.1880120

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (24)

  1. International Agency for Research on Cancer (IARC) Working Group on the Evaluation of Carcinogenic Risks to Humans. Beryllium, cadmium, mercury, and exposures in the glass manufacturing industry. IARC Monogr Eval Carcinog Risks Hum. 1993;58:1-415. PMID: 8022054
  2. Jiang S, Tao X. Literature review of the potential harm and mechanisms of mercury poisoning related to cosmetics. Am J Transl Res. 2024;16(10):6064-71. doi: 10.62347/WOXO2630.
  3. Grandjean P. Mercury. In: Quah SR, editor. International encyclopedia of public health. 2nd ed. Oxford: Academic Press; 2017. p. 110-6.
  4. Ferreira G, Santander A, Chavarría L, Cardozo R, Savio F, Sobrevia L, et al. Functional consequences of lead and mercury exposomes in the heart. Mol Aspects Med. 2022;87:101048. doi: 10.1016/j.mam.2021.101048.
  5. Rani L, Basnet B, Kumar A. Mercury toxicity. In: Nriagu J, editor. Encyclopedia of environmental health. 2nd ed. Burlington: Elsevier; 2011. p. 325-32.
  6. Carocci A, Rovito N, Sinicropi MS, Genchi G. Mercury toxicity and neurodegenerative effects. Rev Environ Contam Toxicol. 2014;229:1-18. doi: 10.1007/978-3-319-03777-6_1.
  7. Pamphlett R, Coote P. Entry of low doses of mercury vapor into the nervous system. Neurotoxicology. 1998;19(1):39-47. PMID: 9498219.
  8. Murcia M, Ballester F, Enning AM, et al. Prenatal mercury exposure and birth outcomes. Environ Res. 2016;151:11-20. doi: 10.1016/j.envres.2016.07.003.
  9. Prpic I, Milardovic A, Vlasic-Cicvaric I, Špiric Z, Radić Nišević J, Vukelić P, et al. Prenatal exposure to low-level methylmercury alters the child’s fine motor skills at the age of 18 months. Environ Res. 2017;152:369-74. doi: 10.1016/j.envres.2016.10.011.
  10. Madeline MF, Seidel I, Sevier J, Wendt J, Kogan M. One man’s swordfish story: The link between Alzheimer’s disease and mercury exposure. Complement Ther Med. 2020;52:102499. doi: 10.1016/j.ctim.2020.102499.
  11. Gundersen HJ. Stereology of arbitrary particles. A review of unbiased number and size estimators and the presentation of some new ones, in memory of William R. Thompson. J Microsc. 1986;143(Pt 1):3-45. PMID: 3761363.
  12. Sterio DC. The unbiased estimation of number and sizes of arbitrary particles using the disector. J Microsc. 1984;134(Pt 2):127-36. PMID: 6737468.
  13. Fernandes Azevedo B, Barros Furieri L, Peçanha FM, Wiggers GA, Frizera Vassallo P, Ronacher Simões M, et al. Toxic effects of mercury on the cardiovascular and central nervous systems. J Biomed Biotechnol. 2012;2012:949048. doi: 10.1155/2012/949048.
  14. Grandjean P, Budtz-Jørgensen E, White RF, Jørgensen PJ, Weihe P, Debes F, et al. Methylmercury exposure biomarkers as indicators of neurotoxicity in children aged 7 years. Am J Epidemiol. 1999;150(3):301-5. doi: 10.1093/oxfordjournals.aje.a010002.
  15. Milioni ALV, Nagy BV, Moura ALA, Zachi EC, Barboni MTS, Ventura DF. Neurotoxic impact of mercury on the central nervous system evaluated by neuropsychological tests and on the autonomic nervous system evaluated by dynamic pupillometry. Neurotoxicology. 2017;59:263-9. doi: 10.1016/j.neuro.2016.04.010.
  16. Langworth S, Almkvist O, Söderman E, Wikström BO. Effects of occupational exposure to mercury vapour on the central nervous system. Br J Ind Med. 1992;49(8):545-56. doi: 10.1136/oem.49.8.545.
  17. Teixeira FB, de Oliveira ACA, Leão LKR, Fagundes NCF, Fernandes RM, Fernandes LMP, et al. Exposure to inorganic mercury causes oxidative stress, cell death, and functional deficits in the motor cortex. Front Mol Neurosci. 2018;11:125. doi: 10.3389/fnmol.2018.00125.
  18. da Silva DCB, Bittencourt LO, Baia-da-Silva DC, Chemelo VS, Eiró-Quirino L, Nascimento PC, et al. Methylmercury causes neurodegeneration and downregulation of myelin basic protein in the spinal cord of offspring rats after maternal exposure. Int J Mol Sci. 2022;23(7):3777. doi: 10.3390/ijms23073777.
  19. Warfvinge K, Hua J, Berlin M. Mercury distribution in the rat brain after mercury vapor exposure. Toxicol Appl Pharmacol. 1992;117(1):46-52. doi: 10.1016/0041-008x(92)90215-e.
  20. Liu Y, Shi Y, Han R, Liu C, Qin X, Li P, et al. Signaling pathways of oxidative stress response: the potential therapeutic targets in gastric cancer. Front Immunol. 2023;14:1139589. doi: 10.3389/fimmu.2023.1139589.
  21. Özcan O, Erdal H, Çakırca G, Yönden Z. Oxidative stress and its impacts on intracellular lipids, proteins and DNA. J Clin Exp Invest. 2015;6(3):331-336. doi: 10.5799/ahinjs.01.2015.03.0545.
  22. Li PF, Gammeri L, Borgia F, Di Gioacchino M, Gangemi S. Oxidative stress and skin diseases: The role of lipid peroxidation. Antioxidants (Basel). 2025;14(5):555. doi: 10.3390/antiox14050555.
  23. Demirel B, Eren B, Sağır D. Stereological investigation of the effects of curcumin on the damage in the hippocampus of developing rat brain caused by valproic acid. J. Exp. Clin. Med. 2014;31:122. doi: 10.5835/jecm.omu.31.02.015.
  24. Gyengesi E, Liang H, Millington C, Sonego S, Sirijovski D, Gunawardena D, et al. Investigation ınto the effects of tenilsetam on markers of neuroinflammation in GFAP-IL6 mice. Pharm Res. 2018;35(1):22. doi: 10.1007/s11095-017-2326-9.