Dergiler / Çanakkale Onsekiz Mart University Journal of Marine Sciences and Fisheries / 2026 / Cilt: 9 Sayı: 1

Dejenere Primerler ve LC-MS/MS Kullanılarak Ektoin Üreten Halofillerin Hızlı Tanısı

Rapid Identification of Ectoine-Producing Halophiles Using Newly Designed Degenerate Primers and LC-MS/MS

Ebru Tekin(EGE UNIVERSITY, INSTITUTE OF SCIENCE, BIOLOGY (DR))0000-0003-2623-1977
Mustafa Ateş(EGE UNIVERSITY, FACULTY OF SCIENCE, DEPARTMENT OF BIOLOGY)0000-0002-9305-3480
Sayfa
64–78
Yayın Tarihi
2026-07-07
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Bu çalışma, PCR tabanlı genetik tarama ile analitik doğrulamanın birlikte uygulanmasının, ektoin üreten mikroorganizmaların belirlenmesinde potansiyel olarak yararlı bir ön tarama yaklaşımı sunduğunu göstermektedir.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Ektoin, koruyucu ve stabilize edici özellikleri nedeniyle farmasötik, kozmetik ve biyoteknolojik uygulamalarda yaygın olarak kullanılan önemli bir biyouyumlu moleküldür.
📊
Temel Bulgular & Veri:Bu çalışmanın amacı, İzmir Çamaltı Tuzlası, İzmir Kuş Cenneti ve ticari Himalaya tuzu gibi farklı tuzlu ortamlardan izole edilen ektoin üreten bakteriyel suşları belirlemektir.
💡
Sonuç & Katkı:Bu çalışma, PCR tabanlı genetik tarama ile analitik doğrulamanın birlikte uygulanmasının, ektoin üreten mikroorganizmaların belirlenmesinde potansiyel olarak yararlı bir ön tarama yaklaşımı sunduğunu göstermektedir.
🔬Tür:Modelleme & Sayısal Simülasyon
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Ektoin · In silico primer dizaynı · Dejenere primerler

Özet

Ektoin, koruyucu ve stabilize edici özellikleri nedeniyle farmasötik, kozmetik ve biyoteknolojik uygulamalarda yaygın olarak kullanılan önemli bir biyouyumlu moleküldür. Bu çalışmanın amacı, İzmir Çamaltı Tuzlası, İzmir Kuş Cenneti ve ticari Himalaya tuzu gibi farklı tuzlu ortamlardan izole edilen ektoin üreten bakteriyel suşları belirlemektir. Bu amaçla, in silico primer tasarımına dayalı PCR temelli bir tarama yaklaşımı uygulanmıştır. Çalışmada, ectB-ectC gen bölgesini hedefleyen yeni tasarlanmış dejenere primerler kullanılmıştır. Primer tasarımı, NCBI veri tabanından elde edilen temsilci tip suşlar kullanılarak, komşu ectB ve ectC genleri arasındaki korunmuş genomik bölgelerin analiz edilmesiyle gerçekleştirilmiştir. Amplifikasyon verimini ve özgüllüğünü artırmak amacıyla, özellikle bağlanma sıcaklığı ve uzama süresi gibi gradient PCR koşulları her izolat için ayrı ayrı optimize edilmiştir. Genetik tarama sonuçlarının doğrulanması amacıyla, ektoin üretimi %15 tuzluluk içeren besiyerinde değerlendirilmiş ve ektoin standardı kullanılarak LC-MS/MS analizi ile miktar tayini yapılmıştır. Toplam sekiz bakteriyel izolat saflaştırılmış ve ectB-ectC bölgesinin varlığı açısından taranmıştır. Bunlardan üç izolat (Kocuria sp. CT-6, Oceanobacillus sp. HT-9 ve Halomonas sp. CS-5) hedef gen bölgesi açısından pozitif bulunmuştur. ectB-ectC gen bölgesi pozitif olan temsili olarak Halomonas sp. CS-5 suşu, çalışmaya özgü bir model olarak seçilmiş ve %15 tuzluluk koşullarında kültive edilmiştir. LC-MS/MS analizi sonucunda, kültürün 48,5 saatte durağan faza ulaşmasıyla ektoin üretimi 0,395 g/L (ortalama±SD, n=3, SD=0) olarak doğrulanmıştır. Aynı zamanda toplam kuru hücre ağırlığı 1,77 g/L olarak belirlenmiş ve bu değer kuru hücre ağırlığının %22,3’üne (w/w) karşılık gelmiştir. Bu çalışma, PCR tabanlı genetik tarama ile analitik doğrulamanın birlikte uygulanmasının, ektoin üreten mikroorganizmaların belirlenmesinde potansiyel olarak yararlı bir ön tarama yaklaşımı sunduğunu göstermektedir. Bu yaklaşım, ileri biyoteknolojik değerlendirmeler için umut verici suşların seçimini desteklemektedir.

Abstract

Ectoine is a valuable compatible solute widely used in pharmaceutical, cosmetic, and biotechnological applications due to its protective and stabilizing properties. This study aimed to identify ectoine-producing bacterial strains isolated from diverse saline environments, including the İzmir Çamaltı Saltern, İzmir Bird Paradise, and commercial Himalayan salt. A PCR-based screening approach was applied using in silico primer design. Newly designed degenerate primers targeting the ectB-ectC gene region was used in this study. Primer design was performed for each strain by analyzing conserved genomic regions between the adjacent ectB and ectC genes using representative type strains retrieved from NCBI. Gradient PCR conditions, particularly annealing temperature and extension time, were optimized individually for each isolate to improve amplification efficiency and specificity. For confirmation of genetic screening, ectoine production was assessed in 15% salinity medium and quantified using LC–MS/MS analysis and ectoine standard. A total of eight bacterial isolates were purified and screened for the presence of the ectB-ectC region. Among them, three isolates -Kocuria sp. CT-6, Oceanobacillus sp. HT-9, and Halomonas sp. CS-5- were found positive for the target region. A representative ectB-ectC positive Halomonas sp. CS-5 strain was selected for further analysis as a study-specific model and cultivated under 15% salinity conditions. Ectoine production was confirmed as 0.395 g/L (mean±SD, n=3, SD=0) in the culture reached the stationary phase at 48.5 h, total dry cell weight was 1.77 g/L corresponding to 22.3% (w/w) of dry cell weight by LC-MS/MS analysis. The study demonstrates that the combined application of PCR-based screening and analytical confirmation provides a potentially useful preliminary screening approach for identifying ectoine-producing microorganisms. This approach supports the selection of promising strains for further biotechnological evaluation.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

Tekin, E., Ateş, M. (2026). Dejenere Primerler ve LC-MS/MS Kullanılarak Ektoin Üreten Halofillerin Hızlı Tanısı. Çanakkale Onsekiz Mart University Journal of Marine Sciences and Fisheries, Cilt: 9 Sayı: 1, 64–78. https://doi.org/10.46384/jmsf.1930810

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (39)

  1. Bazazzadegan, N., Dehghan Shasaltaneh M., Saliminejad, K., Kamali, K., Banan, M., Nazari, R., Riazi, G.H., & Khorram Khorshid, H.R. (2017). Effects of ectoine on behavior and candidate genes expression in ICV-STZ rat model of sporadic Alzheimer’s disease. Advanced Pharmaceutical Bulletin, 7, 629-636. doi: 10.15171/apb.2017.075
  2. Bilstein, A., Heinrich, A., Rybachuk, A., & Mösges, R. (2021). Ectoine in the treatment of irritations and inflammations of the eye surface. Biomed Research International, 8885032. doi: 10.1155/2021/8885032
  3. Cánovas, D., Vargas, C., Calderón, M.I., Ventosa, A., & Nieto, J.J. (1998). Characterization of the genes for the biosynthesis of the compatible solute ectoine in Halomonas elongata DSM 3043. Systematic and Applied Microbiology, 21, 487-497. doi: 10.1016/S0723-2020(98)80060-X
  4. Cantera, S., Di Benedetto, F., Tumulero, B.F., & Sousa, D.Z. (2023). Microbial conversion of carbon dioxide and hydrogen into the fine chemicals hydroxyectoine and ectoine. Bioresource Technology, 374, 128753. doi: 10.1016/j.biortech.2023.128753
  5. Chen, W.C., Hsu, C.C., Lan, J., Chang, Y.K., Wang, L.F., & Wei, Y.H. (2018). Production and characterization of ectoine using Halomonas salina BCRC17875. Journal of Bioscience and Bioengineering, 125, 578-584. doi: 10.1016/j.jbiosc.2017.12.011
  6. Choi, S. S., Yim, J. H., Abdalla, K. K., & Jeon, Y. J. (2025). Ectoine production: Genetic, biochemical, and biotechnological perspectives. Journal of Life Science, 35(7), 635-645. doi: 10.5352/JLS.2025.35.7.635
  7. Felsenstein, J. (1985). Confidence limits on phylogenies: an approach using the bootstrap. Evolution, 39, 783-791. doi: 10.1111/j.1558-5646.1985.tb00420.x
  8. Ferreira, P., Ataide, J.A., Babaie, S. et al. (2026). Ectoine as a multifunctional molecule: biotechnological production and pharmaceutical applications. Drug Delivery and Translational Research, 16, 469-493. doi: 10.1007/s13346-025-02024-2
  9. Galinski, E.A., Pfeiffer, H.P., & Trüper, H.G. (1985). 1,4,5,6-tetrahydro-2-methyl-4-pyrimidine carboxylic acid: a novel cyclic amino acid from halophilic phototrophic bacteria of the genus Ectothiorhodospira. European Journal of Biochemistry, 149, 135-139. doi: 10.1111/j.1432-1033.1985.tb08903.x
  10. He, Y.Z., Gong, J., Yu, H.Y., Tao, Y., Zhang, S., & Dong, Z.Y. (2015). High production of ectoine from aspartate and glycerol by use of whole-cell biocatalysis in recombinant Escherichia coli. Microbial Cell Factories, 14, 55. doi: 10.1186/s12934-015-0238-0
  11. Hu, Q., Sun, S., Zhang, Z., Liu, W., Yi, X., He, H., & Chen, G.Q. (2024). Ectoine hyperproduction by engineered Halomonas bluephagenesis. Metabolic Engineering, 82, 238-249. doi: 10.1016/j.ymben.2024.02.010
  12. Kanapathipillai, M., Lentzen, G., Sierks, M., & Park, C.B. (2005). Ectoine and hydroxyectoine inhibit aggregation and neurotoxicity of Alzheimer’s beta-amyloid. FEBS Letter, 579, 4775-4780. doi: 10.1016/j.febslet.2005.07.057
  13. Kunte, H.J., Galinski, E.A., & Trüper, H.G. (1993). A modified FMOC-method for the detection of amino acid-type osmolytes and tetrahydropyrimidines (ectoines). Journal of Microbiological Methods, 17, 129-136. doi: 10.1016/0167-7012(93)90006-4
  14. Li, M., Zhang, J., Yang, W., Miao, Z., Pai, Y., Yi, Y., Shuang, J., Gao, X. & Li, Y. (2026). Ectoine attenuates H2O2-Induced cellular senescence in human keratinocytes and endothelial cells by modulating the p53/p21 and p16 pathways. Frontiers in Aging, 26, 7, 1754569. doi: 10.3389/fragi.2026.1754569
  15. Liu, M., Liu, H., Shi, M., Jiang, M., Li, L., & Zheng, Y. (2021). Microbial production of ectoine and hydroxyectoine as high-value chemicals. Microbial Cell Factories, 20, 76. doi: 10.1186/s12934-021-01567-6
  16. Mata, J.A., Martínez-Cánovas, J., Quesada, E., & Béjar, V. (2002). A detailed phenotypic characterisation of the type strains of Halomonas species. Systematic and Applied Microbiology, 25, 360-375. doi: 10.1078/0723-2020-00122
  17. Microsoft, (2025). STDEVA function, Microsoft Support, Retrieved: 05.01.2026 https://support.microsoft.com/en-au/office/stdeva-function-6f2e8b24-203b-461b-887e-1e345d1a25ab
  18. Mishra, P., Singh, U., Pandey, C.M., Mishra, P., & Pandey, G. (2019). Application of student's t-test, analysis of variance, and covariance. Annals of Cardiac Anaesthesia, 22, 407-411. doi: 10.4103/aca.ACA_94_19
  19. Obradovic, J., Jurisic, V., Tosic, N., Mrdjanovic, J., Perin, B., Pavlovic, S., & Djordjevic, N. (2013). Optimization of PCR conditions for amplification of GC-rich EGFR promoter sequence. Journal of Clinical Laboratory Analysis, 27, 487-493. doi:10.1002/jcla.21632
  20. Pastor, J.M., Salvador, M., Argandoña, M., Bernal, V., Reina-Bueno, M., Csonka, L.N., Iborra, J.L., Vargas, C., Nieto, J.J., & Cánovas, M. (2010). Ectoines in cell stress protection: uses and biotechnological production. Biotechnology Advances, 28, 782-801. doi: 10.1016/j.biotechadv.2010.06.005
  21. Radha, A, Najar, I.N., Nekkala, N., Sharma, S., Sharma, V., Bhanwaria, R.,& Kumar V. (2026). Efficient production of ectoine using isolated Halomonas smyrnensis IIIM VA-6 at the reduced salinity approach. FEMS Microbiology Letters, 373, fnag001.doi: 10.1093/femsle/fnag001
  22. Saitou, N., & Nei, M. (1987). The neighbor-joining method: a new method for reconstructing phylogenetic trees. Molecular Biology of Evolution, 4, 406-425. doi: 10.1093/oxfordjournals.molbev.a040454
  23. Sauer, T., & Galinski, E.A. (1998). Bacterial milking: a novel bioprocess for production of compatible solutes. Biotechnology Bioengineering, 57, 306-313.
  24. Schubert, T., Maskow, T., Benndorf, D., Harms, H., & Breuer, U. (2007). Continuous synthesis and excretion of the compatible solute ectoine by a transgenic, nonhalophilic bacterium. Applied and Environmental Microbiology, 73, 3343-3347. doi: 10.1128/AEM.02482-06
  25. Schwibbert, K., Marin-Sanguino, A., Bagyan, I., Heidrich, G., Lentzen, G., Seitz, H., & Kunte, H.J. (2011). A blueprint of ectoine metabolism from the genome of Halomonas elongata DSM 2581T. Environmental Microbiology, 13, 1973-1994. doi: 10.1111/j.1462-2920.2010.02336.x
  26. Suzuki, M., Rappé, M.S., & Giovannoni, S.J. (1998). Kinetic bias in estimates of coastal picoplankton community structure obtained by measurements of small-subunit rRNA gene PCR amplicon length heterogeneity. Applied and Environmental Microbiology, 64, 4522-4529. doi: 10.1128/AEM.64.11.4522-4529.1998
  27. Tamura, K., Nei, M., & Kumar, S. (2004). Prospects for inferring very large phylogenies by using the neighbor-joining method. Proceeding of National Academic of Sciences of the United States of America, 101, 11030-11035. doi: 10.1073/pnas.0404206101
  28. Tamura, K., Stecher, G., Peterson, D., Filipski, A., & Kumar, S. (2013). MEGA6: Molecular evolutionary genetics analysis version 6.0. Molecular Biology of Evolution, 30, 2725-2729. doi: 10.1093/molbev/mst197
  29. Tekin, E. (2015). Isolation, purification and identification of moderately halophilic bacteria and determination of some molecular properties. (PhD Dissertation), University of Ege, Turkey.
  30. Tekin, E., & Ateş, M. (2025). Characterization of polyextremotolerant bacterial strains (Kocuria, Virgibacillus, and Halomonas) with industrial potential isolated from the İzmir Çamaltı Saltern. Ege Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 42, 307-316. doi: 10.12714/egejfas.42.4.04
  31. Van-Thuoc, D., Guzmán, H., Thi-Hang, M., & Hatti-Kaul, R. (2010). Ectoine production by Halomonas boliviensis: optimization using response surface methodology. Journal of Marine Biotechnology, 12, 586-593. doi: 10.1007/s10126-009-9246-6
  32. Ventosa, A., Quesada, E., Rodríguez-Valera, F., Ruiz-Berraquero, F., & Ramos-Cormenzana, A. (1982). Numerical taxonomy of moderately halophilic gram-negative rods. Journal of General Microbiology, 128, 1959-1968. doi: 10.1099/00221287-128-9-1959
  33. Wang, Y., Liang, J., Zhang, P., Yan, G., Jiang, H., & Wang, M. (2025). The reduction of skin photodamage by the ectoine–Thermus thermophilus cofermentation products. Journal of Cosmetic Dermatology, 24, e70298. doi: 10.1111/jocd.70298
  34. Weisburg, W.G., Barns, S.M., Pelletier, D.A., & Lane, D.J. (1991). 16S ribosomal DNA amplification for phylogenetic study. Journal of Bacteriology, 173, 697-703. doi:10.1128/jb.173.2.697-703.1991
  35. Widderich, N., Höppner, A., Pittelkow, M., Heider, J., Smits, S.H., & Bremer, E. (2014). Biochemical properties of ectoine hydroxylases from extremophiles and their wider taxonomic distribution among microorganisms, PLoS One, 8, 9 (4), e93809. doi: 10.1371/journal.pone.0093809
  36. Xu, S., Zhang, B., Chen, W., Ye, K., Shen, J., Liu, P., & Chu, X. (2023). Highly efficient production of ectoine via an optimized combination of precursor metabolic modules in Escherichia coli BL21. Bioresource Technology, 390, 129803. doi: 10.1016/j.biortech.2023.129803
  37. Ye, J., Coulouris, G., Zaretskaya, I., Cutcutache, I., Rozen, S., Madden, T.L. (2012). Primer-BLAST: a tool to design target-specific primers for polymerase chain reaction. BMC Bioinformatics, 18, 13, 134. doi: 10.1186/1471-2105-13-134
  38. Zanjirband, M., Golbang, N., & Kermanshahi, R.K. (2008). Detection of the ectC gene in Halomonas strains by polymerase chain reaction. Iranian Journal of Biotechnology, 6, 181-185.
  39. Zhang, L.H., Lang, Y.J., & Nagata, S. (2009). Efficient production of ectoine using ectoine-excreting strain. Extremophiles, 13, 717-724. doi: 10.1007/s00792-009-0262-2