Dergiler / Kocatepe Veteriner Dergisi / 2014 / Cilt: 7 - Sayı: 2

Bazı Keçi Irklarında Küçük Ruminant Vebası Aşısı Sonrası Antikor Dağılımı

Peste Des Petits Ruminants Antibody Distribution In Some Goat Breeds After The Vaccination

Sayfa
53–55
Yayın Tarihi
2014-12-01
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Çalışma sonunda, PPRV aşısı yapılan tüm keçilerdeki antikor varlığı %72.55 (267/368) olarak belirlenirken, seropozitifliğin keçi ırklarına göre dağılımı ise Saanen, Malta ve Kıl keçilerinde sırasıyla, % 69.60, % 72.58% ve 72.53 olarak saptanmış ve ırklar arasındaki dağılımlarda istatistiksel olarak anlamlı farklılık bulunmamıştır.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Dünyada keçi yetiştiriciliğinin yapıldığı ülkelerde yaygın olarak görülen küçük ruminant vebası (PPR) enfeksiyonu ülkemiz için de ekonomik önemi olan enfeksiyonlardandır.
📊
Temel Bulgular & Veri:Bu çalışmanın amacı, PPR aşılaması sonrası keçilerde antikor varlığının belirlenmesi ve antikor varlığının keçi ırklarına göre farklılık gösterip/göstermediğinin incelenmesidir.
💡
Sonuç & Katkı:Çalışma sonunda, PPRV aşısı yapılan tüm keçilerdeki antikor varlığı %72.55 (267/368) olarak belirlenirken, seropozitifliğin keçi ırklarına göre dağılımı ise Saanen, Malta ve Kıl keçilerinde sırasıyla, % 69.60, % 72.58% ve 72.53 olarak saptanmış ve ırklar arasındaki dağılımlarda istatistiksel olarak anlamlı farklılık bulunmamıştır.
🔬Tür:Araştırma Makalesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Celisa · Küçük Ruminant Vebası · PPR Aşılama

Özet

Dünyada keçi yetiştiriciliğinin yapıldığı ülkelerde yaygın olarak görülen küçük ruminant vebası (PPR) enfeksiyonu ülkemiz için de ekonomik önemi olan enfeksiyonlardandır. Bu enfeksiyona karşı mücadelede aşılama önemli yer tutmaktadır. Bu çalışmanın amacı, PPR aşılaması sonrası keçilerde antikor varlığının belirlenmesi ve antikor varlığının keçi ırklarına göre farklılık gösterip/göstermediğinin incelenmesidir. Bu amaçla, 102 Saanen keçisi, 124 Malta keçisi ve 142 Kıl keçisi PPR aşılaması sonrası oluşan seropozitiflik açısından c ELISA ile incelenmiştir. Çalışma sonunda, PPRV aşısı yapılan tüm keçilerdeki antikor varlığı %72.55 (267/368) olarak belirlenirken, seropozitifliğin keçi ırklarına göre dağılımı ise Saanen, Malta ve Kıl keçilerinde sırasıyla, % 69.60, % 72.58% ve 72.53 olarak saptanmış ve ırklar arasındaki dağılımlarda istatistiksel olarak anlamlı farklılık bulunmamıştır.

Abstract

Peste des petits ruminants (PPR), is economically important in our countries, same as other countries in the world, where are commonly breeding goat. Vaccination has an important role for prevention against to this infection. Aim of this study, Determination of PPR antibodies distribution among the goat breeds after vaccination. In the study, 102 Saanen, 124 Maltese and 142 Hair goats breed were examined by cELISA for seropositivity formed after PPR vaccination. Finally, antibody presence of PPR vaccine inoculated animals was determined as 72.55% (267/368). The distribution of seropositivity of Saanen, Maltese and Hair goat breeds were determined to 69.60, % 72.58% and 72.53 respectively. In vaccinated animals seropositivity rates were evaluated on according to goat breeds and were not found statistically significant differences.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

GÜMÜŞOVA, S., MEMİŞ, Y. S. (2014). Bazı Keçi Irklarında Küçük Ruminant Vebası Aşısı Sonrası Antikor Dağılımı. Kocatepe Veteriner Dergisi, Cilt: 7 - Sayı: 2, 53–55. https://ajindex.com/articles/124968

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (10)

  1. Alçığır G, Vural Atalay S, Toplu N. Türkiye’de Kuzularda Peste des Petits Ruminants Virus Enfeksiyonunun Patomorfolojik ve İmmunhistolojik İlk Tanımı. Ankara Üniv Vet Fak Derg.1996; 43 (2): 181-189.
  2. Altuğ N, Özdemir R, Cantekin Z. Ruminantlarda Koruyucu Hekimlik: I. Aşı Uygulamaları. Erciyes Üniv. Vet. Fak. Derg.2013; 10(1): 33-44. Anonim.http://turkiyekoyunkeci.org/dosya/350tC3BCrkiye20keC3A7iciliC49Fi20yol20haritas C4B1.pdf; Erişim tarihi: 18.09.2013.
  3. Berry LJ, Osburn BI, Stott JL, Farver T, Heron B, Patton WA. Inactivated bluetongue virus vaccine in lambs: differential serological responses related to breed. Vet Res Commun. 1982; 5(3): 289-93.
  4. Dhar P, Sreenivasa BP, Barrett T, Corteyn M, Singh RP, Bandyopadhyay SK. Recent epidemiology of peste des petitis ruminants virüs (PPRV). Vet Microbiol. 2002; 88(2): 153-59
  5. Gül Y, Dabak M, İssi M, Başbuğ O. Elazığ’da 1999 yılında koyun ve keçilerde gözlenen peste des petits ruminants (ppr) olguları. F Ü Sağlık Bil Derg. 2001; 15(1): 35-38.
  6. Hu Q, W Chen, K Huang MD. Baron, Bu Z. Rescue of recombinant peste des petits ruminants virus: creation of a GFP-expressing virus and application in rapid virus neutralization test Vet. Res.2012; 43: 48. Intizar M, Ahmad MD, Anjum AA, Hanif A. Comparative efficacy of Peste des petits ruminants (PPR) vaccines available in Pakistan in sheep and goats. Pak Vet J. 2009; 29 (4): 202-205. Küçükaydın A. Ormancılık çalışması ve kıl keçisi. Orman Mühendisliği Dergisi. Nisan-Mayıs-Haziran sayısı.2005.
  7. Minet C, Yami M, Egzabhier B, Gil P, Tangy F, Bremont M, Libeau G, Diallo A, Albina E. Sequence analysis of the large (L) polymerase gene and trailer of the peste des petits ruminants virus vaccine strain Nigeria 75/1: expression and use of the L protein in reverse genetics. Virus Res.2009; 145: 9–17.
  8. Özkul A, Akça Y, Aklan F ve ark. Prevalance, Distribution and Host Range of Peste des petits ruminants virus, Turkey. Emerg Infect Dissease.2002; 8 (7): 708-711. Scott GR. Virus infections of ruminants. Peste des petitis ruminants (Goat plaque) virüs. Ed: Dinter Z, Morein B. Elsevier Science Publisher, Amsterdam. 1990; pp: 33. Siddique MP, Rahman MB, Chowdhury SMZH, Kafi MA, Alam MS. Determination of efficacy of thermostable ppr live homologous vaccine incubated at room temperature for 14 days. Bangladesh J Vet Med.2006; 4: 43-46.
  9. Stott JL, Barber TL, Osburn BI. Immunologic response of sheep to inactivated and virulent bluetongue virus. Am J Vet Res.1985; 46(5):1043-9.
  10. Tatar N, Alkan F. Koyu