Dergiler / Kocatepe Veteriner Dergisi / 2017 / Cilt: 10 - Sayı: 2

Farklı Ekilibrasyon Ortamlarının Çözüm Sonu Boğa Sperması Kalitesi Üzerine Etkisi

Effects of Different Equilibration Conditions on Cryopreserved Bovine Sperm Quality

Sayfa
57–62
Yayın Tarihi
2017-03-01
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Bu sonuçlar farklı kolullarda yapılan ekilibrasyonun çözüm sonu spermatolojik değerler üzerinde herhangi bir zararlı etkisi olmadığını göstermektedir.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Ekilibrasyon, spermanın sıcaklığının düşürüldüğü ve faz değişimlerinin meydana geldiği aşama olarak, sperma dondurulmasında en önemli basamaklardan biridir.
📊
Temel Bulgular & Veri:Bu çalışmanın amacı farklı ekilibrasyon ortamlarının toplam motilite (TMOT), progresif motilite (PMOT), spermatozoa hareket parametleri (VCL, VSL, VAP, LIN, STR, WOB, ALH, BCF), plazma membran ve akrozom bütünlüğü (PMAI) ve DNA fragmentasyon indeksi (DFI) üzerine etkisinin araştırılmasıdır.
💡
Sonuç & Katkı:Bu sonuçlar farklı kolullarda yapılan ekilibrasyonun çözüm sonu spermatolojik değerler üzerinde herhangi bir zararlı etkisi olmadığını göstermektedir.
🔬Tür:Deneysel Tarla Denemesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Boğa Sperması · CASA · Ekilibrasyon

Özet

Ekilibrasyon, spermanın sıcaklığının düşürüldüğü ve faz değişimlerinin meydana geldiği aşama olarak, sperma dondurulmasında en önemli basamaklardan biridir. Ekilibrasyonun gerçekleştirildiği ortam çoğu zaman göz ardı edilmekte, ekilibrasyon koşullarının başarısı ampirik tecrübelere dayanmaktadır. Bu çalışmanın amacı farklı ekilibrasyon ortamlarının toplam motilite (TMOT), progresif motilite (PMOT), spermatozoa hareket parametleri (VCL, VSL, VAP, LIN, STR, WOB, ALH, BCF), plazma membran ve akrozom bütünlüğü (PMAI) ve DNA fragmentasyon indeksi (DFI) üzerine etkisinin araştırılmasıdır. Çalışmada 4 baş boğadan iki kez sperma alınarak üç eşit hacme bölündü. Andromed® ile sulandırılan spermalar 24 saat 4°C’de payet içinde (Deneme 1), kapta (Deneme 2) ve çalkalayıcıda (Deneme 3) ekilibrasyona bırakıldı. Çözüm sonu sperma kalitesi TMOT, PMOT, VCL, VSL, VAP, LIN, STR, WOB, ALH, BCF, PMAI ve DFI parametreleri değerlendirilerek belirlendi. Farklı ekilibrasyon koşulları arasında, hareket özellikleri olan TMOT, PMOT, VSL, VAP, BCF ve morfolojik özellikler olan PMAI ve DFI açısından istatistiki bir farklılık bulunamadı (p>0,05). En yüksek VCL değeri Deneme 3’te, en yüksek LIN, STR, WOB ve ALH değerleri Deneme 2’de gözlendi (p<0,05). Bu sonuçlar farklı kolullarda yapılan ekilibrasyonun çözüm sonu spermatolojik değerler üzerinde herhangi bir zararlı etkisi olmadığını göstermektedir. Ayrıca boğa spermasının çalkalayıcıda ekilibre edilmesinin kap ve payet içinde ekilibre edilmesine göre spermatozoa hareket özellikleri açısından daha yararlı olduğu söylenebilir.

Abstract

Equilibration is the one of the important steps of semen cryopreservation and it is the stage in which semen is cooled and phase changes occur. The condition of equilibration is mostly regarded; and success of the equilibration conditions depend on empirical experiences. The aim of this study was to investigate the effects of three different equilibration methods on post-thaw total motility (TMOT), progressive motility (PMOT), kinetic parameters of spermatozoa (VCL, VSL, VAP, LIN, STR, WOB, ALH, BCF), plasma membrane and acrosome integrity (PMAI) and DNA fragmentation index (DFI). In each of 4 bulls; two ejaculates were split into three aliquots, diluted by Andromed® and equilibrated for 24h at 4°C in Drawed Straw (Experiment 1), Cups (Experiment 2) and Shaker (Experiment 3). After thawing, sperm quality was determined by examination of TMOT, PMOT, VCL, VSL, VAP, LIN, STR, WOB, ALH, BCF, PMAI and DFI. There were no differences (p>0.05) depending on equilibration conditions for TMOT, PMOT, VSL, VAP, BCF as kinetic parameters and for PMAI and DFI as morphological parameters. The highest VCL value was observed in experiment 3, when the highest LIN, STR, WOB and ALH values were observed in experiment 2 (p<0.05). The results show that changes in equilibrating condition have no detrimental effect on post-thaw bull semen quality. In addition, it can be said that equilibrating bull semen in a shaker presents some kinetic benefits in contrast with cup or straw equilibration methods.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

TIRPAN, M. B., OLĞAÇ, K. T., GÜRLER, H., KAYA, U. (2017). Farklı Ekilibrasyon Ortamlarının Çözüm Sonu Boğa Sperması Kalitesi Üzerine Etkisi. Kocatepe Veteriner Dergisi, Cilt: 10 - Sayı: 2, 57–62. https://ajindex.com/articles/124716

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (12)

  1. Ahmad M, Ahmad N, Riaz A, Anzar M. Sperm survival kinetics in different types of bull semen: progressive motility, plasma membrane integrity, acrosomal status and reactive oxygen species generation. Reprod Fert Develop. 2015; 27: 784-793.
  2. Aires VA, Hinsch KD, Mueller-Schloesser F, Bogner K, Mueller-Schloesser S, Hinsch E. In vitro and in vivo comparison of egg yolk-based and soybean lecithin-based extenders for cryopreservation of bovine semen. Theriogenology. 2003; 60(2): 269-279.
  3. Almadaly E, Farrag F, Shukry M, Murase T. Plasma membrane integrity and morphology of frozen-thawed bull spermatozoa supplemented with desalted and lyophilized seminal plasma. Global Veterinaria. 2014; 13: 753-766.
  4. Amirat L, Tainturier D, Jeanneau L, Thorin C, Gérard O, Courtens JL, Anton M. Bull semen in vitro fertility after cryopreservation using egg yolk LDL: A comparison with Optidyl®, a commercial egg yolk extender. Theriogenology. 2004; 61: 895-907.
  5. Anzar M, Kroetsch T, Boswall L. Cryopreservation of bull semen shipped overnight and its effect on post-thaw sperm motility, plasma membrane integrity, mitochondrial membrane potential and normal acrosomes. Animal Reproduction Science. 2011; 126: 23-31.
  6. Bailey JL, Bilodeau JF, Cormier N. Semen cryopreservation in domestic animals: A damaging and capacitating phenomenon. Journal of Andrology. 2000; 21(1): 1-7.
  7. Bochenek M, Smorag Z, Pilch J. Sperm chromatin structure assay of bulls qualified for artificial insemination. Theriogenology. 2001; 56: 557-567. D’Occhio MJ, Hengstberger KJ, Johnston SD. Biology of sperm chromatin structure and relationship to male fertility and embryonic survival. Anim Reprod Sci. 2007; 101: 1-17.
  8. Evenson D, Jost L. Sperm chromatin structure assay for fertility assessment, In: Current protocols in cytometry, Ed; Robinson JP, John Wiley & Sons, Inc., New York. 2001; pp. 1-7.
  9. Fetterolf PM, Rogers BJ. Prediction of human sperm penetrating ability using computerized motion parameters. Mol Reprod Dev, 1990; 27: 326-331.
  10. Hammerstedt RH, Graham JK, Nolan JP. Cryopreservation of mammalian sperm: What we ask them to survive. Journal of Andrology. 1990; 11(1): 73-88.
  11. Hering DM, Lecewicz M, Kordan W, Majewska A, Kaminski S. Missense mutation in glutathione-S-transferase M1 gene is associated with sperm motility and ATP content in frozen-thawed semen of Holstein- Friesian bulls. Animal Reproduction Science. 2015; 159: 94-97.
  12. Karabinus DS, Evenson DP, Jost LK, Baer RK. Comparison of semen quality in young and matur