Dergiler / Kocatepe Veteriner Dergisi / 2020 / Cilt: 13 - Sayı: 1

Hibernasyondaki Anadolu Yer Sincabı (Spermophilus xanthoprymnus) Gastrointestinal Kanalında Galektin-1 ve Galektin-3'ün Ekspresyon Paternleri

Expression Patterns of Galectin-1 and Galectin-3 in Hibernating Anatolian Ground Squirrel (Spermophilus Xanthoprymnus) Gastrointestinal Tract

Sayfa
77–85
Yayın Tarihi
2020-03-31
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Sonuç olarak hibernasyon sürecinde gastrointestinal kanaldaki hem Gal-1 hem de Gal-3 ekspresyonu hibernasyona yatmayan türlerle benzerdi.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Hibernasyon, besinin az olduğu veya hiç olmadığı uzun süreli açlık ile karakterize olan durumlarda hayatta kalma adaptasyonudur.
📊
Temel Bulgular & Veri:Uzun süreli açlık β-galaktozil bağlayan galektinler de dahil olmak üzere bir çok proteinin ekspresyonunu etkileyebilir.
💡
Sonuç & Katkı:Sonuç olarak hibernasyon sürecinde gastrointestinal kanaldaki hem Gal-1 hem de Gal-3 ekspresyonu hibernasyona yatmayan türlerle benzerdi.
🔬Tür:Araştırma Makalesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Anadolu yer sincabı · Galektin · Hibernasyon

Özet

Hibernasyon, besinin az olduğu veya hiç olmadığı uzun süreli açlık ile karakterize olan durumlarda hayatta kalma adaptasyonudur. Uzun süreli açlık β-galaktozil bağlayan galektinler de dahil olmak üzere bir çok proteinin ekspresyonunu etkileyebilir. Galektinler, β-galaktozil bağlayan proteinlerdir. Hibernasyonda Galektin-1 ve -3 (Gal-1 ve-3)’ün ekspresyonuna ilişkin herhangi bir veri bulunmamaktadır. Bu çalışmada hibernasyondaki Anadolu yer sincabı (Spermophilus xanthoprymnus) gastrointestinal kanalında Gal-1 ve 3’ün ekspresyonunun incelenmesi amaçlanmıştır. Hem gastrik lamina propria hem de ince bağırsağın villöz bağ dokusundaki bazı hücrelerde yoğun Gal-1 immün boyanması gözlendi. Gastrointestinal kanalın bütün bölümlerindeki damar duvarları, lamina muskularis ve tunika muskularisindeki düz kaslarda yoğun Gal-1 ekspresyonu gözlendi. Ayrıca kolon ve sekumda kript epiteli etrafındaki bazı bağ dokusu hücrelerinde de yoğun Gal-1 immünoreaksiyonu belirlendi. Gastrik foveoler epitel hücreleri orta derecede nükleer ve intrasitoplazmik Gal-3 immun reaksiyon gösterdi. Duodenum ve ileumun villöz epitel hücrelerinde Gal-3 immün boyaması tespit edildi. Ayrıca, kolon ve sekumdaki kriptlerin yüzey epitel hücrelerinde yoğun Gal-3 boyanması görüldü. Sonuç olarak hibernasyon sürecinde gastrointestinal kanaldaki hem Gal-1 hem de Gal-3 ekspresyonu hibernasyona yatmayan türlerle benzerdi. Gastrointestinal kanal bölümlerinde Gal-1 ekspresyonu açısından farklılık gözlenmezken, Gal-3 ekspresyonu diğer gastrointestinal bölümlere nazaran kalın bağısak epitelinde daha yoğundu.

Abstract

Hibernation is a survival adaptation characterized by extended fasting when food is less or unavailable. Prolonged fast may affects various proteins expression including galectins binding β-galactosyl. There is no data on the expression of Galectin-1 and -3 (Gal-1 and -3) during hibernation. This study aimed to examine the expression of Gal-1 and -3 in hibernating Anatolian ground squirrel (Spermophilus xanthoprymnus) gastrointestinal tract. Intense Gal-1 immunostaining was observed in some cells of both gastric lamina propria and villous connective tissue of the small intestine. In colon and cecum, intense Gal-1 immunoreaction was observed in some connective tissue cells around the crypt epithelium, as well as in the smooth muscles of vessel walls, lamina muscularis and tunica muscularis of all the regions. Gastric foveolar epithelium showed moderate nuclear and intracytoplasmic Gal-3 immunostaining. Moreover, Gal-3 immunostaining was detected in villous epithelial cells of the duodenum and ileum. Intense Gal-3 labeling also was present in all the cryptal surface epithelial cells of the colon and cecum. In conclusion, both Gal-1and Gal-3 expression in gastrointestinal tract during hibernation was similar to that of non-hibernating species. In the gastrointestinal tract, Gal-1 did not display different expression pattern, whereas Gal-3 expression was more intense in large intestine epithelium.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

ÖZBEK, M., ÖZTOP, M. (2020). Hibernasyondaki Anadolu Yer Sincabı (Spermophilus xanthoprymnus) Gastrointestinal Kanalında Galektin-1 ve Galektin-3'ün Ekspresyon Paternleri. Kocatepe Veteriner Dergisi, Cilt: 13 - Sayı: 1, 77–85. https://ajindex.com/articles/124684

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (9)

  1. Barondes SH, Castronovo V, Cooper DN, Cummings RD, Drickamer K, Feizi T, Gitt MA, Hirabayashi J, Hughes C, Kasai K, et al. Galectins: a family of animal beta-galactoside-binding lectins. Cell. 1994; 76(4): 597-598. Barondes SH. Soluble lectins: a new class of extracellular proteins. Science. 1984; 223(4642): 1259-1264.
  2. Brassart D, Kolodziejczyk E, Granato D, Woltz A, Pavillard M, Perotti F, Frigeri LG, Liu FT, Borel Y, Neeser JR. An intestinal galactose-specific lectin mediates the binding of murine IgE to mouse intestinal epithelial cells. Eur J Biochem. 1992; 203: 393-399.
  3. Brazowski E, Dotan I, Tulchinsky H, Filip I, Eisenthal A. Galectin-3 expression in pouchitis in patients with ulcerative colitis who underwent ileal pouch-anal anastomosis (IPAA). Pathol Res Pract. 2009; 205: 551-558.
  4. Camby I, Le Mercier M, Lefranc F, Kiss R. Galectin-1: a small protein with major functions. Glycobiology. 2006; 16(11): 137R-157R. Carey HV, Mangino MJ, Southard JH. Changes in gut function during hibernation: implications for bowel transplantation and surgery. Gut. 2001; 49(4): 459-461.
  5. Case D, Irwin D, Ivester C, Harral J, Morris K, Imamura M, Roedersheimer M, Patterson A, Carr M, Hagen M, Saavedra M, Crossno J Jr, Young KA, Dempsey EC, Poirier F, West J, Majka S. Mice deficient in galectin-1 exhibit attenuated physiological responses to chronic hypoxia-induced pulmonary hypertension. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 2007; 292(1): L154-164. Catt JW, Harrison FL, Carleton JS. Distribution of an endogenous beta-galactoside-specific lectin during foetal and neonatal rabbit development. J Cell Sci. 1987; 87: 623-633.
  6. Cebo C, Vergoten G, Zanetta JP. Lectin activities of cytokines: functions and putative carbohydrate-recognition domains. Biochim Biophys Acta. 2002; 1572(2-3): 422-434.
  7. Cooper DN, Barondes SH. Evidence for export of a muscle lectin from cytosol to extracellular matrix and for a novel secretory mechanism. J Cell Biol. 1990; 110: 1681-1691.
  8. Curciarello R, Steele A, Cooper D, MacDonald TT, Kruidenier L, Kudo T. The role of Galectin-1 and Galectin-3 in the mucosal immune response to Citrobacter rodentium infection. PLoS One. 2014; 9(9): e107933. Delacour D, Cramm-Behrens CI, Drobecq H, Le Bivic A, Naim HY, Jacob R. Requirement for galectin-3 in apical protein sorting. Curr Biol. 2006; 16(4): 408-414.
  9. Delacour D, Koch A, Ackermann W, Eude-Le Parco I, Elsässer HP, Poirier F, Jacob R. Loss of galectin-3 impairs membrane polarisation of mouse enterocytes in vivo. J