Dergiler / Journal of Limnology and Freshwater Fisheries Research / 2018 / Cilt: 4 Sayı: 3

Karanfil Yağı, Eugenol ve 2-Phenoxyethanol’ün Yağ Balığı Pseudophoxinus anatolicus (Hankó, 1925)’ da, Anestetik Madde Olarak Etkinliği

Efficiency of Clove Oil, Eugenol and 2-Phenoxyethanol on Giant Spring Minnow, Pseudophoxinus anatolicus (Hankó, 1925), as Anesthetic Agents

İsmail Erbatur(Su Ürünleri Araştırma Enstitüsü Müdürlüğü-Eğirdir-ISPARTA)0000-0003-1613-6650
Abdulkadir Yağcı(Su Ürünleri Araştırma Enstitüsü Müdürlüğü-Eğirdir-ISPARTA)0000-0002-7897-1734
Mustafa Ceylan(Su Ürünleri Araştırma Enstitüsü Müdürlüğü-Eğirdir-ISPARTA)0000-0002-3283-0637
Meral Apaydın Yağcı(Su Ürünleri Araştırma Enstitüsü Müdürlüğü-Eğirdir-ISPARTA)0000-0002-2108-1853
Kaya Gökçek(Mustafa Kemal University, Agriculture Faculty Animal Sciences Department Antakya-Hatay)0000-0002-7837-8009
Sayfa
177–181
Yayın Tarihi
2018-12-27
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

Sonuç olarak, her üç anestetik madde de yağ balığı yetiştiricilik uygulamalarında verimli bir şekilde kullanılabilir.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Bu çalışmada, yetiştiriciliği yapılan yağ balığı, Pseudophoxinus anatolicus (Hankó, 1925) üzerinde karanfil yağı, 2-phenoxyethanol (PE) ve eugenol’ün farklı konsantrasyonlarının etkinliği araştırılmıştır.
📊
Temel Bulgular & Veri:Bayılma sürelerine göre, en uygun konsantrasyon karanfil yağı için 125 µl L -1 (187,00 ± 62,33 s), PE için 1250 µl L -1 (174,57 ± 28,87 s) ve eugenol için 125 µl L -1 (170,00 ± 39,73 s) olarak belirlenmiştir.
💡
Sonuç & Katkı:Sonuç olarak, her üç anestetik madde de yağ balığı yetiştiricilik uygulamalarında verimli bir şekilde kullanılabilir.
🔬Tür:Laboratuvar & Saha Deneyi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Yağ balığı · karanfil yağı · 2-phenoxyethanol

Özet

Bu çalışmada, yetiştiriciliği yapılan yağ balığı, Pseudophoxinus anatolicus (Hankó, 1925) üzerinde karanfil yağı, 2-phenoxyethanol (PE) ve eugenol’ün farklı konsantrasyonlarının etkinliği araştırılmıştır. Bayılma sürelerine göre, en uygun konsantrasyon karanfil yağı için 125 µl L -1 (187,00 ± 62,33 s), PE için 1250 µl L -1 (174,57 ± 28,87 s) ve eugenol için 125 µl L -1 (170,00 ± 39,73 s) olarak belirlenmiştir. Anestetik maddelerin farklı konsantrasyonları, balıkların göstermiş olduğu fiziksel tepkiler üzerinde direk etkili olmuştur (P<0,05). PE ve eugenol’ün artan konsantrasyonlarına bağlı olarak bayılma sürelerinde düşüş ölçülse de aradaki fark istatistik açıdan önemsiz bulunmuştur (P>0,05). En kısa ayılma süreleri ise, 457,57 ± 56,38 s ile karanfil yağı (125 µl L -1 ), 338,00 ± 20,49 s ile PE (500 µl L -1 ) ve 510,17 ± 94,07 s ile eugenol (125 µl L -1 ) gruplarında ölçülmüştür. Sonuç olarak, her üç anestetik madde de yağ balığı yetiştiricilik uygulamalarında verimli bir şekilde kullanılabilir.

Abstract

In this study, the efficiency of different concentrations of clove oil, 2-phenoxyethanol (PE) and eugenol were investigated on captive-bred giant spring minnow , Pseudophoxinus anatolicus (Hankó, 1925) . According to induction time, the most optimal concentrations were found 125 µl L -1 (187.00 ± 62.33 s) for clove oil, 1250 µl L -1 (174.57 ± 28.87 s) for PE, and 125 µl L -1 (170.00 ± 39.73 s) for eugenol. Varying concentrations of the used anesthetic agents directly affected physical responses of fish (P<0.05). Although the induction times was decreased by increasing of doses in PE and eugenol, the difference was not statistically significant (P>0.05). The lowest recovery times and concentrations were 457.57 ± 56.38 s for clove oil (125 µl L -1 ), 338.00 ± 20.49 s for PE (500 µl L -1 ) and 510.17 ± 94.07 s for eugenol (125 µl L -1 ). The results suggest that all these three anesthetics can be effectively used in culture activity of giant spring minnow.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

Erbatur, İ., Yağcı, A., Ceylan, M., Yağcı, M. A., Gökçek, K. (2018). Karanfil Yağı, Eugenol ve 2-Phenoxyethanol’ün Yağ Balığı Pseudophoxinus anatolicus (Hankó, 1925)’ da, Anestetik Madde Olarak Etkinliği. Journal of Limnology and Freshwater Fisheries Research, Cilt: 4 Sayı: 3, 177–181. https://doi.org/10.17216/limnofish.443378

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (24)

  1. Akbulut B, Çavdar Y, Çakmak E, Aksungur N. 2011. Use of clove oil to anesthetize larvae of Russian Sturgeon (Acipencer gueldenstadtii). J Appl Ichthyol. 27(2):618-621. doi: 10.1111/j.1439-0426.2010.01653.x
  2. Bagheri T, Imanpour M R. 2011. The efficacy, physiological responses and hematology of Persian sturgeon, Acipencer percicus, to clove oil as an anesthetic agent. Turk J Fish Aquat Sc. 11: 477-483. doi: 10.4194/1303-2712-v11_3_20
  3. Burka JF, Hammell KL, Horsberg TF, Johnson GR, Rainnie DJ, Speare DJ. 1997. Drugs in salmonid aquaculture. J Vet Pharmacol Ther. 20(5):333-349. doi: 10.1046/j.1365-2885.1997.00094.x
  4. Gomulka E, Czerniak E, Dagowski J, Luczynski M, Szczerbowski A, Szkudlarek M. 2015. Effects of propofol and carbondioxide on acid-base balance in Siberian sturgeon. Pol J Vet Sci. 18(2):267-272. doi: 10.1515/pjvs-2015-0035
  5. Gökçek K, Öğretmen F. 2011. Comparative efficacy of three anesthetic agents in Himri Barbel, Carasobarbus luteus (Heckel, 1843) under controlled conditions. J Anim Vet Adv. 10(25):3350-3355. doi:10.3923/javaa.2011.3350.3355
  6. Gökçek K, Öğretmen F, Kanyılmaz M. 2017. Efficacy of clove oil, 2-phenoxyethanol and benzocaine on European Catfish, Silurus glanis Linnaeus 1758. Turk J Fish Aquat Sci. 16: 129-133. doi: 10.4194/1303-2712-v17_1_15
  7. Gullian M, Villanueva J. 2009. Efficacy of tricaine methanesulphonate and clove oil as anaesthetics for juvenile cobia Rachycentron canadum. Aquac Res. 40(7):852-860. doi: 10.1111/j.1365-2109.2009.02180.x
  8. Heo GJ, Shin G. 2010. Efficacy of benzocaine as an anaesthetic for Crucian carp (Carassius carassius). Vet Anaesth Analg. 37(2):132-135. doi: 10.1111/j.1467-2995.2009.00510.x
  9. Hseu JR, Yeh SL, Chu YT, Ting YY. 1998. Comparison of efficacy of five anaesthetic goldlined sea bream, Sparus sarba. Acta Zool Taiwan. 9: 35-41. IUCN 2014. Red List of Threatened Species. International Union for Conservation of Nature; [Erişim tarihi: 11.06.2018]. Erişim Adresi: http://www.iucnredlist.org/details/60810/0
  10. Iversen M, Finstad B, Mac Kinley RS, Eliiassen RS. 2003. The efficacy of metomidate, clove oil, Aqui-S and Benzoak as anaesthetics in atlanti salmon (Salmo salar L.) smolts, and their potential stress-reducing capacity. Aquaculture. 221(1-4):549-566. doi: 10.1016/S0044-8486(03)00111-x
  11. Marking LL, Meyer EP. 1985. Are better anesthetics needed in fisheries? Fisheries. 10(6):2-5. doi:10.1577/15488446(1985)010 2.0.CO;2
  12. Mylonas CC, Cardinaletti G, Sigelaki I, Polzonetti-Magni A. 2005. Comparative efficacy of clove oil and 2-phenoxyethanol as anaesthetics in aquaculture of European sea bass (Dicentrarchus labrax) and gilthead sea bream (Sparus auratus) at different temperatures. Aquaculture. 246(1-4):467-481. doi:10.1016/j.aquaculture.2005.02.046
  13. Öğretmen F, Gökçek K. 2013. Comperative efficacy of three anesthetic agents on juvenile African catfish, Clarias gariepinus (Burchell, 1822). Turk J Fish Aqaut Sci. 13: 51-56. doi: 10.4194/1303-2712-v13_1_07
  14. Öğretmen F, Gölbaşı S, Inanan BE, Kizak V, Kayım M. 2014. Use of clove oil and eugenol to anesthetize fingerling Shabut Barbus grypus. N Am J Aquacult. 76(1):9-13.doi: 10.1080/15222055.2013.824942
  15. Pawar HB, Sanaye SV, Sreepada RA, Harish V, Suryavanshi U, Ansari ZA. 2011. Comparative efficacy of four anaesthetic agents in the yellow seahorse, Hippocampus kuda (Bleeker, 1852). Aquaculture. 311(1-4):155-161.doi:10.1016/j.aquaculture.2010.12.007
  16. Ross LG, Ross B. 1999. Anesthetics and sedative techniques for aquatic animals. Oxford: Blackwell Publishing Ltd 159s.
  17. TAGEM 2016. Tarımsal Araştırma Master Planı 2016-2020, Su Ürünleri Islah ve Yetiştiriciliği. Ankara: TAGEM.
  18. TAGEM 2018. Ar-Ge Destek Programı 13. Proje Çağrısı, 2018 yılı Öncelikli Arge Konuları. Ankara: TAGEM.
  19. Theinpoint D, Niemegeers CJE. 1965. 7464- A new potenet anesthetic in fish. International Zoo. Year book 5:S 202-205. doi:10.1111/j.1748-1090.1965.tb01646.x
  20. TÜBİTAK 2015. ARDEB Su Ürünleri Çağrı Programı “GD0501 – Sürdürülebilir Su Ürünleri Yetiştiriciliği” Çağrı Metni. Ankara: TÜBİTAK Tytler P., Hawkins. A.D. 1981. Vivisection, anesthetics and minor surgery. In: Hawkins AD (ed.) Aquarium Sys. Academic Press, New York, pp.247-278.
  21. Velisek J, Wlasow T, Gomulka P, Svobodava Z, Novotny L, Ziomek A. 2006. Effects of clove oil anaesthesia on european catfish (Siluris glanis L.). Acta Vet Brno. 75(1):99-106.doi: 10.2754/avb200675010099
  22. Velisek J, Stara A, Li ZH, Silovska S, Turek J. 2011. Comparison of effects of four anaesthetics on blood chemical profiles and oxidative stress biomarkers in rainbow trout. Aquaculture. 310(3-4):369-375. doi:10.1016/j.aquaculture.2010.11.010
  23. Weber RA, Peleterio JB, Garcia Martin LO, Aldegunde M. 2009. The efficacy of 2-phenoxyethanol, metomidate, clove oil and MS-222 as anaesthetic agents in the Senegalese sole (Solea senegalensis Kaup, 1858). Aquaculture. 288(1-2):147-150. doi:10.1016/j.aquaculture.2008.11.024
  24. Zahl IH, Samuelsen O, Kiessling A. 2012. Anesthesia of farmed fish: implications for welfare. Fish Physiol Biochem. 38(1):201-218. doi: 10.1007/s10695-011-9565-1