KaydedilenlerDerginizi ekleyin

Dergiler / Tarım Bilimleri Araştırma Dergisi / 2018 / Cilt: 11 Sayı: 2

Farklı Keçiboynuzu (Ceratonia siliqua L.) Genotiplerinin Klasik ve Yeni Nesil Doku Kültürü Teknikleriyle Mikroçoğaltımı

Micropropagation of Different Carob (Ceratonia siliqua L.) Genotypes by Classical and New Generation Tissue Culture Techniques

Mustafa Alparslan UMARUSMAN
Yıldız AKA KAÇAR
Sayfa
37–44
Yayın Tarihi
2018-12-31
DOI
—
🏛️Bu makalenin bibliyografik verileri ve tam metin bağlantısı DergiPark üzerinden sağlanmıştır.
DergiPark Kaydı ↗
✨

Yapay Zeka Hızlı Bakış & Çıkarımlar

AI Insight
⚡ TL;DR(1 Cümlede Hızlı Çıkarım)

SSR markırları ile yapılan tarama sonucunda katı kültür ortamı ve Plantform sisteminde çoğaltılan bitkilerde herhangi bir genetik açılımın olmadığı tespit edilmiştir.

📌 3 Maddede Bu Makale

🎯
Amaç & Hipotez:Bu çalışmada, Akdeniz Bölgesinde doğal olarak yayılım gösteren üç farklı keçiboynuzu genotipinin Plantform biyoreaktör sistemi ve katı besin ortamlarında karşılaştırmalı olarak mikroçoğaltım çalışmaları yürütülmüştür.
📊
Temel Bulgular & Veri:İlk olarak genotiplerin katı kültür mikroçoğaltım denemelerinde, MS, ½ MS ve WPM besin ortamları ile BA (0, 0.5, 1.0, 1.5, 2.0 mg/L) ve GA3 (0.1, 0.5 mg/L) bitki büyüme düzenleyicileri uygulanmıştır.
💡
Sonuç & Katkı:SSR markırları ile yapılan tarama sonucunda katı kültür ortamı ve Plantform sisteminde çoğaltılan bitkilerde herhangi bir genetik açılımın olmadığı tespit edilmiştir.
🔬Tür:Deneysel Tarla Denemesi
📍Kapsam:Genişletilmiş Akademik Örneklem
⚙️Değişkenler:Plantform Geçici Daldırmalı Biyoreaktör Sistem · WPM · Keçiboynuzu

Özet

Bu çalışmada, Akdeniz Bölgesinde doğal olarak yayılım gösteren üç farklı keçiboynuzu genotipinin Plantform biyoreaktör sistemi ve katı besin ortamlarında karşılaştırmalı olarak mikroçoğaltım çalışmaları yürütülmüştür. İlk olarak genotiplerin katı kültür mikroçoğaltım denemelerinde, MS, ½ MS ve WPM besin ortamları ile BA (0, 0.5, 1.0, 1.5, 2.0 mg/L) ve GA3 (0.1, 0.5 mg/L) bitki büyüme düzenleyicileri uygulanmıştır. En yüksek mikroçoğaltım değerleri, MS ve ½ MS besin ortamlarından ve 0.5 ve 2 mg/L BA+0.5 mg/L GA3 bitki büyüme düzenleyici konsantrasyonlarından elde edilmiştir. Mikroçoğaltım için belirlenen en iyi besin ortamı içeriği ile Plantform sisteminde çalışılmıştır. Çalışma neticesinde, Plantform sistemi her üç keçiboynuzu genotipi için bitki boyu, çoğalma katsayısı ve bitki kalitesi bakımından katı kültür sistemine göre daha iyi sonuç vermiştir. SSR markırları ile yapılan tarama sonucunda katı kültür ortamı ve Plantform sisteminde çoğaltılan bitkilerde herhangi bir genetik açılımın olmadığı tespit edilmiştir.

🔖

Bu Makaleye Atıf Yap

UMARUSMAN, M. A., KAÇAR, Y. A. (2018). Farklı Keçiboynuzu (Ceratonia siliqua L.) Genotiplerinin Klasik ve Yeni Nesil Doku Kültürü Teknikleriyle Mikroçoğaltımı. Tarım Bilimleri Araştırma Dergisi, Cilt: 11 Sayı: 2, 37–44. https://ajindex.com/articles/1006781

📄 Tam Metin PDF Okuyucu

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

Kaynakça (15)

  1. Tunalıoğlu, R., Özkaya, M.T., 2003. Keçiboynuzu. Tarımsal Ekonomi
  2. Ahraz A., 2003. Locust Bean Gum (Keçiboynuzu Zamkı) E-410’un Türkiye’de Üretimi. Gıda Teknolojisi, 7, 36-37
  3. Anonim, 2017. Food and Agriculture Organization of The United Nations Database. http://www.fao.org/home/en/, Erişim Tarihi: 15.11.2018
  4. Anonim. 2017. Ulusal Gıda Kompozisyon Veri Tabanı
  5. Takayama, S., Misawa, M., 1981. Mass propagation of Begonia x hiemalis plantlets by shake culture. Plant Cell Physiol. 22: 461-467
  6. Etienne, H., Berthouly, M., 2002. Temporary immersion systems in plant micropropagation. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 69.3: 215-231
  7. Etienne, H., Berthouly, M., 2006. Bioreactors in coffee micropropagation. Brazilian Journal of Plant Physiology, 18.1: 45-54
  8. Şimşek, Ö., Kanat, F. E., Serçe, S., & Kaçar, Y. A., 2008. Bazı Meyve Türlerinde DNA İzolasyon Yöntemlerinin Etkinliğinin Karşılaştırılması. Derim, 25(1), 59-69
  9. Malfa, S., Currò, S., Douglas, A. B., Brugaletta, M., Caruso, M., Gentile, A., 2014. Genetic diversity revealed by EST-SSR markers in carob tree (Ceratonia siliqua L.). Biochemical Systematics and Ecology, 55, 205-211
  10. Cengiz, M., 2018. Bazı Turunçgil Genotiplerinin Klasik ve Yeni Nesil Doku Kültürü Teknikleri ile Mikroçoğaltımı ve Genetik kararlılığının Belirlenmesi. Çukurova Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü Yüksek Lisans Tezi
  11. Yenice, Z., 2010. Geçici Daldırma Sistem Biyoreaktörlerle Su Mercimeği (Lemna minor L.) Bitkisinin In vıtro Çoğaltımı. Ankara Üniversitesi Biyoteknoloji Enstitüs Yüksek Lisans Tezi
  12. Welander, M., Persson, J., Asp, H., Zhu, L. H., 2014. Evaluation of a New Vessel System Based on Temporary Immersion System for Micropropagation. Scientia Horticulturae, 179:227-232
  13. Gatti, E., Ozudogru, A., Lambardi, M., and Sgarbi, E., 2015. Comparison between a conventional culture system and Plantform bioreactor in Quercus robur micropropagation. 6th International Symposium on Production a Establishment of Micropropagated Plants Abstract Book
  14. Benelli, C., Fernanda, C. M., De Carlo, A., 2015. Plant Form, a temporary immersion system, for in vitro propagation of Myrtus communis and Olea europaea. 6th International Symposium on Production and Establishment of Micropropagated Plants Abstract Book
  15. Lambardi, M., Roncasaglia, R., Bujasha, D., Baileiro, F., Correira Da Silva, D. P., Ozudogru, E. A., 2015. Improvement of shoot proliferation by liquid culture in temporary immersion