Journals / Acta Veterinaria Eurasia / 2007 / Cilt: 33 Sayı: 1

ERİTİLMİŞ KOÇ SPERMASINDA FARKLI GLİSEROL KATMA TEKNİKLERİNİN VE SOĞUTMA HIZININ SPERMATOLOJİK ÖZELLİKLERE ETKİSİ

Pages
11–21
Publication Date
2012-11-26
DOI
—
🏛️Bibliographic metadata and full text access for this article are provided via DergiPark.
DergiPark Record ↗
✨

AI Summary & Key Takeaways

AI Insight
⚡ TL;DR(Too Long; Didn't Read)

Sunulan çalışmada (1) 1:1/2 sulandırma oranında 30°C’den 5°C’ye soğuma aşamasında ortamda gliserol varlığının, eritme sonrası motiliteye zarar verdiği, (2) bu zararın iki-kademeli soğutma tekniği ile azaldığı sonuçlarına varılmıştır.

📌 3 Key Takeaways

🎯
Objective & Hypothesis:Sunulan çalışmada spermaya gliserolün farklı ısılarda eklenmesi ve spermanın farklı hızlarda soğutulmasının, koçlarda donma sonrası spermatolojik özelliklere nasıl etkilediği araştırıldı.
📊
Key Findings & Data:Üç-beş yaşlarında 10 baş Kıvırcık ırkı koçun spermaları alınarak pooling yapıldı ve sulandırılarak payetlerde donduruldu.
💡
Conclusion & Impact:Sunulan çalışmada (1) 1:1/2 sulandırma oranında 30°C’den 5°C’ye soğuma aşamasında ortamda gliserol varlığının, eritme sonrası motiliteye zarar verdiği, (2) bu zararın iki-kademeli soğutma tekniği ile azaldığı sonuçlarına varılmıştır.
🔬Design:Lab & Field Experiment
📍Scope:Comprehensive Sample
⚙️Variables:Koç Sperması · Soğutma Hızı · Sulandırma Tekniği

Özet

Sunulan çalışmada spermaya gliserolün farklı ısılarda eklenmesi ve spermanın farklı hızlarda soğutulmasının, koçlarda donma sonrası spermatolojik özelliklere nasıl etkilediği araştırıldı. Üç-beş yaşlarında 10 baş Kıvırcık ırkı koçun spermaları alınarak pooling yapıldı ve sulandırılarak payetlerde donduruldu. Spermanın tek aşamada (30°C) veya iki aşamada (30°C’de ve 5°C’de) sulandırılması ve 5°C’ye yavaş ( < 0.2°C/dakika) ve iki-kademeli (30°C’den 16°C’ye < 2°C/dakika ve 16°C’den 5°C’ye < 0.2/dakika) soğutma tekniklerine göre 6 grup oluşturuldu: Sperma 30°C’de gliserol içermeyen sulandırıcı A ile sulandırıldı ve 5°C’ye yavaş (1. grup) ve iki-kademeli (2. grup) soğutuldu ve B sulandırıcısı ilave edildi. Yine sperma 30°C’de %2 gliserol içeren sulandırıcı A ile sulandırıldı ve 5°C’ye yavaş (3. grup) ve iki-kademeli (4. grup) soğutuldu. Diğer gruplarda, sulandırma işlemi sulandırıcı A ve B ile 30°C’de tamamlandı ve 5°C’ye yavaş (5. grup) ve iki-kademeli (6. grup) soğutuldu. Örnekler, ekilibrasyon sonrası payetlerde donduruldu. Spermatolojik incelemeler (motilite, akrozomal ve toplam morfolojik bozukluklar), sulandırma sonrası (1. aşama), 5°C’ ye soğutma sonrası (2. aşama), ekilibrasyon sonrası (3. aşama) ve eritme sonrası (4. aşama) gerçekleştirildi. Sunulan çalışmada (1) 1:1/2 sulandırma oranında 30°C’den 5°C’ye soğuma aşamasında ortamda gliserol varlığının, eritme sonrası motiliteye zarar verdiği, (2) bu zararın iki-kademeli soğutma tekniği ile azaldığı sonuçlarına varılmıştır.

🔖

Cite This Article

BACINOĞLU, S., CİRİT, Ü., NUR, Z., AK, K. (2012). ERİTİLMİŞ KOÇ SPERMASINDA FARKLI GLİSEROL KATMA TEKNİKLERİNİN VE SOĞUTMA HIZININ SPERMATOLOJİK ÖZELLİKLERE ETKİSİ. Acta Veterinaria Eurasia, Cilt: 33 Sayı: 1, 11–21. https://ajindex.com/articles/981107

📄 Full Text PDF Viewer

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

References (1)

  1. Abdelhakeam, A.A., Graham, E.F and Vazquez, I.A. Studies on the presence and absence of glycerol in unfrozen ram semen: Fertility trials and the effects of dilution methods on freezing ram semen in the absence of glycerol. Cryobiology, 1991; 28: 36-42. 2 Ak, K., Ak, S., Gürel, A., Hasöksüz, M ve Baran, A. Koçlarda mycoplasma agalactiae’nin spermatolojik özelliklere etkisi üzerine deneysel araştırmalar. Pendik Vet Mikrobiyol Derg, 1995; 26 (2): 139-155. 6 Anel, L., dePaz, P., Alverez, M., Chomoro., C.A., Boixo, J.C., Manso, A et al. Field and invitro assay of three methods for freezing ram semen. Theriogenology, 2003: 60: 1293- 1308. 10 Colas, G. Effect of initial freezing temperature, addition of glycerol and dilution on the survival and fertilizing ability of deep frozen ram semen. J Reprod Fertil, 1975; 42: 277-285. 19 Correa, J.R., Rodriquez, M.C., Patterson, D.J and Zavos, P.M. Thawing and processing of cryopreserved bovine spermatozoa at various temperatures and their effects on sperm viability, osmotic shock and sperm membrane functional integrity. Theriogenology, 1996; 46 (3): 413-420. 20 Critser, J.K., Huse-Benda, A.R., Aaker, D.V., Arneson, B.W and Ball, G.D. Cryopreservation of human spermatozoon ΠІ:The effect of cryoprotectants on motility. Fertil Steril, 1988; 50 (2): 314-320. 21 Curry, M.R., Millar, J.D and Watson, P.F. Calculated optimal cooling Rates for Ram and Human Sperm Cryopreservation fail to conform with Empirical observations. Biol Reprod, 1994; 51: 1014-1021. 22 Curry, M.R., Kleinhans, F.W and Watson, P.F. Measurement of water permeability of the membrane of boar, ram and rabbit spermatozoon using concentration dependent self quenching of an entrapped fluorophore. Cryobiology, 2000; 41: 167-173. 24 D’Allessandro, A.G.D., Martemucci, G., Collanna, M.A and Bellini, A. Post thaw survival of ram spermatozoon and fertility after insemination as affected by prefreezing sperm concentration and extender composition. Theriogenology, 2001; 55: 1159-1170. 25 D’Alessandro, A.G and Martemucci,G. Post-thaw survival and acrosome integrity of spermatozoa of Leccese rams frozen in different seasons with a milk-egg yolk extender.Italian J Anim Sci, 2005; 4: 139-148. 26 El-Alamy, M.A and Foote, R.H. Freezaability of spermatozoon from Finn and Dorset rams in multiple extenders. Anim Reprod Sci, 2001; 65: 245-254. 31 Evans, G and Maxwell, W.M.C. Salamon’s Artificial Insemination of Sheep and Goats. Sydney; Butterworths, 1987; 19: 91-141. 34 Fahy, G.M.