Farklı Konsantrasyonlarda ve Sürelerde Sodyum Hipoklorid (NaOCl) Uygulamasının Pancratium maritimum L. Soğanlarının Yüzey Sterilizasyonu Üzerine Etkileri
Sodyum hipoklorid konsantrasyonu ve uygulama süresi arttıkça soğanların yüzey sterilizasyonu artmış ancak soğanların pul yapraklarındaki deformasyon oranı da bu artışa bağlı olarak artmıştır.
📌 3 Key Takeaways
🎯
Objective & Hypothesis:Akdeniz’e kıyısı olan ülkelerin kumul kıyılarında doğal olarak yetişen kum zambakları (Pancratium maritimum L.), Amaryllidaceae familyası üyelerindendir.
📊
Key Findings & Data:Bu çalışmada Pancratium maritimum L. soğanları % 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10 oranında sodyum hipoklorid (NaOCl) çözeltisi içerisinde 15, 20, 25, 30, 35 dakika bekletildikten sonra soğanlarda meydana gelen deformasyon oranı % cinsinden hesaplanmış, bekleme süresinin ardından soğanlar 3 defa 5’er dakika süre ile steril distile saf sudan geçirilerek hormon içermeyen MS besin ortamına aktarılmış, 10 gün sonra MS besin ortamında meydana gelen kontaminasyon oranları % cinsinden belirlenmiştir. % 2 ve 3 oranında sodyum hipoklorid çözeltisi içerisinde bekletilen soğanlarda deformasyon gözlenmezken, %100 oranında kontaminasyon tespit edilmiştir.
💡
Conclusion & Impact:Sodyum hipoklorid konsantrasyonu ve uygulama süresi arttıkça soğanların yüzey sterilizasyonu artmış ancak soğanların pul yapraklarındaki deformasyon oranı da bu artışa bağlı olarak artmıştır.
🔬Design:Research Article
📍Scope:Comprehensive Sample
⚙️Variables:Domain Parameters
Özet
Akdeniz’e kıyısı olan ülkelerin kumul kıyılarında doğal olarak yetişen kum zambakları (Pancratium maritimum L.), Amaryllidaceae familyası üyelerindendir. Bu çalışmada Pancratium maritimum L. soğanları % 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10 oranında sodyum hipoklorid (NaOCl) çözeltisi içerisinde 15, 20, 25, 30, 35 dakika bekletildikten sonra soğanlarda meydana gelen deformasyon oranı % cinsinden hesaplanmış, bekleme süresinin ardından soğanlar 3 defa 5’er dakika süre ile steril distile saf sudan geçirilerek hormon içermeyen MS besin ortamına aktarılmış, 10 gün sonra MS besin ortamında meydana gelen kontaminasyon oranları % cinsinden belirlenmiştir. % 2 ve 3 oranında sodyum hipoklorid çözeltisi içerisinde bekletilen soğanlarda deformasyon gözlenmezken, %100 oranında kontaminasyon tespit edilmiştir. En etkili yüzey sterilizasyonu %5-6 oranında sodyum hipoklorid çözeltisi içerisinde 30 ve 35 dakika bekletilerek sağlanmıştır. Sodyum hipoklorid konsantrasyonu ve uygulama süresi arttıkça soğanların yüzey sterilizasyonu artmış ancak soğanların pul yapraklarındaki deformasyon oranı da bu artışa bağlı olarak artmıştır.
🔖
Cite This Article
ÖZDEMİR, F. A., YILDIRIM, M. U., KILIÇ, Ö. (2016). Farklı Konsantrasyonlarda ve Sürelerde Sodyum Hipoklorid (NaOCl) Uygulamasının Pancratium maritimum L. Soğanlarının Yüzey Sterilizasyonu Üzerine Etkileri. Bitlis Eren Üniversitesi Fen Bilimleri Dergisi, Cilt: 5 Sayı: 2, 1–1. https://ajindex.com/articles/919533
Bastida J, Lavilla R, Viladomat F, 2006. Chemical and biological aspects of Narcissus alkaloids. In: Cordell GA (ed) The alkaloids, vol 63. Elsivier Scientific, Amsterdam, 87–179 p. Baytop T, 1984. Türkiye’de bitkiler ile tedavi (Geçmişte ve Bugün). İstanbul Üniversitesi Yayınları: 3255, Eczacılık Fakültesi Yayınları: 40, 520, İstanbul.
Berkov S, Bastida J, Sidjimova B, Viladomat F, Codina C, 2008. Phytochemical differentiation of Galanthus nivalis and Galanthus elwesii (Amaryllidaceae): a case study. Biochemical Systematics Ecology, 36: 638–645.
Chengalrayan KAA, Gallo-Meagher M, 2005. In vitro regeneration of plants from sugarcane seed-derived callus. In vitro Cellular & Developmental Biology Plant, 41: 477-482.
Chun SC, Schneider RW, Cohn MA, 1997. Sodium hypochlorite: Effect of solution pH on rice seed disinfestations and its direct effect on seedling growth. Plant Disease, 81: 821-824. Davis PH, 1984. Flora of Turkey and East Aegean Islands, University Press, Edinburgh: 8. Di Maio A, De Castro O, 2013. Development and characterization of 21 microsatellite markers for Pancratium maritimum L. (Amaryllidaceae). Conservation Genetic Resources, 5 (4): 911-914.
Dodds JH, Roberts LW, 1985. Experiments in plant tissue culture. 2nd Edn., Cambridge Univ. Press.
Cambridge, UK, 232. Dothan NF, 1986. Flora Palaestina. Israel Academy of Sciences and Humanities, Jerusalem, Israel, 4:162-163,
Eisikowitch D, Galil J, 1971. Effect of wind on the pollination of Pancratium maritimum L. (Amaryllidaceae) by Hawkmoths (Lepidoptera: Sphingidae). Journal of Animal Ecology, 40 (3): 673-678.
Hannerty MJ, Upton ME, Harris DP, Eaton RA, James DJ, 1988. Microbial contamination of in vitro cultures of apple rootstocks M26 and M9. Acta Horticulturae, 225: 129-139. Kane M, 2003. Bacterial and fungal indexing of tissue cultures. http://plant-tc.cfans.umn.edu/listserv/1996/log9612/idexing.htm. Karaoğlu C, 2010. Soğanlı bitkiler ve in vitro hızlı çoğaltım. Tarla Bitkileri Merkez Araştırma Enstitüsü Dergisi, 19 (2): 24-29. Khawar KM, 2001. Mercimek (Lens culinaris Medik)’te doku kültürü çalışmaları ve Agrobacterium tumefaciens aracılığıyla gen aktarımı. Doktora tezi, Ankara Üniversitesi,
Fen Bilimleri Enstitüsü, Ankara.
Leifert C, Waites WM, Nicholas JR, 1989. Bacterial contaminants of micropropagated plant cultures. Journal of Applied Bacteryology, 67: 353-361.
Maelicke A, Samochocki M, Jostok R, Feherbacker A, Lu