Journals / Türkiye Parazitoloji Dergisi / 2013 / Cilt: 37 - Sayı: 3

Demonstration of Cryptosporidium parvum in immune suppressed Rats using Nested PCR

İmmun sistemi baskılanmış sıçanlarda Cryptosporidium parvum’un nested PZR yöntemi ile gösterilmesi

Pages
165–168
Publication Date
2022-11-05
DOI
—
🏛️Bibliographic metadata and full text access for this article are provided via DergiPark.
DergiPark Record ↗
✨

AI Summary & Key Takeaways

AI Insight
⚡ TL;DR(Too Long; Didn't Read)

In addition, Nested PCR targeting 18S small-subunit rRNA gene can be used to detect Cryptosporidium spp. in respiratory and stool specimens of animals and humans. (Turkiye Parazitol Derg 2013; 37: 165-8)

📌 3 Key Takeaways

🎯
Objective & Hypothesis:Objective: In the present study, the aim is to demonstrate Cryptosporidium parvum 18S small-subunit rRNA gene, in lung and stool samples of immune suppressed rats.
📊
Key Findings & Data:Methods: Three groups (n=4) of Rattus norvegicus rats were used.
💡
Conclusion & Impact:In addition, Nested PCR targeting 18S small-subunit rRNA gene can be used to detect Cryptosporidium spp. in respiratory and stool specimens of animals and humans. (Turkiye Parazitol Derg 2013; 37: 165-8)
🔬Design:Research Article
📍Scope:2013 Verileri
⚙️Variables:Domain Parameters

Abstract

Objective: In the present study, the aim is to demonstrate Cryptosporidium parvum 18S small-subunit rRNA gene, in lung and stool samples of immune suppressed rats. This gene region is specific for Cryptosporidium spp. and thus can be used in humans for routine diagnostic procedures. Methods: Three groups (n=4) of Rattus norvegicus rats were used. The first and second groups were administered dexamethasone, subcutaneously and orally, respectively, for 12 weeks. Rats in the control group were not immune suppressed. Lung and stool specimens were obtained from rats at the end of 12th week and examined for the presence of C. parvum DNA using Nested PCR. Results: C. parvum DNA was demonstrated in lung and stool samples of rats which were immune suppressed by oral dexamethasone. On the other hand, C. parvum DNA was demonstrated only in stool specimens of the rats which were immune suppressed by subcutaneous dexamethasone. No band pattern was observed in the specimens of the control group. Conclusion: The results of the study showed that oral dexamethasone administration was more efficient in generating disseminated cryptosporidiosis in rats compared to subcutaneous dexamethasone administration. In addition, Nested PCR targeting 18S small-subunit rRNA gene can be used to detect Cryptosporidium spp. in respiratory and stool specimens of animals and humans. (Turkiye Parazitol Derg 2013; 37: 165-8)

Özet

Amaç: Bu çalışmada immun sistemi baskılanmış sıçanların dışkı ve akciğer örneklerinde Nested PZR ile Cryptosporidium parvum 18S small- subunit rRNA geninin gösterilmesi amaçlanmıştır. Bu gen bölgesi Cryptosporidium spp. için özgün olup, insanlardaki rutin enfeksiyonun tanısında kullanılabilmektedir. Yöntemler: Bu çalışmada üç grup (n=4) Rattus norvegicus türü sıçan kullanılmıştır. Birinci ve ikinci grup sıçanların immun sistemlerinin baskılanması için sırasıyla deri altından ve ağızdan 12 hafta boyunca deksametazon uygulanmıştır. Kontrol grubuna herhangi bir ilaç uygulanmamıştır. İmmun sistemi baskılanmış ve kontrol grubu sıçanlardan 12. hafta sonunda alınan akciğer ve dışkı örneklerinde Nested PZR ile C. parvum varlığı araştırılmıştır. Bulgular: Ağızdan deksametazon uygulanan grubun dışkı ve akciğer örneklerinde C. parvum DNA’sı saptanmıştır. Buna karşın deri altından deksametazon uygulanan sıçan grubunun yalnızca dışkı örneklerinde C. parvum DNA’sı saptanmıştır. Kontrol grubu sıçanlarda herhangi bir bant paterni saptanmamıştır. Sonuç: Bu çalışma sıçanlarda ağızdan deksametazon uygulamasının, deri altından uygulamaya göre daha yaygın cryptosporidiosis oluşumuna sebep olduğunu göstermiştir. Ayrıca immun sistemi baskılanmış hayvan veya insanlara ait dışkı ve solunum örneklerinde 18S small-subunit rRNA genine özgü Nested PZR testinin Cryptosporidium spp. tanısındaki etkinliği gösterilmiştir. (Turkiye Parazitol Derg 2013; 37: 165-8)

🔖

Cite This Article

DÖŞKAYA, M., CANER, A., GÜRÜZ, Y., DEĞİRMENCİ, A., CAN, H., KARAÇALI, S., ÜNER, A. (2022). Demonstration of Cryptosporidium parvum in immune suppressed Rats using Nested PCR. Türkiye Parazitoloji Dergisi, Cilt: 37 - Sayı: 3, 165–168. https://ajindex.com/articles/630368

📄 Full Text PDF Viewer

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

References (1)

  1. Xiao L, Feng Y. Zoonotic cryptosporidiosis. FEMS Immunol Med Microbiol 2008; 52: 309-23. [CrossRef] 2. Glaberman S, Moore JE, Lowery CJ, Chalmers RM, Sulaiman I, Elwin K,et al. Three drinking-water-associated cryptosporidiosis outbre- aks, Northern Ireland. Emerg Infect 2002; 8: 631-3. [CrossRef] 3. Gordon J Leitch, Qing He. Cryptosporidiosis-an overview. J Biomed Res 2012; 25: 1-16. [CrossRef] 4. Xiao L, Ryan UM. Cryptosporidiosis: an update in molecular epide- miology. Curr Opin Infect Dis 2004; 17: 483-90. [CrossRef] 5. Hunter PR, Thompson RC. The zoonotic transmission of Giardia and Cryptosporidium. Int J Parasitol 2005; 35: 1181-90. [CrossRef] 6. Hadfield SJ, Robinson G, Elwin K, Chalmers RM. Detection and diffe- rentiation of Cryptosporidium spp. in human clinical samples by use of real-time PCR. J Clin Microbiol 2011; 49: 918-24. [CrossRef] 7. Üner A, Tanrıverdi S, Caner A, Değirmenci A. Cryptosporıdium’larda Moleküler Biyolojik Yapı ve Çalışmalar. Editörler, Özcel M.A, Tanyüksel M, Eren H. Moleküler Parazitoloji. İzmir: Türkiye Parazitoloji Derneği Yayın No: 22. 2009.s.631-43. 8. Ok ÜZ, Girginkardeşler N, Kilimcioğlu A, Limoncu E. Diğer Tanı Materyalleri ve Uygun Tanı Parazit Hastalıklarında Tanı. Editörler, Özcel, M.A. ve Altıntaş, N.İzmir. Türkiye Parazitoloji Derneği Yayın no: 15. 1997.s.1-148. 9. Stroup SE, Roy S, Mchele J, Maro V, Ntabaguzi S, Siddique A. et al. Real-time PCR detection and speciation of Cryptosporidium infection using Scorpion probes. J Med Microbiol 2006; 55: 1217-22. [CrossRef] 10. Xiao L, Singh A, Limor J, Graczyk TK, Gradus S, Lal A. Molecular characterization of cryptosporidium oocysts in samples of raw surfa- ce water and wastewater. Appl Environ Microbiol 2001; 67: 1097- 101. [CrossRef] 11. Xiao L, Escalante L, Yang C, Sulaiman I, Escalante AA, Montali RJ, et al. Phylogenetic analysis of Cryptosporidium parasites based on the small-subunit rRNA gene locus. Appl Environ Microbiol 1999; 65: 1578-83. 12. Xiao L. Molecular epidemiology of cryptosporidiosis: an update. Exp Parasitol 2010; 124: 80-9. [CrossRef] 13. Üner A, İnceboz T, Uysalcı M, Dağcı H. Immune Deficiency and Cryptosporidiosis in Rats. Turk J Vet Anim Sci 2003; 27: 1187-91. 14. Üner A, Tappeh KH, Gürüz Y, Özbilgin A. Sıçanlarda Deneysel Olarak Pneumocystis carinii infeksiyonu geliştirilmesi. Türkiye Parazitol Derg 1994; 18: 291-5. 15. Dei-Cas E, Brun-Pascaud M, Bille-Hansen V. XX. Animal models of pneu- mocystosis. FEMS Immunol Med Microbiol 1998; 22: 163-8