Journals / Türkiye Parazitoloji Dergisi / 2013 / Cilt: 37 - Sayı: 3

Comparison of direct microcopy and antigen casette tests for the detection of giardia and cryptosporidium

Giardia ve cryptosporidium tanısında direkt mikroskobi ve antijen tarama testlerinin karşılaştırılması

Pages
169–173
Publication Date
2022-11-05
DOI
—
🏛️Bibliographic metadata and full text access for this article are provided via DergiPark.
DergiPark Record ↗
✨

AI Summary & Key Takeaways

AI Insight
⚡ TL;DR(Too Long; Didn't Read)

Considering the cost of antigen tests, direct microscopic examination is cheaper, andeasier when it used by an experienced person.

📌 3 Key Takeaways

🎯
Objective & Hypothesis:Objective: The aim of this study was to compare the direct microscopy used for detection of intestinal parasites with antigen casette tests used in diagnosis of giardiasis and crypyosporidiasis.
📊
Key Findings & Data:Results: The mean age of the children enrolled in this study was 8.61±3.45 and the distribution of gender was 24 female (52.2%), 22 male (47.8%), respectively.
💡
Conclusion & Impact:Considering the cost of antigen tests, direct microscopic examination is cheaper, andeasier when it used by an experienced person.
🔬Design:Research Article
📍Scope:46 samples
⚙️Variables:Domain Parameters

Abstract

Objective: The aim of this study was to compare the direct microscopy used for detection of intestinal parasites with antigen casette tests used in diagnosis of giardiasis and crypyosporidiasis. Methods: Forty-six children who lived in the Şanlıurfa Orphanage were enrolled in this study. The stool specimens were taken in the morning and examined by using native-lugol, modified formalin-ethylacetate concentration methods and cellophane tape method on the same day at the Microbiology laboratory of Harran University. Also Kinyoun-acid fast stained preparations were used for the detection of Cryptosporidium. R-biopharm Cryptosporidium/Giardia casette antigen test was used for the determinaton of giardiasis and crytosporidiasis. Results: The mean age of the children enrolled in this study was 8.61±3.45 and the distribution of gender was 24 female (52.2%), 22 male (47.8%), respectively. According to stool examinations, 9 of 46 examples (19.60%) were determined as Giardia intestinalis, Cryptosporidium spp. had never been found. The result of the antigen screening casette test showed 9 of 46 samples (19.60%) were positive for G. intestinalis. Also Cryptosporidium spp. had never been found by the antigen casette test. Conclusion: When we compared the results of the direct microscopy and antigen casette tests, we found no significant difference between them for test reliability (p>0.05). Antigen tests have higher sensitivity (100%) and specifity (100%) than the modified acid-fast staining technique, therefore, it is a preferred reference method . However, an experienced staff working accurately might access the same conclusion. Considering the cost of antigen tests, direct microscopic examination is cheaper, andeasier when it used by an experienced person.

Özet

Amaç: Çalışmamızda cryptosporidiosis ve giardiasis tanısında kullanılan antijen tarama testleriyle bağırsak parazitlerinin tanısında kullanılan direkt mikroskopinin karşılaştırılması hedeflenmiştir. Yöntemler: Çalışmaya Şanlıurfa Çocuk Esirgeme Kurumu’nda yaşayan 46 çocuk katılmıştır. Örnekler sabah alınıp bekletilmeden Harran Üniversitesi Tıp Fakültesi Mikrobiyoloji Laboratuarı’na getirilerek nativ, lugol ve çöktürme yöntemleri uygulanmıştır. Örnekler aynı zamanda Kinyoun asit-fast boyama yöntemi kullanılarak Cryptosporidium spp. açısından incelenmiştir. Cyptosporidiazis ve giardiazisin tanısında antijen tarama testi olarak r-biopharm Cryptosporidium/Giardia kaset antijen testi kullanılmıştır. Bulgular: Çalışmaya dahil edilen çocukların yaş ortalaması 8,61±3,45, cinsiyet dağılımı 24 kız (%52,2), 22 erkek (%47,8) olarak bulunmuştur. Direk mikroskobide, çalışmaya katılan 46 örnekten 9’unda (%19,60) G. intestinalis saptanırken, Cryptosporidium spp.’ye rastlanamamıştır. Yapılan antijen tarama testi sonucunda da 46 örneğin 9’unda (%19,60) G. intestinalis pozitifliği saptanmıştır. Direk mikroskobiyle G. intestinalis saptanmayan örneklerde, antijen tarama testi ile de G. intestinalis pozitifliği saptanmamıştır. Antijen tarama testlerinde 46 örneğin hiçbirinde Cryptosporidium spp.’ye, rastlanmamıştır. Sonuç: Çalışma sonunda direk mikroskopi ile antijen tarama testlerinin karşılaştırılmasında; testlerin güvenilirlikleri açısından anlamlı bir fark görülmemiştir (p>0,05). Antijen tarama testleri, modifiye asit-fast boyama tekniğine göre daha yüksek hassasiyet (%100) ve özgüllüğe (%100) sahip olması nedeniyle en tercih edilen referans yöntem olmasının yanı sıra deneyimli bir personel de hassas çalıştığında, aynı sonuca ulaşabilmektedir. Hazır testlerin maliyeti göz önüne alınırsa, deneyimli bir personel ile direk mikroskobiyle inceleme yapmak daha ucuz ve kolay görünmektedir.

🔖

Cite This Article

YILDIZ, F. Z., YENTÜR, N. D., GÜRSES, G., TÜMER, S. (2022). Comparison of direct microcopy and antigen casette tests for the detection of giardia and cryptosporidium. Türkiye Parazitoloji Dergisi, Cilt: 37 - Sayı: 3, 169–173. https://ajindex.com/articles/630330

📄 Full Text PDF Viewer

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

References (2)

  1. Gilman RH, Brown KH, Visvesvara GS, Mondal G, Greenberg B, Sack RB, et al. Epidemiology and serology of Giardia lamblia in a developing country: Bangladesh. Trans R Soc Trop Med Hyg 1985; 79: 469-73. [CrossRef] 2. Keystone JS, Krajden K, Warren MR. Person-to-person transmission of Giardia lamblia in day-care nurseries. Can Med Assoc J 1978; 119: 241-58. 3. Guimarães S, Sogayar MIL. Detection of anti-Giardia lamblia serum antibody among children of day care centers. Rev Saúde Pública São Paulo 2002; 36: 1. 4. Şimşek Z, Zeyrek FY, Kurcer MA. Effect of Giardia Infection on Growth and Psychomotor Development of Children Aged 0-5 Years. J Trop Pediatr 2004; 50: 90-3. [CrossRef] 5. Yentür Doni N. Bağırsak Parazitlerinin 0-6
  2. Yaş Arası Çocuklarda Fiziksel, Mental ve Nöromotor Gelişim Üzerine Etkileri. Yüksek Lisans Tezi. Harran Üniv, Sağ Bil Ens, Tıbbi Mikrobiyoloji, Şanlıurfa. 2008. 6. Fayer R, Ungar LP. Cryptosporidium spp. and cryptosporidiosis. Microbiol Rev 1986; 50: 458-83. 7. Sojin Y, Mamun K, Rashidul H, William A. Evaluation of a screening test for detection of giardia and cryptosporidium parasites. J Clin Microbiol 2009; 47: 451-2. [CrossRef] 8. Savioli L, Smith H, Thompson A. Giardia and Cryptosporidium join the ‘Neglected Diseases Initiative’. Trends Parasitol 2006; 22: 203-8. [CrossRef] 9. Smith HV, Caccio SM, Tait A, McLauchlin J, Thompson ARC. Tools for investigating the environmental transmission of Cryptosporidium and Giardia. Trends Parasitol 2006; 22: 160-7. [CrossRef] 10. Marshall MM, Naumovitz D, Ortega Y, Sterling. CR. Waterborne protozoan pathogens. Clin Microbiol Rev 1997; 10: 67-85. 11. Wolfe MS. Giardiasis. Clin Microbiol Rev 1992; 5: 93-100. 12. Clark DP. New Insights into Human Cryptosporidiosis. Clin Microbiol Rev 1999; 12: 554-63. 13. Fayer R, Morgan U, Upton SJ. Epidemiology of Cryptosporidium: transmission, detection and identification. Int Journal Parasitology 2000; 30: 1305-22. [CrossRef] 14. Leav BA, Mackay M, Ward HD. Cryptosporidium Species: New Insights and Old Challenges. Clin Infect Dis 2003; 36: 903-8. [CrossRef] 15. Centers for Disease Control and Prevention. Diagnostic Procedures for Stool Specimens. 2004. http://www.dpd.cdc.gov/dpdx/HTML/ DiagnosticProcedures.htm. 16. ten Hove R, Schuurman T, Kooistra M, Möller L, van Lieshout L, Verweij JJ. Detection of diarrhoea-causing protozoa in general practice patients in The Netherlands by multiplex real-time PCR. Clin Microbiol Infect 2007; 13: 1001-7. [CrossRef] 17. Kehl KS,