Journals / Türkiye Parazitoloji Dergisi / 2017 / Cilt: 41 - Sayı: 3

Cryopreservation of Leishmania Species in Manisa Province

Manisa İlimizde Görülen Leishmaniasis Etkeni Leishmania Türlerinin Kriyoprezervasyonu

Pages
152–155
Publication Date
2022-11-05
DOI
—
🏛️Bibliographic metadata and full text access for this article are provided via DergiPark.
DergiPark Record ↗
✨

AI Summary & Key Takeaways

AI Insight
⚡ TL;DR(Too Long; Didn't Read)

Conclusion: The following conclusions were made: cryopreservation is important for studies planned related to leishmaniasis and cryopres- ervation with DMSO is successful.

📌 3 Key Takeaways

🎯
Objective & Hypothesis:Objective: It was aimed to assess the success of the cryopreservation process which is carried out in order to preserve the genetic material and the virulence of the Leishmania species that are an important health problem in our region.
📊
Key Findings & Data:Promastigotes cultured in the NNN medium were transferred to RPMI 1640 medium; promastigotes in the logarithmic phase were washed three times with PBS, and 15% dimethylsulfoxide (DMSO) was added.
💡
Conclusion & Impact:Conclusion: The following conclusions were made: cryopreservation is important for studies planned related to leishmaniasis and cryopres- ervation with DMSO is successful.
🔬Design:Research Article
📍Scope:Comprehensive Sample
⚙️Variables:Domain Parameters

Abstract

Objective: It was aimed to assess the success of the cryopreservation process which is carried out in order to preserve the genetic material and the virulence of the Leishmania species that are an important health problem in our region. Methods: Leishmania tropica, L. infantum, L. major, and L. donovani strains in Novy-MacNeal-Nicolle (NNN) medium in MCBU were used. Promastigotes cultured in the NNN medium were transferred to RPMI 1640 medium; promastigotes in the logarithmic phase were washed three times with PBS, and 15% dimethylsulfoxide (DMSO) was added. Leishmania species were transferred to 12 separate tubes. The tubes were stored at −86°C for one night by placing them in Coolcell boxes. The tubes were transferred into a liquid nitrogen tank. One cryotube per Leishmania strain is thawed monthly and cultured in NNN medium. Results: For the duration of study it was observed that each Leishmania isolate preserved 60-65% of their viability and entered the logarith- mic phase on the 7 th day following the inoculation in the NNN medium. Abnormalities in the structures and movements of the promastigotes were not observed in microscopic examinations. Conclusion: The following conclusions were made: cryopreservation is important for studies planned related to leishmaniasis and cryopres- ervation with DMSO is successful.

Özet

Amaç: Coğrafyamızda önemli bir sağlık problemi nedeni olan Leishmania türlerinin virülansının ve genetik materyalinin korunması için yapı-lacak kriyoprezervasyon yönteminin sağlıklı işleyip işlemediğinin gözlenmesi amaçlanmıştır.Yöntemler: Manisa Celal Bayar Üniversitesi Tıp Fakültesi Tıbbi Parazitoloji Anabilim Dalı’nda Novy-MacNeal-Nicolle (NNN) besiyerlerindeardışık pasajlarla devam eden Leishmania tropica, L. infantum, L. major ve L. donovani suşları kullanılmıştır. NNN besiyerinde kültürü yapılanpromastigotlar RPMI 1640 sıvı besiyerlerine aktarılmış ve logaritmik faza giren promastigotlar fosfat tampon solüsyonu (PBS) ile 3 defa yıkan-mıştır. Promastigot sayısı 10 8 mL/promastigot olarak ayarlanmış ve üzerine %15 Dimetilsülfoksit (DMSO) eklenmiştir. Leishmania türlerinin herbiri 12 ayrı steril kriyo tüplerine aktarılmıştır. Tüpler Coolcell kutularına yerleştirilerek -86°C’de bir gece bekletilmiştir. Ertesi gün hızlı bir şekildetüpler sıvı azot tankına aktarılmıştır. Sıvı azot tankına aktarılan kriyo tüpleri birer ay ara ile her Leishmania türünden birer adet çıkarılarak uygunşekilde çözündürülmüş ve NNN besiyerlerine ekimleri yapılmıştır.Bulgular: Çalışma süresince her ay sıvı azot tankından çıkarılan Leishmania izolatlarının her birinin % 60-65 oranında canlılıklarını koruduğu veNNN besiyerlerine yapılan ekimlerinde promastigotların 7.günde logaritmik faza girdiği gözlenmiştir. Mikroskop incelemelerinde promasti-got yapılarında ve hareketlerinde anormallikler gözlenmemiştir.Sonuç: Çalışmamızda leishmanisis ile ilgili yapılması planlanan araştırmalarda kriyoprezervasyonun önemli olduğu ve DMSO ile yapılan kri-yoprezervasyonun başarılı olduğu kanısına varılmıştır.

🔖

Cite This Article

KAYA, T., ÖZBİLGİN, A., OCAK, F., ÇAVUŞ, İ. (2022). Cryopreservation of Leishmania Species in Manisa Province. Türkiye Parazitoloji Dergisi, Cilt: 41 - Sayı: 3, 152–155. https://ajindex.com/articles/630128

📄 Full Text PDF Viewer

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

References (7)

  1. Özbel Y, Özensoy Töz S. Leishmaniasis. Özcel MA, Özbel Y, Ak M, editors. Özcel’in Tıbbi Parazit Hastalıkları Kitabı. Türkiye Parazitoloji Derneği Yayını, No: 22; 2007. p. 197-244.
  2. WHO, Leishmaniasis. Available from: www.who.int/leishmaniasis/en/ OK UZ, Balcioğlu IC, Taylan Ozkan A, Ozensoy S, Ozbel Y. Leishmaniasis in Turkey. Acta Trop 2002; 84: 43-8. [CrossRef] Miyata A. Cryo-Preservation of the Parasitic Protozoa. Jap J Trop Med Hyg 1975; 3: 161-200. [CrossRef] Duran N, Yarkın F, Allahverdiyev AM. The Effect Of The Various Freezing Methods On The Cell Viability Of Cryopreserved Hep-2 And Rabbit Kidney Cells. Türk Hij Den Biyol Derg 2001; 58: 53-60. Manual for case management of cutaneous leishmaniasis in the WHO Eastern Mediterranean Region, WHO Regional Office fort he Eastern Mediterranean, WHO Regional Publications Eastern Mediterraneen Series; 35, 2013. Leishmaniasis in high-burden countries: an epidemiological update based on data reported in, WHO Weekly Epidemiological Record, 2016; No 22, 91: 285-296.
  3. Du R, Hotez PJ, Al-Salem WS, Acosta-Serrano A. Old World Cutaneous Leishmaniasis and Refugee Crises in the Middle East and North Africa. PLoS Negl Trop Dis 2016; 1:e0004545. [CrossRef] Ertabaklar H, Ertuğ S, Çalışkan SÖ, Bozdoğan B. Determination of Leishmania Species by PCR-RFLP in the Smear Samples Taken from the Lesions of Cutaneous Leishmaniasis Cases. Mikrobiyol Bul 2016; 50: 300-6. [CrossRef] Özbilgin A, Östan İ, Kurt Ö. Kriyoprezervasyon. Korkmaz M, Ok ÜZ, editors. Parazitolojide Laboratuvar. Türkiye Parazitoloji Derneği Yayını, No:23; İzmir 2011. p.405-9.
  4. Sağırkaya H, Bağış H. Cryopreservation of Mammalian Embryos. Uludağ Univ J Fac Vet Med 2003; 22: 127-35.
  5. Kousha S, Mohebali M. Cryopreservation Methods for Different Species of Leishmania. Pejouhandeh 2000; 5: 157-64. Pegg DE. Cryopreservation and Freeze-Drying Protocols. Second Edition.
  6. Totowa, New Jersey. Day JG and Stacey GN; 2007.
  7. Callow LL, Farrant J. Cryopreservation of the Promastigote Form of Leishmania tropica var major at Different Cooling Rates. Int J Parasitol 1973; 3: 77-88. [CrossRef] Diamond LS. Freeze-Preservation of Protozoa. Cryobiology 1964; 1:95-102.[CrossRef]