SavedAdd your journal

Journals / Erciyes Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi / 2019 / Cilt: 16 - Sayı: 1

Rat Epididimal Spermasının Kısa Süreli Saklanmasında Farklı Sıcaklık Dereceleri ve Karnitinin Etkileri

Serpil SARIÖZKAN
Mustafa YEŞİL
Pages
30–37
Publication Date
2022-10-18
DOI
—
🏛️Bibliographic metadata and full text access for this article are provided via DergiPark.
DergiPark Record ↗
✨

AI Summary & Key Takeaways

AI Insight
⚡ TL;DR(Too Long; Didn't Read)

Sonuç olarak, 4 oC deki motilite oranı 37 oC ye kıyasla daha yüksek ve anormal spermatozoa oranı ise daha düşük bulundu.

📌 3 Key Takeaways

🎯
Objective & Hypothesis:Bu çalışmanın amacı, kısa süreli saklanan (0., 6., 12., 24. ve 48. saat) rat epididimal spermasında farklı saklama derecelerinin (4 oC ve 37 oC) ve karnitinin spermatolojik parametreler üzerine etkisini araştırmaktır.
📊
Key Findings & Data:Araştırmada sperma donörü olarak 10 adet 8-10 haftalık yaş ve 200-250 g ağırlıklarında Wistar-Albino erişkin rat kullanıldı.
💡
Conclusion & Impact:Sonuç olarak, 4 oC deki motilite oranı 37 oC ye kıyasla daha yüksek ve anormal spermatozoa oranı ise daha düşük bulundu.
🔬Design:Research Article
📍Scope:10 adet
⚙️Variables:Rat · epididimal sperma · karnitin

Özet

Bu çalışmanın amacı, kısa süreli saklanan (0., 6., 12., 24. ve 48. saat) rat epididimal spermasında farklı saklama derecelerinin (4 oC ve 37 oC) ve karnitinin spermatolojik parametreler üzerine etkisini araştırmaktır. Araştırmada sperma donörü olarak 10 adet 8-10 haftalık yaş ve 200-250 g ağırlıklarında Wistar-Albino erişkin rat kullanıldı. Epididimisler anestezi altındaki ratlardan cerrahi teknikle alındı. Epididimal sperma numuneleri önce 4 ayrı gruba ayrıldı, numuneler Tris (T) ve Tris + 2 mM karnitin (TC) ile sulandırıldı. Ardından sulandırılan sperma numuneleri 4 oC (T - TC) ve 37 oC (T - TC) de 48 saat süreyle kısa süreli saklandı. Saklama süresinin ardından motilite ve anormal spermatozoa oranı analiz edildi. Uygulama 10 kez tekrar edildi. Çalışmanın sonucunda, tüm deneysel gruplarda 48. saat sonunda anormal spermatozoa oranında artış ve motilite oranında düşme saptandı. Her iki sıcaklık derecesinde motilite ve spermatozoa morfolojik yapısının karnitin katılan gruplarda (TC) daha iyi korunduğu belirlendi. Sonuç olarak, 4 oC deki motilite oranı 37 oC ye kıyasla daha yüksek ve anormal spermatozoa oranı ise daha düşük bulundu.

🔖

Cite This Article

SARIÖZKAN, S., YEŞİL, M. (2022). Rat Epididimal Spermasının Kısa Süreli Saklanmasında Farklı Sıcaklık Dereceleri ve Karnitinin Etkileri. Erciyes Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi, Cilt: 16 - Sayı: 1, 30–37. https://ajindex.com/articles/503771

📄 Full Text PDF Viewer

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

References (15)

  1. Agarwal A, Virk G, Ong C, Du Plessis SS. Effect of oxidative stress on male reproduction. World J Mens Health 2014; 32(1): 1-17
  2. Ağca Y, Critser JK. Assisted reproductive technologies and genetic engineering in rats, Suckow MA, Weisbroth SH, Franklin CL. (eds). In: The Laboratory Rat. San Diego: Academic Press, 2005; pp.165-90
  3. Aitken RJ, Clarkson JS, Fishel S. Generation of reactive oxygen species, lipid peroxidation and human sperm function. Biol Reprod 1989; 41: 183-97
  4. Aitken RJ. Free radicals, lipid peroxidation and sperm function. Reprod Fertil Dev 1995; 7(4): 659-68
  5. Audrins P, Holden CA, McLachlan RI, Kovacs GT. Semen storage for special purposes at monash IVF from 1977 to 1997. Fertil Steril 1999; 72(1): 179-81
  6. Bailey JL, Bilodeau JF, Cormier N. Semen cryopreservation in domestic animals: a damaging and capacitating phenomenon. J Androl 2000; 21(1): 1-7
  7. Beconi MT, Affranchino MA, Schang LM, Beorlegui NB. Influence of antioxidants on SOD activity in bovine sperm. Biochem Int 1991; 23(3): 545-53
  8. Bucak MN, Tuncer PB, Sarıözkan S, Başpınar N, Taşpınar M, Çoyan K, Bilgili A, Akalın PP, Büyükleblebici S, Aydos S, Ilgaz S, Sunguroğlu A, Öztuna D. Effects of antioxidants on post-thawed bovine sperm and oxidative stress parameters: Antioxidants protect DNA integrity against cryodamage. Cryobiology 2010; 61(3): 248-53
  9. Buehr M, Hjorth JP, Hansen AK, Sandoe P. Genetically modified laboratory animals-what welfare problems do they face? J Appl Anim Welf Sci 2003; 6(4): 319-38
  10. Cardullo RA, Baltz JM. Metabolic regulation in mammalian sperm: Mitochondrial volume determines sperm length and flagellar beat frequency. Cell Motil Cytoskeleton 1991; 19(3): 180-8
  11. Charreau B, Tesson L, Soulillou JP, Pourcel C, Anegon I. Transgenesis in rats: Technical aspects and models. Transgenic Res 1996; 5(4): 223-34. cryopreserved mouse ovaries. Hum Reprod 1997; 12(1): 101-6
  12. Cummins JM, Woodall PF. On mammalian sperm dimensions. J Reprod Fertil 1985; 75(1): 153-75
  13. Çaylak E. Hayvan ve bitkilerde oksidatif stres ile antioksidanlar. Tıp Araştırmaları Dergisi 2011; 9(1): 73-83
  14. Çoyan K, Başpınar N, Bucak MN, Akalın PP, Ataman MB, Ömür AD, Güngör Ş, Küçükgünay S, Özkalp B, Sarıözkan S. Influence of methionine and dithioerythritol on sperm motility, lipid peroxidation and antioxidant capacites during liquid storage of ram semen. Res Vet Sci 2010; 89(3): 426-31
  15. Devireddy RV, Swanlund DJ, Roberts KP, Bischof JC. Subzero Water perme