Journals / Turkish Journal of Hematology / 2018 / Cilt: 35 - Sayı: 1

Incomplete Antibodies May Reduce ABO Cross-Match Incompatibility: A Pilot Study

İnkomplet Antikorlar ABO Çapraz Karşılaştırma Uyumsuzluğunu Azaltabilirler: Bir Başlangıç Çalışması

Pages
54–60
DOI
—
🏛️Bibliographic metadata and full text access for this article are provided via DergiPark.
DergiPark Record ↗
✨

AI Summary & Key Takeaways

AI Insight
⚡ TL;DR(Too Long; Didn't Read)

Therefore, we have planned an in vivo study to prove these in vitro findings.

📌 3 Key Takeaways

🎯
Objective & Hypothesis:Objective: Any erythrocyte transfusion among humans having type A or B blood groups is impossible due to antibodies causing fatal transfusion complications.
📊
Key Findings & Data:Materials and Methods: Pepsin enzyme and staphylococcal protein A columns were used to cut anti-A and anti-B monoclonal antibodies and purify their Fab (2) fragments, respectively.
💡
Conclusion & Impact:Therefore, we have planned an in vivo study to prove these in vitro findings.
🔬Design:Research Article
📍Scope:Comprehensive Sample
⚙️Variables:Domain Parameters

Abstract

Objective: Any erythrocyte transfusion among humans having type A or B blood groups is impossible due to antibodies causing fatal transfusion complications. A cross-match test is performed to prevent immune transfusion complications before transfusion. Our hypothesis is that the fragment antibody (Fab) part of the antibody (incomplete antibody) may be used to prevent an immune stimulus related to the complete antibody. Therefore, we designed a pilot study to evaluate the effectiveness of these incomplete antibodies using cross-match tests. Materials and Methods: Pepsin enzyme and staphylococcal protein A columns were used to cut anti-A and anti-B monoclonal antibodies and purify their Fab (2) fragments, respectively. An Rh-positive erythrocyte suspension with purified anti-A Fab (2) solution and B Rh-positive erythrocyte suspension with purified anti-B Fab (2) solution were combined correspondingly. Cross-match tests were performed by tube and gel centrifugation methods. The agglutination levels due to the anti-A and anti-B Fab (2) antibodies and their effects on the agglutination normally observed with complete antibodies were then measured. Results: No agglutination for the purified incomplete anti-A Fab (2) with A Rh+ erythrocyte and anti-B Fab (2) with B Rh+ erythrocyte combinations was observed in the tube cross-match tests. These agglutination levels were 1+ in two wells in the gel centrifugation cross-match tests. Fab (2)-treated erythrocytes were also resistant to the agglutination that normally occurs with complete antibodies. Conclusion: We determined that the Fab (2) fragments of antibodies may not only be used to obtain a mild or negative reaction when compared to complete antibodies, but they might also be used for decreasing ABO incompatibility. Incomplete antibodies might be a therapeutic option in autoimmune hemolytic anemia and they may also be used in solid organ or hematopoietic stem cell transplantation. Therefore, we have planned an in vivo study to prove these in vitro findings.

Özet

Amaç: Tip A ve B kan grubuna sahip insanlar arasında herhangi bir eritrosit nakli öldürücü transfüzyon komplikasyonlarına neden olan antikorlar nedeniyle imkansızdır. İmmün transfüzyon komplikasyonlarını önlemek için transfüzyondan önce çapraz karşılaştırma testi yapılır. Hipotezimiz komplet antikorla ilişkili bağışıklık yanıtını önlemekte antikorun fragman antikor (Fab) parçasının (inkomplet antikor) kullanılabileceğidir. Bu inkomplet antikorların etkinliğini değerlendirmek için de çapraz karşılaştırma testlerini kullanarak bir başlangıç çalışması tasarladık. Gereç ve Yöntemler: Anti-A ve anti-B monoklonal antikorlarını kesmek ve saflaştırmak için sırasıyla pepsin enzimi ve stafilokokal protein A kolonları kullanıldı. A Rh pozitif eritrosit süspansiyonu ile saflaştırılmış anti-A Fab (2) solüsyonu ve B Rh pozitif eritrosit süspansiyonu ile saflaştırılmış anti-B Fab (2) solüsyonu sırasıyla birleştirildi. Çapraz karşılaştırma testleri tüp ve jel santrifügasyon yöntemleri kullanılarak çalışıldı. Sonrasında anti-A ve anti-B Fab (2) antikorlara bağlı aglütinasyon düzeyi ve bunların komplet antikorlarla normalde gözlenen aglütinasyon üzerine etkileri ölçüldü. Bulgular: Tüp yöntemi ile yapılan çapraz karşılaştırma testinde saflaştırılmış inkomplet anti-A Fab (2) ile A Rh pozitif eritrosit ve anti-B Fab (2) ile B Rh pozitif eritrosit kombinasyonlarında aglütinasyon gözlenmedi. Jel santrifügasyon yöntemi ile yapılan çarpraz karşılaştırma testinde bu aglütinasyon düzeyleri her iki kuyucukta da 1 pozitifti. Fab (2) ile muamele edilen eritrositler komplet antikorla normalde oluşan aglütinasyona da dirençliydiler. Sonuç: Antikorların Fab (2) fragmanlarının sadece komplet antikorlara kıyasla daha hafif veya negatif reaksiyonu elde etmekte değil, aynı zamanda ABO uyumsuzluğunu azaltmakta da kullanılabileceğini değerlendirdik. İnkomplet antikorlar otoimmün hemolitik anemide bir tedavi seçeneği olabileceği gibi aynı zamanda solid organ veya hematopoeitik kök hücre naklinde kullanılabilir. Bu nedenle in vitro bulguları doğrulamak için in vivo bir çalışma planladık.

🔖

Cite This Article

ÖZEN, M., YILMAZ, S., ÖZKAN, T., ÖZER, Y., PEKEL, A. A., SUNGUROĞLU, A., GÜRMAN, G., ARSLAN, Ö. (2018). Incomplete Antibodies May Reduce ABO Cross-Match Incompatibility: A Pilot Study. Turkish Journal of Hematology, Cilt: 35 - Sayı: 1, 54–60. https://ajindex.com/articles/413392

📄 Full Text PDF Viewer

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

References (14)

  1. Harmening DM, Forneris G, Tubby BJ. The ABO blood group system. In: Harmening DM, (ed). Modern Blood Banking & Transfusion Practices. Philadelphia, F. A. Davis Company, 2012
  2. Blancher A, Klein J, Socha WW. Molecular Biology and Evolution of Blood Group and MHC Antigens in Primates, 1st ed. New York, Springer, 1997
  3. Makarovska-Bojadzieva T, Blagoevska M, Kolevski P, Kostovska S. Optimal blood grouping and antibody screening for safe transfusion. Prilozi 2009;30:119-128
  4. Petrides M. Pretransfusion compatibility testing. In: Petrides M, Stack G, (eds). Practical Guide to Transfusion Medicine, 2nd ed. Bethesda, American Association of Blood Banks, 2007
  5. Shulman IA, Nelson JM, Saxena S, Thompson JC, Okamoto M, Kent DR, Nakayama RK. Experience with the routine use of an abbreviated crossmatch. Am J Clin Pathol 1984;82:178-181
  6. Judd WJ, Fullen DR, Steiner EA, Davenport RD, Knafl PC. Revisiting the issue: can the reading for serologic reactivity following 37 degrees C incubation be omitted? Transfusion 1999;39:295-259
  7. Janeway CA Jr. How the immune system works to protect the host from infection: a personal view. Proc Natl Acad Sci U S A 2001;98:7461-7468
  8. Kamisawa T, Funata N, Hayashi Y, Eishi Y, Koike M, Tsuruta K, Okamoto A, Egawa N, Nakajima H. A new clinicopathological entity of IgG4-related autoimmune disease. J Gastroenterol 2003;38:982-984
  9. Ferraccioli GF, De Vita S, Casatta L, Damato R, Pegoraro I, Bartoli E. Autoimmune connective tissue disease, chronic polyarthritides and B cell expansion: risks and perspectives with immunosuppressive drugs. Clin Exp Rheumatol 1996;14(Suppl 14):71-80
  10. Stigbrand T, Ahlström KR, Sundström B, Makiya R, Stendahl U. Alternative technologies to generate monoclonal antibodies. Acta Oncol 1993;32:841- 844
  11. Bussel JB. Modulation of Fc receptor clearance and antiplatelet antibodies as a consequence of intravenous immune globulin infusion in patients with immune thrombocytopenic purpura. J Allergy Clin Immunol 1989;84:566- 578
  12. Nardin A, Lindorfer MA, Taylor RP. How are immune complexes bound to the primate erythrocyte complement receptor transferred to acceptor phagocytic cells? Mol Immunol 1999;36:827-835
  13. Andrew SM, Titus JA. Fragmentation of immunoglobulin G. Curr Protoc Immunol 2001;2:2-8
  14. Kulberg AJ, Bartova LM, Evnin DN. Further studies of the adjuvant properties of homologous IgG split products: mode of action of F(ab’)2 and related fragments. Immunology 1978;34:199-206