SavedAdd your journal

Journals / Celal Bayar Üniversitesi Fen Bilimleri Dergisi / 2010 / Cilt: 6 - Sayı: 2

NaCL Stresine Karşı LENS CULINARS 'in Biyokimyasal ve Fizyolojik Cevabı

NACL STRESİNE KARŞI LENS CULİNARS’İN BİYOKİMYASAL VE FİZYOLOJİK CEVABI - PHYSIOLOGICAL AND BIOCHEMICAL RESPONE TO NaCl STRESS IN LENS CULINARIS

Tülin AYDEMİR
Zeynep EREZ
Pages
89–104
Publication Date
2010-06-01
DOI
—
🏛️Bibliographic metadata and full text access for this article are provided via DergiPark.
DergiPark Record ↗

Abstract

-

Özet

NACL STRESİNE KARŞI LENS CULİNARS’İN BİYOKİMYASAL VE FİZYOLOJİK CEVABIBu çalışmada, farklı NaCl konsantrasyonlarının (50-400 mM) varlığında ve yokluğunda (kontrol)Lens culinaris bitkisindeki büyüme geriliği ile ilişkili olarak köklerde ve gövdede antioksidatif cevabınkarşılaştırılmasını amaçladık. Köklerde ve gövdede büyüme parametreleri (kuru ve taze ağırlık) Na+ içeriği,LPO seviyeleri, prolin, H2O2 içeriği, membran hasarı ve SOD, APX, CAT, GPX aktiviteleri incelendi.Kontrolle karşılaştırıldığında, 100-400 mM NaCl uygulaması, kök ve gövde ağırlığında ve yapraklardakitoplam klorofil ve karotenoid içeriğinde azalmaya sebep oldu. Buna karşın, LPO seviyeleri, H2O2 ve Na+içeriği, elektrolitik geçirgenlik ve prolin seviyelerinde her iki bitki dokusunda da doza bağlı olarak artışaneden oldu. Bu artışlar gövde ile karsılaştırıldığında köklerde anlamlı olarak daha yüksek bulundu. Buçalışmada elde edilen sonuçlar ve literatür bilgileri H2O2 ve Na+ birikiminin büyümenin düzenlenmesindeönemli rol oynadığını göstermektedir. Tuzluluğun antioksidan enzim aktiviteleri üzerindeki etkisi her ikibitki dokusunda da benzer şekilde bulundu. Tuz stresi köklerde ve gövdede SOD ve GPX enzimaktivitelerinde artışa sebep olurken, CAT ve APX aktivitelerini baskıladı. Sonuç olarak, Lens culinaris’ intuzluluk stresine olan hassasiyeti yüksek Na+ seviyesi ve oksijen radikali indirgeme kapasitesinin düşmesiyleartan lipid peroksidasyonu ile açıklanabilir.PHYSIOLOGICAL AND BIOCHEMICAL RESPONE TO NaCl STRESS IN LENS CULINARISIn this study we aimed to compare some antioxidative responses of shoots and roots associated togrowth reduction in Lens culinaris in the absence (control) and presence of different NaCl concentrations(50-400 mM). Growth parameters (dry-fresh weight) Na+ contents, LPO levels, proline, H2O2 contents,membrane damage and activities of SOD, APX, CAT and GPX was investigated in roots and shoots.Compared with controls, 100-400 mM NaCl treatment resulted in a reduction in roots and shoots weight,total chlorophyll and carotenoid in leaves. On contrary, LPO levels, H2O2 and Na+ contents, proline levels,electrolytic leakage exhibited a dose dependent increase in both tissues. These increases were significantlyhigher in roots as compared to shoots. Our results and literature data suggest that the accumulation H2O2 andNa+ plays an important role in regulating growth. The effect of salinity on antioxidant enzyme activities wassimilar trends in both tissues. Salt stress caused an increase on the activity of SOD and GPX in roots andshoots, while the activities of CAT and APX was inhibited. A higher Na+ level and lipid peroxidationcombined with a lower capacity for oxygen radical scavenging could probably explain the sensitivity of Lensculinaris to salt stress.

🔖

Cite This Article

AYDEMİR, T., EREZ, Z. (2010). NaCL Stresine Karşı LENS CULINARS 'in Biyokimyasal ve Fizyolojik Cevabı. Celal Bayar Üniversitesi Fen Bilimleri Dergisi, Cilt: 6 - Sayı: 2, 89–104. https://ajindex.com/articles/35276

📄 Full Text PDF Viewer

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

References (14)

  1. AEBI, H.: Catalases In: H.U. Bergmeyer, Editors, Methods of enzymatic analysis. Vol. Academic Press. NY 673–684, (1974).
  2. ASADA, K.: Ascorbate hydrogen scavenging enzyme in plant. Physiol Plant. 85: 235-241, (1992). peroxidase a Anal DEVI, R. and PRASAD, M.N.V.: Copper toxicity in Ceratophyllum demersum L. (Coontail), a free floating macrophyte: Response of antioxidant enzymes and antioxidants, Plant science.138: 157-165, (1998).
  3. DIONISIO-SESE, M.L. and TOBITA, S.: Antioxidant responses of rice seedlings to salinity stress. Plant Science. 135: 1–9, (1998).
  4. ELKAHOUI, S., HERNANDEZ, J.A., ABDELLY, C., GHRIR, R. and LIMAM, F.: Effects of salt on lipid peroxidation and antioxidant Catharanthus roseus suspension cells. Plant Sci. 168: 607–613, (2005). activities of FADZILLA, N.M., FINCH, R.P. and BURDON, R.H.: Salinity, oxidative stress and antioxidant responses in shoot cultures of rice. J. Exp. Bot. 48: 325–331, (1997).
  5. FLOWERS, T.J., TROKE, P.F. and YEO, A.R.: Mechanisms of salt tolerance in halophytes. Plant Physiol. 28: 89-121, (1997).
  6. GOSSETT, D.R., MILLHOLLON, E.P. and LUCAS, M.C.: Antioxidant response to NaCl stress in salt tolerant and salt sensitive cultivars of cotton. Crop Sci. 34: 706–714, (1994).
  7. GREENWAY, H. and MUNNS, R.: Mechanism of salt tolerance in non- halophytes.-Annu. Rev. Plant Physiol. 31: 190, (1980).
  8. GUNZLER, V.A. and FLOHE, L.: Glutathione peroxidase: In Greenwald, R.A. (Ed.), Handbook of Methods for Oxygen Radical Research. CRS Press,
  9. Boca Raton, FL, 285-290, (1985).
  10. HAJJI, M., LACHAAL, M., SOLTANI, M. and ABDALLY, C.: Response of the plants to the saline stres: Ecophysiologic and Biochemical aspects of the tolerance to salt. Annual Meeting of the EUCA, Sustainable utilasion of Halophytes. Agadir to 15 April, (1999).
  11. HALLIWELL, B. and GUTTERIDGE, J.M.C.: Free Radicals in Biology and Medicine, Clarendon Press, Oxford, (1999).
  12. HASEGAWA, K., IWAGAWA, T. and HASE, T.: Isolation and Identification of Growth Inhibitors, cis- and Raphanusamide, Involved in Phototropism of Radish Hypocotyls, Plant Physiology.: 976-979, (1986).
  13. NOGUCHI, H., trans-Raphanusanins and HEATH, R.L. and PACKER, in Photoperoxidation chloroplasts:I. Kinetics and stoichiometry of fatty acid peroxidation. Arch. Biochem. Biophys. 125: 189–198, (1968). isolated HERNANDEZ, J.A., CAMPILLO, A., JIMENEZ, A., ALARCON, J.J. and SEVILLA, F.: Response of antioxidant systems and leaf water relations to NaCl stress in pea plants. New Phytol. 141: 214–, (1999).
  14. IYENGAR, E.R.R. and