Journals / Mikrobiyoloji Bülteni / 2016 / Cilt: 50 - Sayı: 2

Determination of Leishmania Species by PCR-RFLP in the Smear Samples Taken from the Lesions of Cutaneous Leishmaniasis Cases

Kütanöz Leyşmanyazlı Olgularda Lezyondan Alınan Yayma Örneğinden PCR-RFLP ile Leishmania Türünün Araştırılması

Pages
300–306
DOI
—
🏛️Bibliographic metadata and full text access for this article are provided via DergiPark.
DergiPark Record ↗
✨

AI Summary & Key Takeaways

AI Insight
⚡ TL;DR(Too Long; Didn't Read)

In conclusion, ITS-1 PCR-RFLP method may be used directly as a single routine procedure for both the detection and identifi cation of Leishmania species in the clinical samples of CL patients, in laboratories with adequate facilities

📌 3 Key Takeaways

🎯
Objective & Hypothesis:The forms of the disease caused by Leishmania species in Turkey as well as in Aegean region are cutaneous and visceral leishmaniasis (CL and VL, respectively), and the agent of CL is commonly L.tropica.
📊
Key Findings & Data:The aim of this study was to investigate the performance of PCR-restriction fragment length polymorphism (RFLP) method both for the detection and identifi cation of Leishmania species simultaneously in CL patients.
💡
Conclusion & Impact:In conclusion, ITS-1 PCR-RFLP method may be used directly as a single routine procedure for both the detection and identifi cation of Leishmania species in the clinical samples of CL patients, in laboratories with adequate facilities
🔬Design:Research Article
📍Scope:2012-2014 Verileri
⚙️Variables:Domain Parameters

Abstract

The forms of the disease caused by Leishmania species in Turkey as well as in Aegean region are cutaneous and visceral leishmaniasis (CL and VL, respectively), and the agent of CL is commonly L.tropica. However, L.infantum was also reported as being CL agent recently. Direct microscopic examination, serological tests and culture are the conventional methods used for the diagnosis of CL. Since the specifi cities of these methods are high their sensitivities are variable and identifi cation at species level is not possible. Recently, the use of polymerase chain reaction (PCR)-based molecular methods enabled the rapid and reliable diagnosis and species identifi cation. The aim of this study was to investigate the performance of PCR-restriction fragment length polymorphism (RFLP) method both for the detection and identifi cation of Leishmania species simultaneously in CL patients. A total of 30 smear samples that were positive for Leishmania amastigotes with microscopic examination, obtained from CL-suspected cases admitted to Adnan Menderes University Medical School Hospital, Parasitology Laboratory (located at Aydin, in the Aegean region of Turkey) between 2012-2014 period were included in the study. Ten samples taken from the skin lesions caused by Staphylococcus aureus (n= 5) and Candida albicans (n= 5) were also included as negative controls. DNA extractions from the smears were performed by the use of a commercial kit (Macherey-Nagel NucleoSpin Tissue® Kit, Germany). DNA isolation was also performed from L.major, L.infantum and L.tropica promastigotes that were grown in culture as positive controls. In PCR method LITSR and L5.8S primers targeting to ITS (internal transcribed spacer)-1 region were used. In RFLP method, the amplifi ed PCR products were cleaved by BsuRI (HaeIII) restriction enzyme for the species identifi cation. As a result, restriction profi les of all samples (n= 30) were in accordance with L.tropica restriction profi le. No band was observed in the control samples (n= 10). The data of this study showed that the most common CL agent in Aydin is L.tropica. In conclusion, ITS-1 PCR-RFLP method may be used directly as a single routine procedure for both the detection and identifi cation of Leishmania species in the clinical samples of CL patients, in laboratories with adequate facilities

Özet

Ülkemizde ve bölgemizde Leishmania türlerinin neden olduğu hastalık formları kütanöz ve viseral leyşmanyaz (sırasıyla, KL ve VL) olup, KL etkeninin sıklıkla L.tropica olduğu bilinmektedir. Ancak son yıllarda VL etkeni olarak bilinen L.infantum'un da KL etkeni olabileceği gösterilmiştir. KL tanısında direkt mikroskopi, serolojik testler ve kültür yöntemleri, kullanılan geleneksel yöntemlerdir. Bu yöntemlerin özgüllüğü yüksek olmakla birlikte duyarlılıkları değişkendir ve ayrıca tür tayini yapılamamaktadır. Son yıllarda, polimeraz zincir reaksiyonu (PCR) temelli moleküler yöntemlerin kullanıma girmesi, tanı ve tiplendirmenin hızlı ve duyarlı olarak yapılmasına olanak sağlamıştır. Bu çalışmada, KL'li hastalarda hem tanı hem de tür tayinini aynı anda yapabilecek PCR-restriksiyon parça uzunluk polimorfi zmi (RFLP) yönteminin performansının araştırılması amaçlanmıştır. Çalışmaya, 2012-2014 yılları arasında Adnan Menderes Üniversitesi Tıp Fakültesi, Parazitoloji Laboratuvarına gelen KL şüpheli olguların deri lezyonlarından alınan örneklerden, mikroskobik incelemede Leishmania amastigotlarının saptandığı 30 yayma örneği dahil edilmiştir. Negatif kontrol olarak, Staphylococcus aureus (n= 5) ve Candida albicans'ın (n= 5) etken olduğu deri lezyonlarından alınan toplam 10 adet örnek kullanılmıştır. Yayma örneklerinden DNA izolasyonu, ticari bir kit (Macherey-Nagel NucleoSpin Tissue® Kit, Almanya) kullanılarak yapılmıştır. Pozitif kontrol olarak, kültürde çoğaltılan L.major, L.infantum ve L.tropica promastigotlarından da aynı şekilde DNA izolasyonu yapılmıştır. PCR yönteminde, ITS (internal transcribed spacer)-1 bölgesini hedefl eyen LITSR ve L 5.8S primerleri kullanılmıştır. RFLP yönteminde, amplifi ye edilen PCR ürünleri, tür tayini yapmak amacıyla BsuRI (HaeIII) restriksiyon enzimi kullanılarak kesilmiş ve tüm örneklerde (n= 30) L.tropica'ya özgü bant görüntüsü saptanmıştır. Negatif kontrol olarak kullanılan örneklerin hiçbirinde (n= 10) bant saptanmamıştır. Çalışmamızda, Aydın ilinde en yaygın görülen türün L.tropica olduğu belirlenmiştir. Sonuç olarak, KL'li hastaların klinik örneklerinde doğrudan hem parazitin tespiti hem de tür tayini için ITS-1 PCR-RFLP yönteminin, yeterli olanakları olan laboratuvarlarda rutin tanıda kullanılabileceği kanısına varılmıştır

🔖

Cite This Article

ERTABAKLAR, H., ERTUĞ, S., ÇALIŞKAN, S. Ö., BOZDOĞAN, B. (2016). Determination of Leishmania Species by PCR-RFLP in the Smear Samples Taken from the Lesions of Cutaneous Leishmaniasis Cases. Mikrobiyoloji Bülteni, Cilt: 50 - Sayı: 2, 300–306. https://ajindex.com/articles/298408

References (15)

  1. Desjeux P. Leishmaniasis: current situation and new perspectives. Comp Immunol Microbiol Infect Dis 2004; 27(5): 305-18.
  2. Özbel Y, Özensoy Töz S, Leishmaniosis, s: 199-241.
  3. Özcel MA, Özbel Y, Ak M (ed), Özcel'in Tıbbi Parazit Hastalıkları. 2007, Türkiye Parazitoloji Derneği Yayını No: 22. Meta Basım Bornova, İzmir.
  4. Ok UZ, Balcioğlu IC, Taylan Ozkan A, Ozensoy S, Ozbel Y. Leishmaniasis in Turkey. Acta Trop 2002; 84(1): 43-8.
  5. Ertabaklar H, Oncü S, Ertug S. A new focus for cutaneous leishmaniasis in the West Coast of Turkey. Trop Doct 2005; 35(3): 189. Luz ZM, Silva AR, Silva Fde O, Caligiorne RB, Oliveira E, Rabello A. Lesion aspirate culture for the diagnosis and isolation of Leishmania spp. from patients with cutaneous leishmaniasis. Mem Inst Oswaldo Cruz 2009; 104(1): 62-6.
  6. Özensoy Töz S, Özbel Y, Atay MG ve ark. İnsan ve köpeklerden alınan klinik örneklere leishmaniasis tanısı için PCR uygulanması. Turkiye Parazitol Derg 2002; 26(3): 239-44.
  7. Reithinger R, Dujardin JC. Molecular diagnosis of leishmaniasis: current status and future applications. J Clin Microbiol 2007; 45(1): 21-5.
  8. Ergin M, Erdogan S, Gumurdulu D, Tuncer I. Cutaneous leishmaniasis: evaluation by polymerase chain reaction in the Cukurova region of Turkey. J Parasitol 2005; 91(5): 1208-11.
  9. Svobodova M, Alten B, Zidkova L et al. Cutaneous leishmaniasis caused by Leishmania infantum transmitted by Phlebotomus tobbi. Int J Parasitol 2009; 39(2): 251-6.
  10. Schönian G, Nasereddin A, Dinse N, et al. PCR diagnosis and characterization of Leishmania in local and imported clinical samples. Diag Microbiol Infect Dis 2003; 47(1): 349-58.
  11. Ertuğrul MB, Ertabaklar H, Uyar G, Ertuğ S, Sakarya S. Bir olgu nedeniyle visseral leishmaniasis tanı ve tedavisinin tartışılması. ANKEM Derg 2005; 19(1): 48-51.
  12. Atasoy A, Paşa S, Ozensoy Töz S, Ertabaklar H. Seroprevalence of canine visceral leishmaniasis around the Aegean Cost of Turkey. Kafkas Univ Vet Fak Derg 2010; 16(1): 1-6.
  13. Serin MS, Daglioglu K, Bagirova M, et al. Rapid diagnosis and genotyping of Leishmania isolates from cutaneous and visceral leishmaniasis by microcapillary cultivation and polymerase chain reaction-restriction fragment length polymorphism of miniexon region. Diagn Microbiol Infect Dis 2005; 53(3): 209-14.
  14. Eroglu F, Koltas IS, Alabaz D, Uzun S, Karakas M. Clinical manifestations and genetic variation of Leishmania infantum and Leishmania tropica in Southern Turkey. Exp Parasitol 2015; 154(1): 67-74.
  15. Kuhls K, Mauricio IL, Pratlong F, Presber W, S