SavedAdd your journal

Journals / Akademik Ziraat Dergisi / 2020 / Cilt: 9 - Sayı: 2

Ordu İli Yaprak Lahana Ekim Alanlarından İzole Edilen Rhizoctonia Grubu Fungusların Anastomozis Gruplarının, Karakteristik Özelliklerinin ve Patojenisitelerinin Belirlenmesi

Halil İbrahim BENLİ
Muharrem TÜRKKAN
Pages
229–238
Publication Date
2020-12-30
DOI
—
🏛️Bibliographic metadata and full text access for this article are provided via DergiPark.
DergiPark Record ↗
✨

AI Summary & Key Takeaways

AI Insight
⚡ TL;DR(Too Long; Didn't Read)

Tüm izolatların %53.70’i kullanılarak yaprak lahana fideleri üzerinde yürütülen patojenisite testlerinde, genel olarak BN ve MN Rhizoctonia spp. izolatları arasında istatistiksel olarak önemli virülens farklılıkları olduğu tespit edilmiştir (P

📌 3 Key Takeaways

🎯
Objective & Hypothesis:Öz 2017-2018 vejetasyon döneminde Ordu ilinin on bir ilçesi (Akkuş, Altınordu, Aybastı, Çatalpınar, Çaybaşı, Fatsa, Perşembe, Gölköy, Gülyalı, Gürgentepe ve Ulubey)’nden hastalıklı yaprak lahana bitkileri ve onların rizosfer toprağından toplam elli dört Rhizoctonia spp. izolatı elde edilmiştir.
📊
Key Findings & Data:Bu izolatların %62.96’sının binükleik (BN) Rhizoctonia spp. (AG-A, AG-E, AG-F, AG-K ve AG-O) ve %37.34’ünün multinükleik (MN) Rhizoctonia solani (AG 1, AG 2-1, AG 4 ve AG 5) olduğu tespit edilmiştir.
💡
Conclusion & Impact:Tüm izolatların %53.70’i kullanılarak yaprak lahana fideleri üzerinde yürütülen patojenisite testlerinde, genel olarak BN ve MN Rhizoctonia spp. izolatları arasında istatistiksel olarak önemli virülens farklılıkları olduğu tespit edilmiştir (P
🔬Design:Research Article
📍Scope:2017-2018 Verileri
⚙️Variables:Anahtar Kelimeler Yaprak lahana · Rhizoctonia spp. · kök çürüklüğü

Özet

Öz 2017-2018 vejetasyon döneminde Ordu ilinin on bir ilçesi (Akkuş, Altınordu, Aybastı, Çatalpınar, Çaybaşı, Fatsa, Perşembe, Gölköy, Gülyalı, Gürgentepe ve Ulubey)’nden hastalıklı yaprak lahana bitkileri ve onların rizosfer toprağından toplam elli dört Rhizoctonia spp. izolatı elde edilmiştir. Rhizoctonia spp. izolatlarının kültürel özellikleri, anastomozis grupları ve patojenisiteleri incelenmiştir. Bu izolatların %62.96’sının binükleik (BN) Rhizoctonia spp. (AG-A, AG-E, AG-F, AG-K ve AG-O) ve %37.34’ünün multinükleik (MN) Rhizoctonia solani (AG 1, AG 2-1, AG 4 ve AG 5) olduğu tespit edilmiştir. Sörvey yapılan tüm arazilerde en yaygın grup, 22 izolat ile BN Rhizoctonia spp. AG-A olarak belirlenmiştir. Geri kalan 32 izolatın 10’u R. solani AG 4, 6’sı BN Rhizoctonia spp. AG-K, 4’ü R. solani AG 2-1, dördü BN Rhizoctonia spp. AG-F, 3’ü R. solani AG 5, 1’er tanesi R. solani AG 1, BN Rhizoctonia AG-E ve AG-O’ya ait olduğu belirlenmiştir. Tüm izolatların %53.70’i kullanılarak yaprak lahana fideleri üzerinde yürütülen patojenisite testlerinde, genel olarak BN ve MN Rhizoctonia spp. izolatları arasında istatistiksel olarak önemli virülens farklılıkları olduğu tespit edilmiştir (P

🔖

Cite This Article

BENLİ, H. İ., TÜRKKAN, M. (2020). Ordu İli Yaprak Lahana Ekim Alanlarından İzole Edilen Rhizoctonia Grubu Fungusların Anastomozis Gruplarının, Karakteristik Özelliklerinin ve Patojenisitelerinin Belirlenmesi. Akademik Ziraat Dergisi, Cilt: 9 - Sayı: 2, 229–238. https://ajindex.com/articles/261989

📄 Full Text PDF Viewer

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

References (10)

  1. Abawi, G.S., & Martin, S.B. (1985). Rhizoctonia foliar blight of cabbage in New York State. Plant Disease, 69, 158-161.
  2. Ball, G.J. (1990). Grower talks on plugs. Growertalks magazine, George J. Ball Publishing, Geneva, III. Bandoni, R.J. (1979). Safranin O as a rapid nuclear stain for fungi. Mycologia, 71, 873-874.
  3. Broders, K.D., Parker, M.L., Melzer, M.S., & Boland, G.J. (2014). Phylogenetic diversity of Rhizoctonia solani associated with canola and wheat in Alberta, Manitoba, and Saskatchewan. Plant disease, 98(12), 1695-1701.
  4. Budge, G. E., Shaw, M. W., Lambourne, C., Jennings, P., Clayburn, R., Boonham, N., & McPherson, M. (2009). Characterization and origin of infection of Rhizoctonia solani associated with Brassica oleracea crops in the UK. Plant Pathology, 58(6), 1059-1070.
  5. Carling, D.E., Kuninaga, S., & Brainard, K.A. (2002). Hyphal anastomosis reactions, rDNA-internal transcribed spacer sequences, and virulence levels among subsets of Rhizoctonia solani anastomosis group 2 (AG 2) and AG BI. Phytopathology, 92, 43-50.
  6. Dong, W., Li, Y., Duan, C., Li, X., Naito, S., Conner, R.L., Yang, G., & Li, C. (2017). Identification of AG-V, a new anastomosis group of binucleate Rhizoctonia spp. from taro and ginger in Yunnan province. European Journal of Plant Pathology, 148(4), 895-906.
  7. Erper, I., Cebi-Kilicoglu, M., Türkkan, M., & Onder, H. (2016). Characterization and pathogenicity of Rhizoctonia spp. isolated from winter squash in the Black Sea region of Turkey. European Journal of Plant Pathology, 146, 683–697.
  8. Erper, I., Türkkan, M., Ozgen., T., & Balkaya, A. (2017). Determination of Reactions of Some Brassica spp. Against Three Subgroups of Rhizoctonia solani AG 4. The 69th International Symposium on Crop Protection, 23 May, Ghent, Belgium. Fang, Z., Liu, Y., Lou, P., & Liu, G. (2005). Current trends in cabbage breeding. Journal of New Seeds, 6(2-3), 75- 107. Hall, R. (1992). Epidemiology of blackleg of oilseed rape. Canadian Journal of Plant Pathology, 14(1), 46-55.
  9. Hua, G. K. H., Bertier, L., Soltaninejad, S., & Höfte, M. (2014). Cropping systems and cultural practices determine the Rhizoctonia anastomosis groups associated with Brassica spp. in Vietnam. PloS one, 9(11), e111750. Huber, D. M, Christmas, E. P., Herr, L. J., McCay-Buis, T. S., & Baird, R. (1992). Rhizoctonia crown rot of canola in Indiana. Plant Disease, 76, 1251-1253.
  10. Ireland, K. B., Weir, B. S., Phantavong, S., Phitsanoukane, P., Vongvichid, K., Vilavong, S., & Burgess, L.W. (2015). Fir