Journals / Alatarım / 2007 / Cilt: 6 - Sayı: 2

One of the way for plant obtention : Microspore culture

Haploid bitki elde etme yollarından biri: Mikrospor kültürü

Journal
Alatarım
Pages
1–8
DOI
—
🏛️Bibliographic metadata and full text access for this article are provided via DergiPark.
DergiPark Record ↗
✨

AI Summary & Key Takeaways

AI Insight
⚡ TL;DR(Too Long; Didn't Read)

In this review, introduction of microspore culture, its methodology, applications and factors influencing success have been described.

📌 3 Key Takeaways

🎯
Objective & Hypothesis:Dihaploidization techniques provide important advantages in shortening breeding period and provide the possibility of obtaining pure lines needed for the development of new cultivars in a shorter period of time.
📊
Key Findings & Data:Dihaplodization technique is widely used for barley, wheat, maize, rice, oilseed rape, pepper, eggplant, brassicas, gerbera, melon, watermelon, squash.
💡
Conclusion & Impact:In this review, introduction of microspore culture, its methodology, applications and factors influencing success have been described.
🔬Design:Review & Systematic Survey
📍Scope:Comprehensive Sample
⚙️Variables:bitki ıslahı · haploit · haploitlik

Abstract

Dihaploidization techniques provide important advantages in shortening breeding period and provide the possibility of obtaining pure lines needed for the development of new cultivars in a shorter period of time. Dihaplodization technique is widely used for barley, wheat, maize, rice, oilseed rape, pepper, eggplant, brassicas, gerbera, melon, watermelon, squash. Currently, for haploid production, androgenic techniques (anther and microspore culture) and gynogenic techniques (ovule and ovary culture, chromosome elimination, pollination with irradiated pollen have been used. Microspore culture has been developed as an alternative technique to anther culture and is being used successfully among many plant species. In this review, introduction of microspore culture, its methodology, applications and factors influencing success have been described.

Özet

Islah çalışmalarının süresinin kısaltılması ve çeşit geliştirme çalışmalarında kullanılacak homozigot saf hatların daha kısa sürede elde edilmesinde dihaploidizasyon tekniği önemli avantaj sağlamaktadır. Dihaploidizasyon tekniği; arpa, buğday, mısır, çeltik, kolza, biber, patlıcan, Brassica’larda, gerbera, kavun, karpuz, kabak gibi birçok türde yaygın olarak kullanılmaktadır. Günümüzde haploid bitkilerin üretiminde; androgenik yöntemler (anter ve mikrospor kültürü) ve ginogenik yöntemlerden (yumurta (ovül) ve yumurtalık (ovaryum) kültürü, kromozom eliminasyonu, ışınlanmış polenle tozlama) yararlanılmaktadır. Androgenetik yöntemlerden mikrospor kültürü, anter kültürüne alternatif olarak geliştirilmiş bir teknik olup, birçok türde başarıyla kullanılmaktadır. Makalede mikrospor kültürünün tanıtımı, yapılış şekli, uygulanış şekli ve başarıyı etkileyen faktörlerle ile ilgili bilgilere yer verilmiştir.

🔖

Cite This Article

TUNCER, B., YANMAZ, R. (2007). One of the way for plant obtention : Microspore culture. Alatarım, Cilt: 6 - Sayı: 2, 1–8. https://ajindex.com/articles/151983

📄 Full Text PDF Viewer

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

References (13)

  1. Bal, U., 2002. Domateste (Lycopersicon esculentum Mill.) Izole Edilmiş Mikrospor Kültürü, Ovaryum Kültürü ve Solanum sisymbriifolium Lam. ile Tozlanma Yöntemleri ile Haploid Embriyo Oluşumunun Uyartılması. T.Ü. Tekirdağ Ziraat Fakültesi Bahçe Bitkileri Anabilim Dalı, Doktora Tezi (basılmamış),1-156 s., Tekirdağ. Barinova, I., Clement, C., Martiny, L., Baillieul, F., Soukupova, H., Heberle-Bors, E., Touraev,A., 2004. Regulation of Developmental Pathways in Cultured Microspores of Tobacco and Snapdragon by Medium pH. Planta, 219: 141-146.
  2. Barro, F., Martin, A., 1999. Response of Different Genotype of Brassica carinata to Microspore Culture. Plant Breeding, 118: 79-81.
  3. Cao, M., Li, Y.,Liu, F., Dore, C., 1994. Embryo Genesis and Plant Regeneration of Pakchoi (B.rapa L.ssp. chinensis) via in vitro Isolated Microspore Culture. Plant Cell Reports,13: 447-450.
  4. Carlos, J., Dias, S., 1999. Effect of Activated Charcoal on Brassica oleracea Microspore Culture Embryo Genesis. Euphytica, 108: 65-69.
  5. Dias, J.S., Correia, M.C., 2002. Effect of Medium Renovation and Incubation Temperature Regimes on Tronchuda Cabbage Microspore Culture Embryo Genesis. Scientia Horticulturae, 93: 205-214.
  6. Duijs, J.G., Voorrips, R.E., Visser, D.L., Custers, J.B.M., 1992. Microspore Culture is Successful In Most Crop Types of Brassica oleracea L. Euphytica, 60: 45-55.
  7. Ellialtıoğlu, Ş., Tıpırdamaz, R., 1997. Soğuk Uygulamalarının ve Aktif Kömürün Patlıcan ve Biberde in vitro Androgenesis Üzerine Etkileri. TÜBİTAK-TOGTAG 87 no’lu Proje Sonuç Raporu, 70 s. Ankara.
  8. Ellialtıoğlu, Ş., Sarı, N., Abak, K., 2001. Haploid Bitki Üretimi. Bitki Biyoteknolojisi (Doku Kültürü ve Uygulamaları) Ders Kitabı Bölüm 5, s.137-189.
  9. Ferrie, A.M.R., Taylor, D.C., Mackenzie, S.L., Keller, W.A., 1999. Microspore embryo genesis of high sn-2 erucic acid Brassica oleracea germplazm. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 57: 79-84.
  10. Gamborg, O.L., Miller, R.A., Ojima, K., 1968. Nutrient Requirements of Suspension Cultures of Soybean Root Cells. Exp. Cell Res., 60: 151-158.
  11. Hansen, N.J.P., Andersen, S.B., 1998. In vitro Chromosome Doubling with Colchicine During Microspore Culture In Wheat (Triticum aestivum L.). Euphytica, 102: 101-108.
  12. Heberle-Bors, E. 1983. Induction of Embryogenic Pollen Grain in situ and Subsequent in vitro Pollens Embryo Genesis in Nicotiana tabacum L. by Treatments of the Pollen Donor Plants with Feminizing Agents. Physiol Plant, 59: 67-72.
  13. Herrera, J.C., Moreno, L.G., Acuna, J.R., De Pena, M., Osori