Journals / Alatarım / 2008 / Cilt: 7 - Sayı: 2

The use of molecular marker techniques in viticulture

Moleküler markör tekniklerinin bağcılıkta kullanımı

Journal
Alatarım
Pages
26–33
DOI
—
🏛️Bibliographic metadata and full text access for this article are provided via DergiPark.
DergiPark Record ↗
✨

AI Summary & Key Takeaways

AI Insight
⚡ TL;DR(Too Long; Didn't Read)

While capability of SSRs in cultivar identification was emphasized, additional marker systems were recommended when closely related genotypes are considered to analyze.

📌 3 Key Takeaways

🎯
Objective & Hypothesis:In this study, results obtained in worldwide viticulture researches by main molecular marker techniques and their applications were shortly summarized.
📊
Key Findings & Data:According to findings, isoenzymes were mostly used on initial studies.
💡
Conclusion & Impact:While capability of SSRs in cultivar identification was emphasized, additional marker systems were recommended when closely related genotypes are considered to analyze.
🔬Design:Research Article
📍Scope:Comprehensive Sample
⚙️Variables:markörler · moleküler biyoloji · Vitis

Abstract

In this study, results obtained in worldwide viticulture researches by main molecular marker techniques and their applications were shortly summarized. According to findings, isoenzymes were mostly used on initial studies. In the following studies RAPD (Random Amplified Polymorphic DNA) and SRR (Simple Sequence Repeats) were widely utilized while RFLP (Restriction Fragment Length Polymorphism), AFLP (Amplified Fragment Length Polymorphism) and ISSR (Inter-Simple Sequence Repeats) were the other common techniques. The main subjects of these researches were cultivar identification and parental analysis. While capability of SSRs in cultivar identification was emphasized, additional marker systems were recommended when closely related genotypes are considered to analyze.

Özet

Bu çalışmada, dünyada bağcılık araştırmalarında kullanılan başlıca moleküler markör tekniklerinden elde edilen bulgular kısaca özetlenmiş ve bu tekniklerin uygulama alanları incelenmiştir. Elde edilen bulgulara göre, ilk dönemlerde yapılan çalışmalarda daha çok izoenzim markörlerine yer verildiği, daha sonraki yıllarda RAPD (Random Amplified Polymorphic DNA) ve SSR (Simple Sequence Repeats) teknikleri yoğunlukta olmak üzere RFLP (Restriction Fragment Length Polymorphism), AFLP (Amplified Fragment Length Polymorphism) ve ISSR (Inter-Simple Sequence Repeats) gibi tekniklerin kullanıldığı belirlenmiştir. Bu araştırmaların ağırlıklı olarak çeşit tanımlama ve akrabalık ilişkilerinin saptanmasına yönelik olarak yürütüldüğü ortaya çıkmıştır. Çeşit tanımlama çalışmalarında SSR tekniğinin etkinliği vurgulanırken, çok yakın akraba bireylerlerin analizi düşünüldüğünde birden çok markör sistemlerinin kullanılmasının faydalı olacağı belirtilmektedir.

🔖

Cite This Article

SABIR, A., TANGOLAR, S., BÜYÜKALACA, S. (2008). The use of molecular marker techniques in viticulture. Alatarım, Cilt: 7 - Sayı: 2, 26–33. https://ajindex.com/articles/151300

📄 Full Text PDF Viewer

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

References (13)

  1. Ağaoğlu, Y.S., Ergül, A., 1999. Amasya Üzüm Çeşidi Ekotiplerinin RAPD Markörleri ile Genetik Tanımlanmaları. Türkiye III. Ulusal Bahçe Bitk. Kong., Cilt: II, 369-372.
  2. Ağaoğlu, Y.S., Karataş, H., Ergül, A., 2005. Gaziantep ve Şanlıurfa İllerinde Yaygın Olarak Yetiştirilen Aynı İsimli Üzüm Çeşitlerinin RAPD (Random Amplified Polymorphic DNA) Tekniği ile Moleküler Özelliklerinin Karşılaştırılması. Türkiye 6. Bağ. Semp.,Cilt: 1, Tekirdağ, 238-244.
  3. Ağaoğlu, Y.S., Söylemezoğlu, G., Ergül, A., Çalışkan, M., 1995. Kalecik Karası Üzüm Çeşidi Klonlarının Kateşol Oksidaz Enziminden Yararlanılarak SDS-PAGE Tekniği ile Ayrımları. Türkiye II. Ulusal Bahçe Bitk. Kong., Cilt: II, Adana, 564-566.
  4. Ağaoğlu, Y.S., Söylemezoğlu, G., Çalışkan, M., Ergül, A., 1999. Türkiye’de Yetiştirilen Razakı Üzüm Çeşidi Ekotiplerinin Elektroforetik Tanımlamaları Üzerinde Araştırmalar. Türkiye III. Ulusal Bahçe Bitk. Kong., Ankara, 389-394.
  5. Almadanim, M.C., Baleiras-Couto, M.M., Pereira, H.S., Carneiro, L.C., Fevereiro, P., Eiras-Dias, J.E., Morais-Cecilio, L., Viegas, W. and Veloso, M.M., 2007. Genetic Diversity of Grapevine (Vitis vinifera L.) Cultivars Most Utilized for Wine Production in Portugal. Vitis, 46 (3): 116-119.
  6. Andres, M.T., Cabezas, J.A., Cervera, M., Borrego, T., Martinez, J., Zapater, J.M., Jouve, N.,2007. Molecular Characterization of Grapevine Rootstocks Maintained in Germplasm Collections. Amer. J. Enol. Vitic., 58 (1): 75-86.
  7. Arnold, C., Rossetto, M., McNally, J., Henry, H.J., 2002. The Application of SSRs Characterized for Grape (Vitis vinifera) to Conservation Studies in Vitaceae. Amer. J. of Botany, 89 (1): 22-28.
  8. Bourquin, J.C., Otten, L., Walter, B., 1995.
  9. PCR-RLFP Analysis of Vitis, Ampelopsis and Parthenocissus and Its Application to the Identification of Rootstocks. Vitis, 34: 103-108.
  10. Bourquin, J.C., Sonko, A., Otten, L., Walter, B., 1993. Restriction Fragment Length Polymorphism and Molecular Taxonomy in Vitis vinifera L. Theor. Appl. Genet., 87(4): 431-438.
  11. Costantini, L., Grando, M.S., Feingold, S., Ulanovsky, S., Mejja, N., Hinrishen, P., Doligez, A., This, P., Cabezas, J.A., Martinez-Zapater, J.M., 2007. Generation of a Common Set of Mapping Markers to Assist Table Grape Breeding. Amer. J. Enol. Vitic., 58 (1): 102-111.
  12. Dalbo, M.A., Ye, G.N., Weeden, N.F., Steinkellner, H., Sefc, K.M., Reisch, B.I., 2000. A Gene Controlling Sex in Grapevines Placed on a Molecular Based Genetic Map. Genome, 43:333-340.
  13. Dangl, G.S., Mendum, M.L., Prins, B.H., Walker, M.A., Mer