SavedAdd your journal

Journals / Türk Tarım ve Doğa Bilimleri Dergisi / 2026 / Volume: 9 Issue: 3

Fenol'e Maruz Kalan Sazan (Cyprinus carpio)’ların Periferik Kan Eritrositlerindeki Anormalliklerin İncelenmesi

Mikail Özcan(Kahramanmaraş Sütçü İmam Üniversitesi, Ziraat Fakültesi, Su Ürünleri Bölümü)0000-0001-9032-0697
Engin Şeker(MUNZUR ÜNİVERSİTESİ, SU ÜRÜNLERİ FAKÜLTESİ)0000-0003-2906-6006
Ünal İspir(MALATYA TURGUT ÖZAL ÜNİVERSİTESİ, DOĞANŞEHİR VAHAP KÜÇÜK MESLEK YÜKSEKOKULU)0000-0002-2077-0219
Pages
—
Publication Date
2022-07-23
🏛️Bibliographic metadata and full text access for this article are provided via DergiPark.
DergiPark Record ↗
✨

AI Summary & Key Takeaways

AI Insight
⚡ TL;DR(Too Long; Didn't Read)

Fenol tatlı su ekosistemlerinde yüksek risk taşıyan bir kirletici olduğundan, akuatik ortamların çevresel risk değerlendirmesinin saptanması için daha ayrıntılı çalışmalar yapılmalıdır.

📌 3 Key Takeaways

🎯
Objective & Hypothesis:Fenol ve fenolik bileşikler, hayvanlarda ciddi sıkıntılara neden olan çevresel ksenobiyotiklerdir.
📊
Key Findings & Data:Fenol çevrede antropojenik etkiye sahip olup önemli problemlere neden olmaktadır.
💡
Conclusion & Impact:Fenol tatlı su ekosistemlerinde yüksek risk taşıyan bir kirletici olduğundan, akuatik ortamların çevresel risk değerlendirmesinin saptanması için daha ayrıntılı çalışmalar yapılmalıdır.
🔬Design:Lab & Field Experiment
📍Scope:Comprehensive Sample
⚙️Variables:Sazan · Cyprinus carpio · Fenol

Özet

Fenol ve fenolik bileşikler, hayvanlarda ciddi sıkıntılara neden olan çevresel ksenobiyotiklerdir. Fenol çevrede antropojenik etkiye sahip olup önemli problemlere neden olmaktadır. Bu çalışma, fenolün sazan (Cyprinus carpio) eritrositlerinde olası genotoksik etkilerinin araştırılması amacıyla yapılmıştır. Çalışmada ortalama ağırlıkları 0.474 ± 0.04 g olan balıklar kullanılmıştır. Balıklar 24, 48, 72, 96 saatler boyunca 0 (kontrol), 5, 10 ve 20 ppm fenol ile muamele edilmiştir. Eritrositlerdeki mikronukleus (MN) ve nükleer anormallik (NAs) oluşumu incelenmiştir. Eritrositlerde mikronukleus ve diğer anormalliklerin oluşumunda, fenol konsantrasyonuna bağlı olarak bir artışın olduğu görülmüştür. Mikronükleus testindeki sonuçlar, fenolün güçlü mutajenik bir etkiye sahip olduğunu göstermiştir (p<0.05). Fenol tatlı su ekosistemlerinde yüksek risk taşıyan bir kirletici olduğundan, akuatik ortamların çevresel risk değerlendirmesinin saptanması için daha ayrıntılı çalışmalar yapılmalıdır.

🔖

Cite This Article

Özcan, M., Şeker, E., İspir, Ü. (2022). Fenol'e Maruz Kalan Sazan (Cyprinus carpio)’ların Periferik Kan Eritrositlerindeki Anormalliklerin İncelenmesi. Türk Tarım ve Doğa Bilimleri Dergisi, Volume: 9 Issue: 3. https://doi.org/10.30910/turkjans.1092252

📄 Full Text PDF Viewer

📄

PDF görüntüleyici hazırlanıyor...

References (32)

  1. Abu Ait, N.A. 2014. Genotoxic, Hematological and biochemical changes induced by phenol exposure in African Catfish (Clarias gariepinus). Global Veterinaria, 13 (3): 316-324.
  2. Al-Sabti, K. 1992. Monitoring The genotoxicity of radiocontaminants in swedish lakes by fish micronuclei. Cytobios, 70 (281): 101-106.
  3. Al-Sabti, K. 1994. Micronuclei induced by selenium, mercury, methyl mercury and their mixtures in binucleated blocked fish erythrocyte cells. Mutation Research/Genetic Toxicology, 320 (1-2): 157-163.
  4. Al-Sabti, K. ve Metcalfe, C.D. 1995. Fish micronuclei for assessing genotoxicity in water. Mutation Research/Genetic Toxicology, 343: 121–135.
  5. Ansoar-Rodríguez, Y., Christofoletti, C.A., Marcato, A.C., Correia, J.E., Bueno, O.C., Malaspina, O. ve Fontanetti, C.S. 2015. Genotoxic potential of the ınsecticide ımidacloprid in a non-target organism (Oreochromis niloticus-Pisces). Journal of Environmental Protection, 6, 1360-1367.
  6. Bahari, I.B., Noor, F.M. ve Daud, M.N. 1994. Micro-nucleated erythrocytes as an assay to assess actions by physisal genotoxic agents in Clarias gariepinus. Mutation Research/Environmental Mutagenesis and Related Subjects, 313 (1): 1-5.
  7. Black, E.C. 1955. Blood levels of haemoglobin and lactic acid in some freshwater fishes following exercise. Journal of the Fisheries Research Board of Canada, 12 (6): 917-929.
  8. Bolognesi, C. ve Hayashi, M. 2011. Micronucleus assay in aquatic animals. Mutagenesis, 26 (1): 205-213.
  9. Candioti, J.V., Soloneski, S. ve Larramendy, M.L. 2010. Genotoxic and cytotoxic effects of the formulated insecticide aficida® on Cnesterodon decemmaculatus (Jenyns, 1842) (Pisces: Poeciliidae). Mutation Research, 703, 180-186.
  10. Çavaş, T. ve Könen, S. 2007. Detection of cytogenetic and DNA damage in peripheral erythrocytes of goldfish (Carassius auratus) exposed to a glyphosate formulation using the micronucleus test and the comet assay. Mutagenesis, 22 (4): 263-268.
  11. Çavaş, T. ve Könen, S. 2008. “In vivo genotoxicity testing of the amnesic shellfish poison (Domoic acid) in piscine erythrocytes using the micronucleus test and the comet assay”. Aquatic Toxicology, 90: 154-159.
  12. Dar, S.A., Yousuf, A.R., Balkhi, M.H., Ganai, F.A. ve Bhat, F.A. 2015. Assessment of endosulfan ınduced genotoxicity and mutagenicity manifested by oxidative stress pathways in freshwater cyprinid fish crucian carp (Carassius carassius L.). Chemosphere, 120: 273-283.
  13. Escher, B.I. 2001. Molecular mechanisms in aquatic ecotoxicology: Specific and Non-Specific Membrane Toxicity A Habilitation Thesis in Environmental Chemistry and Ecotoxicology Zurich
  14. Fenech, M., Chang, W.P., Kirsch-Volders, M., Holland, N., Bonassi, S. ve Zeiger, E. 2003. HUMN Project: Detailed description of the scoring criteria for the cytokinesis-block micronucleus assay using isolated human lymphocyte cultures. Mutation Research/Genetic Toxicology and Environmental Mutagenesis, 534: 65–75.
  15. Fuchs-Tarlovsky, V. 2013. Role of antioxidants in cancer therapy. Nutrition, 29 (1): 15–21.
  16. Garg, S., Gupta, R.K. ve Jain, K.L. 2009. Sublethal effects of heavy metals on biochemical composition and their recovery in ındian major carps. Journal of Hazardous Materials, 163: 1369–1384.
  17. Heddle, J.A., Hite, M., Jrkhart, B. Macgregor, J. ve Salamone, M. 1983. The induction of micronuclei as a measure of genotoxicity. Mutation Research/Reviews in Genetic Toxicology, 123: 61–118.
  18. Hori, T.S.F., Avilez, I.M., Inoue, L.K. ve Moraes, G. 2006. Metabolical changes induced by chronic phenol exposure in matrinxã Brycon amazonicus (Teleostei: Characidae) juveniles. Comparative Biochemistry and Physiology Part C: Toxicology & Pharmacology, 143: 67-72.
  19. Inyinbor Adejumoke, A., Adebesin Babatunde, O., Abimbola, O. ve Adelani-Akande Tabitha, A. 2018. Water Pollution: Effects, prevention, and climatic impact. ın water challenges of an urbanizing world; Matjaž, G., Ed.; IntechOpen: Rijeka, Croatia, 33: 33-52.
  20. Khan, G., Kuek, C., Chaudhary, T., Fhoo, C. ve Hayes, W. 2000. Role of Mycorrhzae and phytochelators in heavy metal contaminated land remediation. Chemosphere, 41: 197-207.
  21. Kumar, P., Prasad, Y., Patra, A.K., Ranjan, R., Swarup, D., Patra, R.C. ve Pal, S. 2009. Ascorbic acid, garlic extract and taurine alleviate cadmium-induced oxidative stres in freshwater catfish (Clarias batrachus). Science of the Total Environment, 407: 5024–5030.
  22. Ma, P., Wang, M.W., Liu, H., Chen, Y.F. ve Xia, J. 2019. Research on ecotoxicology of microplastics on freshwater aquatic organisms. Environmental Pollutants and Bioavailability, 31(1): 131–137.
  23. Machado Da Rocha, C.A., Santos, R.A.D., Bahia, M.D.O., Cunha, L.A.J.D., Ribeiro, H.F. ve Burbano, R.M.R. 2009. The micronucleus assay in fish species as an important tool for xenobiotic exposure risk assessment. a brief review and an example using neotropical fish exposed to methylmercury. Reviews in Fisheries Science, 17(4): 478–484.
  24. Mishra, A. ve Poddar, A.N. 2013. Haematology of freshwater murrel (Channa punctatus Bloch), exposed to phenolic industrial wastes of the bhilai steel plant (Chhattisgarh, India). International Journal of Scientific & Engineering Research, 4 (4): 1866-1883.
  25. Sergene, S., Çavaş, T., Karahan, A. ve Portakal, E. 1999. Methamidophos’un Clarias lazera (Valecien-nes,1840) üzerindeki genotoksik etkilerinin eritrosit mikronukleus testi ile belirlenmesi. Gazi Üniversitesi Gazi Eğitim Fakültesi Dergisi, 19 (1): 27-34.
  26. Stegeman, J.J. ve Lech, J.J. 1991. Cytochrome P-450 Monooxygenase systems in aquatic species. carcinogen metabolism and biomarkers for carcinogen and pollutant exposure. Environmental Health Perspectives, 90: 101-109.
  27. Stegeman, J.J., Brouwer, M., Richard, T.D.G., Förlin, L., Fowler, B.A., Sanders, B.M. ve Van, Veld P.A. 1992. Molecular responses to environmental contamination: enzyme and protein systems as indicators of chemical exposure and effect, in R.J. Huggett, R.A. Kimerly, P.M. Mehrle, Jr., and H.L. Bergman, (Eds.), Biomarkers: Biochemical, Physiological and Histological Markers of Anthropogenic Stress. CRC/Lewis Publishers, Chelsea, MI, pp. 235–335.
  28. Traas, T.P. ve Van Leeuwen, C.J. 2007. Ecotoxicological effects. In C. J. van Leeuwen & T. G. Vermeire, eds. Risk assessment of Chemicals - An introduction. Springer, pp. 281–356.
  29. Yılayaz, Ö. 2005. Parathion methyl (insektisit)’in Barbus rajanorum mystaceus (Heckel,1843) üzerin-deki genotoksik etkisinin eritrosit mikronukleus testi ile belirlenmesi. Doğu Anadolu Böl. Araştırmaları Dergisi, 4 (1): 72-76.
  30. Yılayaz, Ö. 2006. Parathion Methyl (İnsektisit)’in Capoeta trutta (HECKEL, 1843) üzerindeki genotoksik etkisinin eritrosit mikronukleus testi ile belirlenmesi. Doğu Anadolu Bölgesi Araştırmaları Dergisi, 4, (2): 1-5.
  31. Zaki, M.S., Fawzi, O.M. ve Shalaby, S.I. 2011. Phenol toxicity affecting hematological changes in cat fish (Clarius lazera). Life Science Journal, 8 (2): 244-248.
  32. Heddle, J.A., Hite, M., Jrkhart, B. Macgregor, J. ve Salamone, M. 1983. The induction of micronuclei as a measure of genotoxicity. Mutation Research/Reviews in Genetic Toxicology, 123: 61–118.